Фузариоз орхидей: Фузариоз орхидей. Как лечить и чем обработать фаленопсис

Фузариоз орхидей: Фузариоз орхидей. Как лечить и чем обработать фаленопсис

Содержание

причины, внешние признаки, способы лечения

Фузариоз орхидей – распространенное заболевание у данного растения. Если общий вид у цветов здоровый, но появились пятнышки у  основания соцветий или почернели корешки, стоит забеспокоиться. Орхидея достаточно капризный цветок. Он быстро увядает без тщательного ухода и погибнет без надлежащего лечения. Фузариозная гниль – это вид грибка, который может легко перекинуться на другие цветы. Как только обнаружены первые признаки болезни, нужно незамедлительно принимать меры, пока грибковые споры не размножились.

Содержание

  • Причины
  • Внешние признаки грибковой инфекции
  • Опасность инфицирования
  • Способы лечения растения
  • Специальные средства
  • Народная терапия
  • Особенности реабилитации после лечения
  • Меры профилактики

Причины

Болезнь может быть спровоцирована или вызвана отсутствием элементарного ухода, но даже те орхидеи, которые растут у заботливых флористов, не застрахованы от инфицирования. Редко когда человек покупает зараженную орхидею, чаще всего болезни возникают в течение жизни орхидеи. Они могут быть следующими:

  1. При появлении поврежденных участков. В ранку, царапину или надлом легко попадает инфекция.
  2. Если на растение напал вредитель (насекомые, грызуны), то риск заражения очень высок.
  3. Устья на листах имеют слабую зону, которую легко может поразить грибок.
  4. Повреждения механического характера. Даже обрыв листа может стать причиной инфицирования.
  5. Переизбыток удобрений: редкий или слишком частый полив.
  6. В помещении, где находится орхидея, нет хорошего освещения.
  7. Команата плохо проветривается или в нем периодически проводятся работы с участием химикатов.
  8. Субстрат не всегда полностью просыхает, и начинает гнить. Поэтому сильно заливать растение водой не рекомендуется. Гниль привлечет различного рода инфекцию.
  9. Горшки стоят на холодном подоконнике. Подоконник с подогревом тоже не очень хорошая идея, потому что субстрат будет пересыхать.
  10. Засоление земли в кадке. Соль повреждает корневую систему. Поэтому нельзя использоваться для выращивания орхидей торф. В нем присутствует повышенное содержание солей и кислот.

Казалось бы, небольшое повреждение не должно принести серьезных бед, но инфекция легко может проникнуть даже через микроскопическую ранку. При обнаружении таких повреждений, следует незамедлительно провести обработку ранки раствором из активированного угля или корицы. Вредители, насекомые и грызуны очень любят этот цветок. Некоторые питаются соком растений и могут являться переносчиками грибка. Если произошло нашествие вредителей, то сначала нужно избавиться от них, а уже потом заниматься лечением цветка.

Также не стоит забывать, что через устьица растение дышит. Их необходимо периодически обрабатывать обеззараживающим раствором. Если за цветочком правильно и регулярно ухаживать, то риск болезни сведется к минимуму.

На фото уже вторая стадия фузариоза на орхидее. В этом случае еще можно помочь растению.

Фузариоз орхидеи

Внешние признаки грибковой инфекции

Внешние признаки болезни помогут отличить фузариоз от других недугов. Инфекционный процесс может быть очень долгим и длиться от полугода до полутора лет. Заболевание имеет несколько стадий:

  1. Сначала происходит поражение грибковыми спорами и по внешним признакам сложно понять, что орхидея инфицирована.
  2. Некоторые участки корневой системы приобретают розоватый окрас, который позже станет багровым. Именно в корневище зарождается болезнь.
  3. Позже можно заметить небольшие вдавливания, как будто корневая система повреждена.
  4. Начинается гниение и корень становится коричневым.
  5. Потом болезнь перемещается на ствол, листья и лепестки.

Когда корень поражен спорами, начинается выделение токсинов. Именно они блокируют поступление влаги и растение погибает. Когда листья начнут желтеть, а цветы увядать, орхидею уже будет очень сложно спасти. Требуется прибегать к препаратам с химическим или биологическим составом, и долгое время выхаживать цветок.

Опасность инфицирования

Фузариоз – опасное грибковое заболевание. Грибок очень стойко переносит профилактические мероприятия, может уснуть, а потом снова прогрессировать. В первую очередь всегда поражается корневая система. Даже если соблюдены все условия для цветка и за ним постоянно ухаживают, инфекция может оказаться в почве, и заразить орхидею при пересадке.

На заметку! Последняя стадия болезни – это ярко выраженная пигментация на стеблях и лепестках.

Листья орхидеи пораженной фузариозом

Способы лечения растения

Если будут регулярно проводиться профилактические мероприятия, то опасность заражения будет сведена к минимуму. Если орхидея уже инфицирована, то существует несколько эффективных методик по лечению данного недуга. Ниже перечисленные первоначальные действия:

  1. Сначала нужно извлечь растение из кадки и провести осмотр.
  2. Корневище промывается теплой водой.
  3. Производится срез всех пораженных корней.
  4. Срезанные фрагменты выкидываются, а корень обрабатывается раствором из активированного угля.
  5. Потом следует хорошо просушить корневище.

Позже требуется регулярный полив корневой системы, но стебли должны быть всегда сухими. Для орошения используется фунгицидный раствор. Это лекарство будет помогать растению справляться с болезнью. Карантин должен длиться не менее месяца. Если будут обрезаны не все пораженные фрагменты, то все вышеперечисленные мероприятия будут малоэффективны. Нельзя заливать лечебным раствором орхидею. Избыток влаги пойдет только во вред.

Больную орхидею обрабатывают раствором Топсина

Специальные средства

Когда изучены симптомы, а первый способ лечения не помог, стоит воспользоваться специальными веществами для лечения. Этими препаратами можно проводить обработку всех частей растения. Самые эффективные средства:

  • Беномил.
  • Топсин.
  • Фундазим.
  • Фундазол.
Фундазол — высокоэффективное средство для борьбы с фузариозом

Особенно садоводы рекомендуют последнее вещество. Его можно купить в любом дачном магазине. Он производится в виде порошка и достаточно 1 гр средства. Его необходимо развести в 1 л теплой, чистой воды. Показана обработка всех пораженных участков трижды в день в течение двух недель. После этого рекомендован карантин 2 недели и умеренный полив исключительно корневой системы.

Настоем бархатцев поливают инфицированную орхидею в течение двух недель

Народная терапия

Еще до того, как на прилавках в магазинах появились препараты, борющихся с фузариозом, в народе уже было известно несколько действенных методов, которые могут побороть этот недуг. Более того, некоторые садоводы и флористы предпочитают пользоваться только народной терапией, считая ее более безопасной. Самые эффективные способы:

  1. Можно вылечить орхидею с помощью чернобривцев. Важно собрать эту травку в период цветения. После сбора, чернобривец необходимо просушить, а потом создать из него травяной раствор. Для этого 100 г травы заливается 1 л кипятка и настаивается в течение двух суток. После этого можно поливать инфицированную орхидею в течение двух недель.
  2. Также эффективно применение травы коровяк. Сбор и сушка производится стандартным способом, но дозировка в приготовлении немного другая. Нудно взять 50 г сухой травки и залить двумя литрами воды. Через три дня можно процедить раствор и поливать им цветок.
  3. Может помочь древесная зола. Для того, чтобы приготовить раствор на весь период лечения, потребуется около 3 кг золы. Это количество высыпается в ведро и доверху заливается водой. Через двое суток можно начинать регулярный полив.

На заметку! Социальной опрос показал, что народная терапия эффективна лишь на ранних стадиях заболевания или в качестве профилактических мер.

Особенности реабилитации после лечения

Когда растение пошло багровыми пятнами – это фузариоз. Именно это отличает грибок от других видов заболеваний. Чтобы справиться с гниением, нужно четко следовать инструкции. Большинство флористов, изучая информацию на форумах, совершают одни и те же ошибки. Ниже указаны самые популярные ошибочные действия:

  1. Орхидея не любит жару, а грибок в тепле размножается в два раза быстрее. Ни в коем случае нельзя помещать растение в теплицу.
  2. Нельзя проводить опрыскивания и сильно увлажнять почву или воздух. Комфортная температура – 23 градуса. Нельзя ее повышать.
  3. Необходимо организовать хорошее освещение. Некоторые садоводы специально выставляют орхидеи на подоконники под прямые лучи солнечного света. Это делать категорически запрещено.

Нельзя применять подкормочные добавки. Если при срезе гнилых корней, их не осталось совсем, следует обернуть корневище ватным тампоном, пропитанным фунгицидом. Во время карантина опрыскивание разрешено, но в небольших дозах. В качестве препаратов можно использовать активированный уголь или янтарную кислоту.

Меры профилактики

Чтобы минимизировать вероятность инфицирования, стоит особое внимание уделить уходу за орхидеей. Если содержание цветов будет правильным, а подкормка своевременной, то можно избежать заражения. Стоит учитывать основные моменты:

  1. Место, где растет орхидея, должно быть хорошо освещено и регулярно проветриваться.
  2. Поливать нужно регулярно, но не заливать растение.
  3. Температура воздуха не должна превышать 24 градусов.
  4. Должен быть правильно подобранный субстрат.
  5. Регулярная обработка от вредителей.

На заметку! Инфекция очень любит тепло, поэтому развитие грибка может спровоцировать обычная жара в помещении или отсутствие солнечного света.

Периодически стоит проверять и другие растения, если заболело одно. Грибковая инфекция живучая и быстро размножается. Всегда есть вероятность того, что грибок может перекинуться на другие растения. Если хотя бы один цветок заражен, его нужно сразу изолировать. Можно возвращать в оранжерею только после карантина.

фото больного растения и видео о его лечении

Однажды вы замечаете, что орхидея перестала выглядеть здоровой. Вроде листья зелёные, но начали терять тургор, у основания появилось мокрое или чёрное вдавленное пятно.

Конечно, времени всегда не хватает, но отмахнувшись от проблемы, не попробовав решить её – гарантированно потерять тропическую красавицу. Такими пятнами проявляет себя

Фузариозная гниль.


Содержание:

  • 1 Фузариоз орхидей
    • 1.1 Причины появления
      • 1.1.1 Механические повреждения
      • 1.1.2 Вредители
      • 1.1.3 Устьица на листьях
  • 2 Лечение
  • 3 Особенности последующего ухода
  • 4 Профилактика
  • 5 Полезные видео

Фузариоз орхидей

Фузариозная гниль – это грибковое инфекционное заболевание. Его возбудитель – плесневелые грибы Fusarium. Гриб размножается спорами белого, розового или фиолетового цвета. При запущенном случае споры видны на пораженных участках.

Фузариозная гниль в первую очередь поражает корни. Ввиду того, что они находятся в грунте, определить сразу, что орхидея заражена Фузариозом, не представляется возможным.

Фото фузариозной гнили.

Внимание! Одним из признаков поражения цветка является:

  • внезапный листопад на Ванде;
  • листья теряют тургор на Фаленопсисе;
  • пожелтение или потемнение оснований псевдобульб у симподиальных орхидей.

Причины появления

Заражение Фузариозом происходит:

  • через повреждённые участки: надломы, царапины;
  • как последствие нападения сосущих вредителей;
  • через устьица на листьях.
Механические повреждения

Как часто при небольшом повреждении листа или корня мы не обращаем на это внимания. А зря.

Через эти, казалось бы, безобидные ранки в орхидею может проникнуть такое неприятное заболевание, как Фузариоз.

Достаточно просто обработать это место активированным углем или корицей, и такой проблемы не возникнет.

Вредители

Нашествие вредителей на орхидею уже само по себе неприятное явление. Особенно, если это представители сосущих насекомых. Во время питания соками растения они заражают растение различными вирусными и инфекционными заболеваниями, в том числе и Фузариозом.

После того, как избавились от вредителей, необходимо обработать орхидею фунгицидом, чтобы впоследствии не иметь проблем ещё и с болезнями.

Устьица на листьях

Здесь уже ничего не поделаешь – растению надо жить и дышать. Но никогда нельзя держать больные растения вместе со здоровыми. Их обязательно надо содержать в карантине.

Фузариоз может проникать и через устьица на листьях.

В то же время, здоровое сильное растение, содержащееся с соблюдением всех требований, не так-то просто заразить. Поэтому основными причинами начала заболевания является несоблюдение оптимального выращивания орхидеи:

  • отсутствие хорошего солнечного света. Орхидея, не получая оптимального освещения, плохо перерабатывает влагу, вследствие чего субстрат долго остается мокрым;
  • субстрат не просыхает. При избыточном поливе корни орхидеи всегда остаются мокрыми и начинают гнить, открывая дорогу инфекциям;
  • низкие температуры внутри грунта. Это может быть холодный подоконник. При перегреве влажного субстрата, который начинает интенсивно испарять влагу;
  • засоление грунта. При большой концентрации солей нежные корни орхидей легко повреждаются;
  • большое содержание торфа. Торф повышает кислотность грунта, из-за этого в нем не селятся полезные микроорганизмы.

При поражении орхидеи Фузариозной гнилью легко потерять не только зараженное растение, но и находящиеся рядом, так как Фузариоз очень заразен. Вылечить растение можно только на ранней стадии заболевания, пока не погибла вся корневая система.


Лечение

Важно! При обнаружении Фузариоза необходимо сразу изолировать больное растение.

Вылечить заболевший цветок будет сложно, но стоит побороться за тропическую красавицу. Лечение фузариоза у орхидей происходит следующим образом:

  1. Вынуть орхидею из горшка;
  2. Обрезать цветонос, если цветёт;
  3. Очистить корни от субстрата;
  4. Тщательно промыть всё растение под проточной водой;
  5. Стерильным инструментом обрезать гнилые и подозрительные корни;
  6. Обработать полностью всю орхидею Фунгицидом направленного действия;
  7. Все срезы и ранки обработать Фукорцином или неразведенным средством Максим;
  8. Дать просохнуть в течение суток;
  9. Тщательно обработать горшок: промыть кипятком, можно протереть водкой или спиртом;
  10. Посадить цветок в свежий субстрат. Если добавлять торф, то не более 10-15%;
  11. Держать на карантине не менее месяца, наблюдая за поведением растения.

Всё это действительно при ранней стадии заражения, когда заболевание коснулось только корней и не перекинулось на стебель.

При запущенном случае, когда поражено основание стебля, действовать придется немного по-другому. Выполнить все с 1 по 6 пункт.

Далее стерильным инструментом аккуратно обрезаем основание стебля, 2-3 мм. При обнаружении чёрного среза, режем дальше, даже если придется обрезать с виду здоровые корни. Попадающиеся по пути листья снимаем. Операцию проводим до тех пор, пока срез не останется чистым в течение 10-15 минут. Срез обработать неразведённым Максимом или фукорцином.

Все срезы обязательно нужно обрабатывать.

В случае с симподиальными видами, необходимо удалить начавшую темнеть снизу псевдобульбу с частью ризомы. Вполне возможно, что придется удалять здоровые с виду туберы, ризома под которыми уже больна Фузариозом.

Если у орхидеи остались корешки, то выполняем все пункты с 8 по 11, в противном случае, чтобы отрастить корни, придется набраться терпения.

Важно! Народными методами излечить Фузариоз нельзя.

Особенности последующего ухода

Начинающие орхидеисты, начитавшись статей во всемирной паутине, особенно на форумах, делают ошибки при уходе за растением, пострадавшим от Фузариозной гнили:

  • Ни в коем случае не помещать орхидею в тепличку. Ни опрыскивать, ни повышать влажность;
  • Температура должна быть 20-24 градуса с небольшим ночным понижением;
  • Место для размещения цветка должно хорошо освещаться;
  • Поливать Фунгицидом по краю горшка каждый полив. Средство надо выбирать направленного действия от Фузариоза:
    • DAKONIL;
    • BENLATE;
    • SUTOMAI;
    • Фитоспорин-М.
  • До полного выздоровления растения никаких стимуляторов и подкормок применять не следует.

В том случае, если корней не осталось совсем, и орхидея не посажена в грунт, необходимо протирать листья ватными тампонами, смоченными в растворе Фунгицида 3 раза в день.

По истечении карантина орхидею можно подкармливать удобрениями, стимулирующими рост корней, Цирконом, Рибавом или Эпином. Но увлекаться этим не следует. Один раз в месяц в течение года поливать Фунгицидом.

Для орхидеи, потерявшей все корни, продолжить реанимацию, направленную на отращивание корней. Положить на подложку из пенопласта, помещенной в ванночку, в которой находится влажный мох. Можно осторожно опрыскивать стимуляторами, направленными на отращивание корней, янтарной кислотой.


Профилактика

Профилактика развития Фузариозной гнили у орхидей заключается, прежде всего, в соблюдении условий содержания и ухода для данного вида орхидных.

Всего этого можно избежать, если уход за растениями будет оптимальным:

Только в этом случае вы никогда не познакомитесь с этой неприятной болезнью.

Полезные видео


Виды Fusarium как патогены для орхидей

Обзор

. 2018 март; 207:188-195.

doi: 10.1016/j.micres.2017.12.002. Epub 2017 7 декабря.

Шиха Шривастава 1 , Крис Кадука 2 , Дженис Ю. Учида 2

Принадлежности

  • 1 Департамент наук о защите растений и окружающей среды, Гавайский университет в Маноа, 3190 Maile Way, Rm. 304, Гонолулу, Гавайи 96822 США. Электронный адрес: [email protected].
  • 2 Факультет наук о растениях и защите окружающей среды, Гавайский университет в Маноа, 3190 Maile Way, Rm. 304, Гонолулу, Гавайи 96822 США.
  • PMID: 29458853
  • DOI: 10. 1016/j.микр.2017.12.002

Бесплатная статья

Обзор

Шиха Сривастава и др. Микробиолог Рез. 2018 март

Бесплатная статья

. 2018 март; 207:188-195.

doi: 10.1016/j.micres.2017.12.002. Epub 2017 7 декабря.

Авторы

Шиха Шривастава 1 , Крис Кадука 2 , Дженис Ю. Учида 2

Принадлежности

  • 1 Департамент наук о защите растений и окружающей среды, Гавайский университет в Маноа, 3190 Maile Way, Rm. 304, Гонолулу, Гавайи 96822 США. Электронный адрес: [email protected].
  • 2 Факультет наук о растениях и защите окружающей среды, Гавайский университет в Маноа, 3190 Maile Way, Rm. 304, Гонолулу, Гавайи 96822 США.
  • PMID: 29458853
  • DOI: 10.1016/j.микр.2017.12.002

Абстрактный

Недавний всплеск спроса на экзотические декоративные культуры, такие как орхидеи, привел к росту международного производства и резкому увеличению количества растений и растительных продуктов, перемещаемых между странами. Вместе с растениями переносятся и заносятся в новые районы и болезни. Фузариоз является одним из основных заболеваний, вызывающих патогены, поражающие орхидеи, которые распространяются через международную торговлю. Исследования выявили несколько видов фузариоза, связанных с орхидеями, некоторые из которых являются патогенными и вызывают такие симптомы, как пятнистость листьев и цветков, ожоги листьев или влагалищ, псевдостеблевые или корневые гнили и увядание. Заражение и повреждение, вызванное фузариозом, снижает качество растений и цветов и может привести к серьезным экономическим потерям. В этом обзоре документируется текущий статус взаимодействия Fusarium-орхидей, а также иллюстрируются проблемы и перспективы на будущее на основе доступной литературы. Этот обзор является первым обзором взаимодействия Fusarium и орхидей и объединяет различные результаты, которые способствуют пониманию и знаниям об этом комплексе болезней, а также позволят разработать эффективные методы борьбы с болезнями.

Ключевые слова: Грибковые заболевания; Гавайи; Орхидеи.

Авторское право © 2017 Elsevier GmbH. Все права защищены.

Похожие статьи

  • Протеомное исследование внутрикорневых взаимодействий между патогенами нута: галловой нематодой Meloidogyne artiellia и почвенным грибком Fusarium oxysporum f. сп. раса цицеридов 5.

    Паломарес-Риус Х.Э., Кастильо П., Навас-Кортес Х.А., Хименес-Диас Р.М., Тена М. Паломарес-Риус Дж. Э. и соавт. J Протеомика. 6 сентября 2011 г .; 74 (10): 2034–51. doi: 10.1016/j.jprot.2011.05.026. Epub 2011 20 мая. J Протеомика. 2011. PMID: 21640211

  • Трансгенная экспрессия белков, ингибирующих полигалактуроназы, в арабидопсисе и пшенице повышает устойчивость к цветочному патогену Fusarium graminearum.

    Феррари С., Селла Л., Янни М., Де Лоренцо Г., Фаварон Ф., Д’Овидио Р. Феррари С. и др. Растение Биол (Штутт). 2012 март; 14 Приложение 1: 31-8. doi: 10.1111/j.1438-8677.2011.00449.x. Epub 2011 1 марта. Растение Биол (Штутт). 2012. PMID: 21974721

  • Мониторинг патогенных и непатогенных штаммов Fusarium oxysporum при заражении растений томата.

    Валидов С.З., Камилова Ф.Д., Лугтенберг Б.Я. Валидов С.З. и соавт. Микроб Биотехнология. 2011 Январь; 4 (1): 82-8. дои: 10.1111/j.1751-7915.2010.00214.х. Микроб Биотехнология. 2011. PMID: 21255375 Бесплатная статья ЧВК.

  • Опыление орхидей половым обманом: точки зрения опылителей.

    Прокладка переменного тока. Гаскетт АС. Biol Rev Camb Philos Soc. 2011 февраль;86(1):33-75. doi: 10.1111/j.1469-185X. 2010.00134.x. Biol Rev Camb Philos Soc. 2011. PMID: 20377574 Обзор.

  • Транскриптомный анализ грибкового возбудителя Fusarium oxysporum f. сп. medicaginis во время колонизации резистентных и восприимчивых хозяев Medicago truncatula идентифицирует различные профили патогенности и новые эффекторы-кандидаты.

    Тэтчер Л.Ф., Уильямс А.Х., Гарг Г., Бак С.Г., Сингх К.Б. Тэтчер Л.Ф. и др. Геномика BMC. 2016 3 ноября; 17 (1): 860. doi: 10.1186/s12864-016-3192-2. Геномика BMC. 2016. PMID: 27809762 Бесплатная статья ЧВК.

Посмотреть все похожие статьи

Цитируется

  • Использование приманки для рассады ex situ для захвата микоризных грибов, ассоциированных с рассадой, в лекарственной орхидее Dendrobium officinale .

    Ву Ю.Х., Чен Д.Ю., Ван С.Дж., Ли Н.К., Гао Д.Ю. Ву Ю.Х. и др. J Fungi (Базель). 2022 сен 29;8(10):1036. дои: 10.3390/jof8101036. J Fungi (Базель). 2022. PMID: 36294601 Бесплатная статья ЧВК.

  • Грибковые эндофиты для борьбы с биотическими и абиотическими стрессами для климатически оптимизированного и устойчивого сельского хозяйства.

    Верма А., Шамим Н., Джатав Х.С., Сатьянараяна Э., Паррей Дж.А., Почаи П., Сайед Р.З. Верма А. и др. Фронт завод науч. 2022 5 июля; 13:953836. doi: 10.3389/fpls.2022.953836. Электронная коллекция 2022. Фронт завод науч. 2022. PMID: 35865289Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

  • Коинфекция Fusarium aglaonematis sp. ноябрь и Fusarium elaeidis , вызывающий гниль стебля в Aglaonema Modetum в Китае.

    Zhang Y, Chen C, Mai Z, Lin J, Nie L, Maharachchikumbura SSN, You C, Xiang M, Hyde KD, Manawasinghe IS. Чжан И и др. Фронт микробиол. 2022 30 июня; 13:930790. дои: 10.3389/fmicb.2022.930790. Электронная коллекция 2022. Фронт микробиол. 2022. PMID: 35847104 Бесплатная статья ЧВК.

  • Эндофиты грибов и их роль в защите сельскохозяйственных растений от вредителей и патогенов.

    Грабка Р., д’Антремон Т.В., Адамс С.Дж., Уокер А.К., Танни Дж.Б., Аббаси П.А., Али С. Грабка Р. и др. Растения (Базель). 2022 30 января; 11 (3): 384. doi: 10.3390/plants11030384. Растения (Базель). 2022. PMID: 35161365 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

  • Выделение и идентификация полезных микоризных грибов орхидей в Paphiopedilum barbigerum ( Orchidaceae ).

    Tian F, Liao XF, Wang LH, Bai XX, Yang YB, Luo ZQ, Yan FX. Тянь Ф. и др. Поведение сигналов растений. 2022 31 декабря; 17 (1): 2005882. дои: 10.1080/15592324.2021.2005882. Epub 2021 16 декабря. Поведение сигналов растений. 2022. PMID: 34913407 Бесплатная статья ЧВК.

Просмотреть все статьи «Цитируется по»

Типы публикаций

термины MeSH

Разработка эффективной методики инокуляции для оценки патогенности изолята Fusarium solani «TJP-2178-10» в орхидеях фаленопсис | Ботанические исследования

  • Оригинальная статья
  • Открытый доступ
  • Опубликовано:
  • Шу-Юн Чен 1 ,
  • Ян-Джен Ву 1 ,
  • Тинг-Фан Се 2 ,
  • Су 1290-0Ф ,
  • Вэй-Чан Шен 3 ,
  • Юн-Сян Лай 4 ,
  • Пен-Чжи Лай 4 ,
  • Вэнь-Хуэй Чен 5 и
  • …
  • Хон-Хва Чен ORCID: orcid.org/0000-0002-7323-7434 1,5  

Ботанические исследования том 62 , Номер статьи: 4 (2021) Процитировать эту статью

  • 2767 доступов

  • 1 Альтметрика

  • Сведения о показателях

Абстрактный

Фон

Фаленопсис является одним из важных декоративных растений во всем мире. Он играет наиболее важную роль в экспорте цветов на Тайване. Однако болезнь желтых листьев, вызванная Fusarium spp. снизил урожай цветков орхидей на 10–50 % в год. Сорта, устойчивые к болезни желтых листьев, ассоциированной с Fusarium срочно необходим производителям и селекционерам орхидей и является оптимальным решением для долгосрочной цели. Для этого фенотипирование является первым шагом и наиболее необходимой информацией для дальнейших исследований, таких как идентификация генов устойчивости, количественная идентификация локусов признаков и исследование ассоциаций по всему геному.

Результаты

Инокуляцию Fusarium проводили либо в укороченный стебель, либо в отдельный лист, и сравнивали все за и против. Первый представляет собой общий метод фенотипирования для оценки устойчивости к желтой листве 9.0258 Phalaenopsis , но требует много времени и занимает много места, и поэтому не подходит для оценки большого количества образцов. Напротив, последние не только показали аналогичную тенденцию тяжести заболевания со временем, сокращенным только до одной четверти первого, но и потребовали меньше места.

Выводы

Это решение обеспечивает лучший подход к фенотипированию для быстрого выявления болезни желтых листьев, связанной с Fusarium , у большого количества Phalaenopsis проб.

Фон

Орхидеи являются важными цветами для садоводства и экспорта по всему миру. Среди них Phalaenopsis app. являются самыми популярными и значимыми орхидеями. На Тайване стоимость экспорта фаленопсисов в 2019 году составила около 140 миллионов долларов США, что составляет 75% от общей стоимости экспорта орхидей (https://www.coa.gov.tw/). Fusarium spp., патогены широко повреждают сельскохозяйственные культуры и вызывают потерю до 50 % урожая сои, бананов, томатов и пшеницы (Perincherry et al. 2019). Для орхидей симптомы, развившиеся после заражения F. solani , включают пятнистость листьев, пятнистость листьев, гниль влагалища и корневую гниль. Инфекция распространилась по всему миру из-за международной торговли и монокультуры (Swett and Uchida 2015).

Fusarium solani со специфичностью хозяина Phalaenopsis был обнаружен на Тайване (Chung et al. 2011), Корее (Kim et al. 2002), Гавайях (Swett and Uchida 2015) и Австралии (Laurence et al. 2016). Заражение F. solani ежегодно снижает урожай на Тайване на 20–30% (Su et al. 2010). Для подавления активности Fusarium 16 фунгицидов были испытаны на ингибирование роста F. solani . Однако, хотя фунгициды продемонстрировали эффект ингибирования роста мицелия Fusarium (Su et al. 2014), ни один из них не показал значительного влияния на снижение ущерба, вызванного F. solani в теплице (Su et al. al. 2014), или после перевозки на большие расстояния из страны в страну в течение нескольких месяцев (Liao et al. 2012). Вместо химической обработки для снижения заболеваемости Fusarium на Phalaenopsis , альтернативным решением будет создание устойчивых сортов с локусами количественной обработки (QTL), устойчивыми к F. solani , посредством программы селекции. Гены устойчивости или QTL к Fusarium spp. были идентифицированы у арабидопсиса (Diener and Ausubel 2005), пшеницы (Buerstmayr et al. 2002) и гороха (Coyne et al. 2015). Однако до сих пор не поступало сообщений о QTL устойчивости к Fusarium для орхидей. Фенотипирование симптомов после инокуляции патогена является наиболее важным шагом для идентификации генов резистентности или QTL. Большая продолжительность 4–6 недель для прогрессирования заболевания после прививки на укороченный стебель живых растений Phalaenopsis затруднили оценку. Еще хуже то, что требуется большое пространство для изучения достаточного количества растений для исследования Phalaenopsis-Fusarium (Su et al. 2012).

В этом исследовании был разработан модифицированный метод оценки симптома желтого листа, зараженного F. solani , на оторванном листе с сокращенным временем наблюдения до 6 дней и требуемым гораздо меньшим пространством. Кроме того, настоящее исследование показывает, что аналогичные тенденции развития симптомов наблюдались между заражением F. solani в отдельном листе и в укороченном стебле. Кроме того, обнаружение симптомов на основе метода оторванных листьев было стабильным и возможным для изучения большого количества растений.

Материалы и методы

Коллекция образцов

Пять сортов Phalaenopsis , включая TAI_A2945, TAI_A7403, TAI_A9168, TAI_A10040, TAI_A10746 из питомника орхидей Taida, были предоставлены или выращены из питомника Taida Orchilones. д питомнике каждая особь была высажена в 2,5-дюймовые горшки на 2–3 месяца, что близко к истинному размеру растения для зарубежного производства. В каждой повторности использовали по 20 особей каждого сорта, разделенных поровну на Fusarium прививка на отслоившийся лист и укороченный стебель. Для каждой тестируемой ткани 7 особей были инфицированы Fusarium , а 3 особи были инокулированы водой в качестве контроля. Для каждого сорта использовали в общей сложности 60 растений, в том числе по 10 растений на ткань на сорт использовали в одной повторности и независимо повторяли 3 раза. Всего было выполнено три повторения с интервалом в одну неделю между повторами. Перед инокуляцией 2-й или 3-й лист сверху собирали как зрелый лист на основе сравнения длины листа между 1-м и 2-м листом сверху. Когда длина 1-го листа была меньше половины 2-го листа, 3-й лист представлялся как зрелый лист. С другой стороны, когда длина 1-го листа превышает половину длины 2-го листа, 2-й лист собирают как созревший лист. Отделенный лист готовили из одного зрелого листа каждой особи, который срезали примерно на 8,5 см от вершины, а затем закрепляли отделенный лист в чашке диаметром 15 см. Мы хранили все растительные материалы в комнате с постоянной температурой 27 °C в течение двух дней перед этапом отделения, чтобы убедиться, что все растения начинали с одинаковой среды.

Инокуляция Fusarium

Процедуры инокуляции двух органов выполняли, как ранее описано Su et al. (2012). Вкратце, перед инокуляцией создавали семь ран, расположенных по кругу. Патогенные грибы Fusarium solani были предоставлены Тайваньским институтом сельскохозяйственных исследований и изолированы из питомника орхидей на Тайване. Споровую суспензию разбавляли до 10 3 БОЕ/мл для инокуляции отделенных листьев и 10 5 БОЕ/мл для сокращенной инокуляции стебля. Семь ран на мутовке сразу инокулировали 250 мкл инокулята споровой суспензии и закрывали микропорами (3 M) для сохранения жидкости, которую затем удаляли через 2  дня после инокуляции. Зараженные отдельные листья и растения, пораженные укороченным стеблем, инкубировали в помещении с климат-контролем (HiPoint, EH-1800) при температуре 27°С±1°С и влажности 100%. Делали фотографии каждого зараженного отслоившегося образца со 2-го по 6-й день после инокуляции. Для растений, пораженных укороченным стеблем, фото были сделаны со 2-го дня после инокуляции до 9-го ранга симптома.проявляются в любых протестированных сортах. Изолят F. solani , который мы использовали для инокуляции растений, представлял собой «TJP-2178-10», который проявлял наиболее тяжелые симптомы через 28 дней после инокуляции (dpi) (данные не показаны).

Ранжирование симптомов

Чтобы отличить степень устойчивости к патогенам от всех инокулированных отдельных листьев или сокращенных стеблей, уровень тяжести заболевания (SL) ранжировали каждый день после инокуляции в течение 6 дней (отдельный лист) или более 3 недель (сокращенно корень). Индекс тяжести заболевания (DSI) представляет собой процент, рассчитанный по следующей формуле. Умножьте количество людей каждого уровня DSL на каждый DSL и сделайте суммирование всех различных DSL. Затем сумма делится на общий уровень DSL, умноженный на общее количество особей в одном и том же сорте (Chiang et al. 2017).

$$DSI\left(\%\right)=\frac{\sum(DSL\times number\;of\;индивидуалов\;на\;этом\;уровне\;разнообразия)}{Tatal\ ;уровень\;из\;DSL\;раз\;общее\;количество\;особей\;в\;одном\;многообразии}$$

Например, у нас всего 7 особей 11 ранги DSL, 3 из них ранжированы как DSL 3, а остальные 4 ранжированы как DSL 4, то DSI здесь будет рассчитываться следующим образом: (3*3 + 4*4)/(11*7)*100 %= 32,4 %.

Результаты

Определение рангов ДСЛ для зараженного отдельного листа и зараженного растения на укороченном стебле

Было проведено предварительное исследование для различения различных рангов DSL путем инокуляции Fusarium на отделенный лист или на укороченный стебель. Сорт TAI_A10746 был выбран для демонстрации шкалы DSL, за исключением 10-го ранга оторванного листа (сорт Ch251, рис. 1). DSL оценивали следующим образом: уровень 0: никаких симптомов; уровень 1: количество черных дыр меньше 3; уровень 2: количество черных дыр от 4 до 7; уровень 3: черные дыры соединяются друг с другом; уровень 4: черное поражение распространяется за пределы раны; уровень 5: менее 3 отверстий, заполненных гифой из F. solani ; уровень 6: от 4 до 7 отверстий, заполненных гифами из F. solani ; уровень 7: гифы перемешались; уровень 8: появляется желтый симптом; уровень 9: желтый симптом распространяется на весь отдельный лист или укороченный стебель; уровень 10: показаны красные споры (рис. 1 и 2). Эти уровни DSL были применены к фотографиям, сделанным со всех пяти сортов, и трех повторностях для расчета DSI различных тканей.

Рис. 1

Степень серьезности отслоения листа. (0): нет симптомов; (1) количество черных дыр менее 3; (2) количество черных дыр от 4 до 7; (3) Черные дыры, соединенные вместе; (4) Черное распространение вне раны; (5) Менее 3 отверстий, заполненных гифами; (6) Количество отверстий, заполненных гифами, от 4 до 7; (7) Гифы смешались вместе; (8) Начался желтый симптом; (9) Желтый симптом заполняет 50 % площади листа (10) Красный симптом показывает

Полноразмерное изображение

Рис. 2

Ранг серьезности сокращенного стебля. (0): нет черных дыр; (1) количество черных дыр менее 3; (2) Количество черных дыр от 4 до 7; (3) Черные дыры, соединенные вместе; (4) Черное распространение вне раны; (5) Менее 3 отверстий, заполненных гифами; (6) Количество отверстий, заполненных гифами, от 4 до 7; (7) Показана белая область; (8) Показан желтый симптом; (9) появились белые/красные пятна; (10) Желтый лист сломался

Изображение в полный размер

Сходные тенденции развития симптомов от отделившегося листа и укороченного стебля, инокулированных

F. solani

В соответствии с предыдущими испытаниями сорта TAI_A7403 и TAI_A10040 обладали высокой устойчивостью и восприимчивостью к инфекции F. solani . Сначала мы проверили, будут ли симптомы на отделенном листе и укороченном стебле сходными после инокуляции F. solani . В первую очередь показаны симптомы толерантных и восприимчивых сортов, развившихся на отслоившемся листе и укороченном стебле. В отслоившемся листе и укороченном стебле сорта TAI_A7403 симптомов не было (рис. 3а, б, д, е). Напротив, у сорта TAI_A10040 были выявлены сильные симптомы желтого листа как в отдельном листе, так и в укороченном стебле (рис. 3c, d, g, h). Во-вторых, среди пяти тестируемых сортов были зарегистрированы сходные закономерности индекса тяжести болезни между оторванным листом и укороченным стеблем (рис. 4). Выявлены высокоположительные корреляционные связи между зараженным оторванным листом и зараженными растениями на укороченном стебле среди повторностей, так как R-квадрат составил 0,9. 6, 0,91 и 0,95 для повторов 1, 2, 3 соответственно, а значение p ниже 0,05 для всех повторов (таблица 1).

Рис. 3

Фенотипы толерантных и восприимчивых сортов, развившихся на укороченном стебле или отдельном листе. Были показаны исходные ( a , c , e , g ) и увеличенные ( b , d , d , f , h 9023) оторванные изображения стебля и ab 9023. соответственно . Сорта TAI_A7403 и TAI_A10040 показаны как толерантный и восприимчивый сорт соответственно

Полноразмерное изображение

Рис. 4

Сравнение DSI среди повторностей по органам

Полноразмерное изображение

обнаружение и сокращение периода наблюдения путем инфицирования в отделенном листе

Стабильность DSI среди повторностей, полученных на каждом органе, имеет решающее значение для оценки надежности метода инокуляции. DSI как для инфицированного отдельного листа, так и для инфицированных растений на укороченном стебле показали значительную высокую корреляцию между всеми повторностями (таблица 2), что позволяет предположить, что тестируемые сорта демонстрировали устойчивые симптомы пожелтения листьев от этих органов, и как инфекции на оторванном листе, так и на укороченном стебле являются надежными. техники прививки. Оторванный лист имеет самый высокий коэффициент корреляции 0,9.6 между повторами 2 и 3, а самый низкий коэффициент корреляции 0,84 между повторами 1 и 2 с p-значением 0,0081 и 0,0771 соответственно. Напротив, корреляция между репликами из сокращенного стебля была выше 0,9 со значением p 0,0292 (повторность 1 против реплики 2), 0,0132 (повторность 1 против реплики 3) и 0,0299 (повторность 2 против реплики 3) ( Таблица 2). Кроме того, время наблюдения за симптомами также является важным моментом, который следует учитывать перед скринингом большого количества образцов или сортов. В этом исследовании укороченному стеблю потребовалось около 20 дней (от 21 до 32 дней), в то время как отделившемуся листу потребовалось менее одной недели (6 дней), чтобы дифференцировать DSI среди сортов орхидей после заражения Ф. солани .

Таблица 2 Корреляция между каждой повторностью отдельного листа и укороченным стеблем, выше диагонали указан коэффициент корреляции (r), а ниже диагонали показано p -значение

Полноразмерная таблица

Обсуждение

Заражение оторванного листа является лучшим подходом для оценки DSI при инокуляции

F. solani

Хорошая технология оценки патогенности может учитывать следующие особенности: повторяемость, чувствительность и время наблюдения. Различные техники Инокуляция Fusarium была протестирована на початках кукурузы, чтобы найти лучший способ оценки большого количества генотипов кукурузы (Clements et al. 2003). В нашем исследовании высокие корреляции обнаружены между всеми повторами из обоих органов (таблица 2), что указывает на достоверную повторяемость. Кроме того, степень тяжести двух органов сильно коррелировала между повторами (таблица 1). Аналогичная картина тяжести после инокуляции Fusarium между органами также наблюдается в колосе и шелке кукурузы (Reid et al. 2002). Это открытие указывает на то, что ранг серьезности, полученный по отделенному листу, хорошо соответствует рангу, определенному по сокращенному стеблю. Кроме того, отделенный лист показал более широкий диапазон DSI среди протестированных сортов, чем укороченный стебель, демонстрируя более сильную чувствительность оторванного листа, чем укороченный стебель. Что касается времени наблюдения, то для развития симптомов после инокуляции в укороченный стебель требовалось более 20 дней, аналогично предыдущему исследованию, в котором для выявления симптомов у орхидей требовалось 4 недели (Su et al. 2012). Напротив, через 6 дней после инокуляции F. solani было достаточно, чтобы отличить диапазоны симптомов от отслоения листа, что указывает на четверть времени инокуляции в укороченном стебле. И последнее, но не менее важное: потребность в пространстве также является важным вопросом. Для оторванного листа он был менее просторным, чем для укороченного стебля. Чашки диаметром 15 см и высотой 2 см достаточно для одного образца оторвавшегося листа, а для укороченного стебля требуется живое растение в 2,5-дюймовом горшке. Из всех вышеперечисленных преимуществ инокуляция в отделенный лист надежна, более чувствительна, занимает меньше времени и требует меньше места для эксперимента, чем инокуляция в укороченный стебель, что может быть лучшим решением для Оценка Fusarium на орхидеях Phalaenopsis .

Изучение биохимической защиты Phalaenopsis-

Fusarium Взаимодействие

Для защиты от вторжения патогенов растения вырабатывают как структурные, так и биохимические механизмы самозащиты. Когда Fusarium spp. заражает растения, он начинает разрушать структурную защиту клеточной стенки, а затем подавляет биохимическую защиту растений, производя микотоксины, специфичные для хозяина (Perincherry et al. 2019).). В этом исследовании первой структурной защиты удалось избежать, так как растения были проколоты и образовались круглые раны, в результате чего Fusarium попал во внутреннюю часть растительных клеток и исследовали биохимическую защиту. Таким образом, мы напрямую протестировали патоген-специфическую защиту хозяина, что позволит в будущем идентифицировать важные факторы, участвующие в защитном механизме от инфекции Fusarium .

Выводы

Фаленопсис 9Орхидеи 0235 играют наиболее важную роль в экспорте цветов на Тайване, но урожайность цветков орхидей снизилась из-за болезни желтых листьев, вызванной Fusarium spp. Фенотипирование симптома Fusarium является первым шагом и наиболее необходимой информацией для дальнейших исследований, таких как изучение полногеномной ассоциации. Отделенный лист, лучшая ткань, чем исходная инокуляционная ткань, сокращенный стебель для инокуляции изолята Fusarium «TJP-2178-10», был предоставлен в этом исследовании и показал аналогичную различительную способность, хорошую стабильность, в то время как более короткое время -потребление и требуется меньше места. Это решение обеспечивает лучший подход к фенотипированию и быстрое обнаружение болезни желтых листьев, связанной с Fusarium для большого количества образцов Phalaenopsis .

Наличие данных и материалов

Неприменимо.

Сокращения

DSI:

Индекс тяжести заболевания

DSL:

Уровень тяжести заболевания

QTL:

Количественное лечение локусов

Ссылки

  • Buerstmayr H, Lemmens M, Hartl L, Doldi L, Steiner B, Stierschneider M, Ruckenbauer P (2002) Молекулярное картирование QTL устойчивости к фузариозу яровой пшеницы. I. Устойчивость к грибковому распространению (резистентность II типа). Theor Appl Genet 104:84–91

    Статья КАС Google Scholar

  • Chiang K, Liu H, Bock C (2017) Обсуждение значений индекса тяжести заболевания. Часть I: предупреждение о неотъемлемых ошибках и предложения по максимальной точности. Энн Аппл Биол 171:139–154

    Артикул Google Scholar

  • Chung W, Chen L, Huang J, Huang H, Chung W (2011) Новая «специальная форма» Fusarium solani , вызывающая пожелтение листьев phalaenopsis . Завод Патол 60:244–252

    Артикул Google Scholar

  • Клементс М., Кляйншмидт С., Марагос С., Патаки Дж., Уайт Д. (2003) Оценка методов инокуляции против фузариозной гнили початков и заражения кукурузы фумонизином. Завод Дис 87: 147–153

    Артикул КАС Google Scholar

  • Coyne CJ, Pilet-Nayel ML, McGee RJ, Porter LD, Smýkal P, Grünwald NJ (2015) Идентификация QTL, контролирующих высокие уровни частичной устойчивости к Fusarium solani f. сп. фунтов в горох. Порода растений 134:446–453

    Статья Google Scholar

  • Diener AC, Ausubel FM (2005) Сопротивление до Fusarium Oxysporum 1 , доминантный ген устойчивости к болезням арабидопсиса, не является расоспецифичным. Генетика 171:305–321

    Статья КАС Google Scholar

  • Ким В.Г., Ли Б.Д., Ким В.С., Чо В.Д. (2002) Корневая гниль орхидеи мотыльковой, вызванная Fusarium spp. Завод Pathol J 18:225–227

    Статья Google Scholar

  • Лоуренс М., Ховард С., Саммерелл Б., Лью Э. (2016) Идентификация Fusarium solani f. Сп. фаленопсис в Австралии. Завод в Австралии Dis Notes 11:15

    Артикул Google Scholar

  • Liao G, Hsieh TF, Chen HR (2012) Эффект химической обработки для предотвращения желтого фузариоза сеянцев Phalaenopsis в имитируемых условиях транспортировки. J Taiwan Agri Res 61: 124–131

    Google Scholar

  • Perincherry L, Lalak-Kańczugowska J, Stępień Ł (2019) Fusarium – микотоксины, продуцируемые при взаимодействии растений и патогенов. Токсины 11:664

    Артикул КАС Google Scholar

  • Reid L, Woldemariam T, Zhu X, Stewart D, Schaafsma A (2002) Влияние времени инокуляции и точки проникновения на тяжесть заболевания у Fusarium graminearum , Fusarium verticillioides или Fusarium subglutinans инокулированные початки кукурузы. Can J Plant Path 24:162–167

    Статья Google Scholar

  • Su JF, Lee Y, Chen C, Hsieh TF, Huang J (2010) Гниль оболочки и корня Phalaenopsis , вызванная Fusarium solani . Acta Hortic 878: 389–394. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2010.878.49

    Статья Google Scholar

  • Su JF, Lee Y, Chen C, Huang J, Hsieh TF (2012) Полевые исследования для Fusarium болезни Phalaenopsis на Тайване. Бюллетень по патологии растений 21:115–130

    Google Scholar

  • Su JF, Lee YC, Chien LY, Hsieh TF (2014) Оценка фунгицидов для подавления роста патогена Phalaenopsis Fusarium . J Тайвань Агро Рес 64: 32–44

    Google Scholar

  • Светт С., Учида Дж. (2015) Характеристика Фузариоз на коммерчески выращиваемых орхидеях на Гавайях. Завод Патол 64:648–654

    Статья Google Scholar

Скачать ссылки

Благодарности

Мы благодарим Lan-Yi Chien (Отдел патологии растений Тайваньского сельскохозяйственного научно-исследовательского института Совета сельского хозяйства) за техническую помощь в борьбе с инфекцией Fusarium .

Финансирование

Работа выполнена при поддержке Министерства науки и технологий Тайваня, грант №: MOST 108-2313-B-006-MY3.

Информация об авторе

Авторы и организации

  1. Департамент наук о жизни, Национальный университет Ченг Кунг, 701, Тайнань, Тайвань

    Shu-Yun Chen, Yan-Jeng Wu & Hong-Hwa Chen Pathology

    4 Отдел, Тайваньский институт сельскохозяйственных исследований, Совет по сельскому хозяйству, 413008, Тайчжун, Тайвань

    Тинг-Фан Сие и Цзюньн-Фэн Су

  2. Кафедра патологии растений и микробиологии, Национальный университет Тайваня, 10617, Тайбэй, Тайвань

    Wei-Chiang Shen

  3. Taida Horticultural Co. , Ltd, Da Tsun County, 31306, Chang Hwa, Тайвань

    Yung-Hsiang Lai & Pen-Chih Lai

  4. Kung University, 701, Tainan, Taiwan

    Wen-Huei Chen & Hong-Hwa Chen

Авторы

  1. Shu-Yun Chen

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Академия

  2. Yan-Jeng Wu

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  3. Ting-Fang Hsieh

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  4. Jiunn-Feng Su

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  5. Wei-Chiang Shen

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  6. Yung-Hsiang Lai

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  7. Pen-Chih Lai

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  8. Wen-Huei Chen

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  9. Hong-Hwa Chen

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

Contributions

SYC разработал первоначальные планы скрининга и исследования; YJW провели эксперимент вместе; TFH и JFS руководили экспериментами; LYC помогает заразить Процесс Fusarium ; WCS участвовал в обсуждении после эксперимента; YHL и PCL предоставили растительные материалы для предварительного тестирования и внутреннего контроля для различных серий экспериментов, участвовали в разработке эксперимента и обсуждении после анализа; WHC участвовал в разработке эксперимента и анализе после эксперимента; HHC задумал проект и написал статью с участием всех авторов, завершил написание и выступил в качестве автора, ответственного за контакт и обеспечение связи. Все авторы прочитали и одобрили окончательный вариант рукопись.

Автор, ответственный за переписку

Переписка с Хонг-Хва Чен.

Декларация этики

Одобрение этики и согласие на участие

Неприменимо.

Согласие на публикацию

Не применимо.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Дополнительная информация

Примечание издателя

Springer Nature остается нейтральной в отношении юрисдикционных претензий в опубликованных картах и ​​институциональной принадлежности.

Права и разрешения

Открытый доступ Эта статья находится под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 International License, которая разрешает использование, совместное использование, адаптацию, распространение и воспроизведение на любом носителе или в любом формате при условии, что вы укажете авторство оригинальный автор(ы) и источник, предоставьте ссылку на лицензию Creative Commons и укажите, были ли внесены изменения.

No related posts.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *