Чудеса цитокининовой пасты

11 апреля 2016

Эта статья в первую очередь должна заинтересовать любителей орхидей. Но вы должны знать, что цитокининовая паста успешно применяется не только с фаленопсисами, а также и другими комнатными и садовыми цветами, трудными в размножении. Если у вас есть цитокининовая паста – разведение любых цветов превращается в удовольствие и благодарное занятие. Вы получите превосходный эффект с суккулентами, гибискусами, сенполиями, розами, камелиями, цитрусовыми, бегониями и т.д.

Цитокининовая паста – это гормональный препарат, который содержит в себе цитокинины – вещества для роста и важные для растений витамины.

Как действует цитокининовая паста?

Цитокинины, входящие в состав цитокининовой пасты, принимают участие в физиологических процессах и, как и другие фитогормоны, обладают полифункциональным действием. Наиболее ожидаемый и типичный эффект после применения цитокининовой пасты – стимуляция деления клеток. Процесс этот происходит благодаря сочетанию гормонов, входящих в состав цитокининовой пасты.

• Цитокининовая паста пробудит спящие почки, сформирует побеги в намеченном вами месте.
• Окажет влияние на закладку и развитие генеративных органов. Обработка цитокининовой пастой ускорит зацветание растений.
• Играет важную роль в формировании пола у цветка и способствует закладке женских цветков у кукурузы, огурца, шпината и т.д.
• Принимает участие в регуляции обмена веществ органов, которые уже закончили свой рост, задерживает процессы распада и старения.
• Улучшит состояние растений, которые попали в неблагоприятные условия – затопление, засуха, засоление, низкие температуры – применение цитокининовой пасты.

Цитокининовая паста поможет получить более кустистые формы растений, затормозит их старение, повысит устойчивость растений к неблагоприятным условиям среды, сделает сдвиг выраженности пола в женскую сторону.

Зачем применяется цитокининовая паста?

Для пробуждения почки

Аккуратно царапните поверхность клеточной ткани почки продезинфицированной острой иголкой или ножом. Также эту процедуру можно провести при помощи зубочистки. Если нужно – снимите сухие чешуйки, которые защищают живую плоть почки. Нанесите на открывшееся место цитокининовую пасту размером с горошину  (1,5-2,5мм). Равномерно размажьте ее ровным слоем по всей поверхности почки.

В зависимости от вида растения обработанная почка начнет пробуждаться через 7-10 дней.

Лучшее время для применения цитокининовой пасты – период перед пробуждением растения. Для фаленопсисов (орхидей) – конец зимы, весна.

Для рождения новой почки

Стерильным острым инструментом (игла, ножик, зубочитстка) царапните стебель в том месте, где вы планируете рождение почки. Нанесите цитокининовую пасту размером с горошину и аккуратно и равномерно покройте место царапины. Через одну-две недели, в зависимости от вида растения,  начнется зарождение цветоноса, детки и новой веточки.

Для зарождения цветоноса нанесите на почку минимальное количество цитокининовой пасты. Для рождения «деток» – большое количество.

Нанесение цитокининовой пасты

Осмотрите цветонос, выберите почку – лучше верхнюю или нижнюю – они дадут лучший результат. Уберите кроющую чешуйку с почки очень аккуратно. Возьмите скальпель или нож и надрежьте чешуйку с двух сторон. Делайте это медленно, чтобы не повредился цветонос и цветочная почка. Снимите пинцетом остатки чешуйки с цветоносной почки.

Обнажится маленькая ярко-зеленая точка, которую закрывала чешуйка.

Нанесите зубочисткой цитокининовую пасту.

Распределите пасту равномерно.

В течение 7-10 дней вы будете наблюдать настоящее чудо пробуждения.

         

Как ухаживать за растением после обработки цитокининовой пастой?

Растение, выбросив новые побеги, будет нуждаться в дополнительном и повышенном питании. Не забудьте создать соответствующие  условия – дополнительные подкормки, тепло и свет в помещении. «Зимние» условия приведут к тому, что растение будет истощаться, расходуя свои силы на развитие деток или новых побегов. Обеспечьте растению в этот период более бережный уход и интенсивнее подкармливайте.

Основные достоинства цитокининовой пасты

1. Быстрый эффект на обработанных орхидеях.
2. Ускоряет рост почек.
3. Ускоряет процесс роста.
4. Хватит на долго.

Какие результаты после применения цитокининовой пасты?

Смотрите сами — эти фотографии нам прислали клиенты, которые купили у нас цитокининовую пасту и применили ее на разных комнатных растениях.

          

          

Правила хранения и применения цитокининовой пасты

1. Храните пасту в месте, защищенном от света и вдалеке от нагревательных приборов – лучше всего в холодильнике.
2. Подержите пасту при комнатной температуре перед применением – она слегка размягчится и это облегчит ее применение.
3. Используйте чистый инструмент для нанесения пасты на растения. Для этой цели отлично подойдет большая игла.
4. Наносите цитокининовую пасту на здоровое растение.
5. Не делайте больше 3-х обработок одновременно на одном растении.
6. Не нужно повреждать кутикулу, если нужно нанести пасту на почку – это может повредить почку.
7. Увеличьте число подкормок, уделите больше внимания уходу за растением после применения цитокининовой пасты.

Если вам нужно получить «детку» — применяйте азотные удобрения (нитраты помогут растению нарастить зеленую массу). Если вы хотите получить цветонос – купите калийно-фосфорные удобрения.

Не мажьте цитокининовой пастой:

• маленькие, молодые растения,
• свежие побеги, верхушки растений, где есть листики,
• не экспериментируйте с корнями – растения могут погибнуть.

Цитокининовая паста – настоящая находка для садоводов и любителей комнатных растений. Она стимулирует зарождение, развитие и рост почек, прекрасно зарекомендовала себя в применении и с садово-плодовыми культурами, и со сложными в уходе, редкими растениями.  Если вы любитель комнатных растений – цитокининовая паста нужна для размножения растений путем образования «деток» и стимулирования их к цветению. В применении цитокининовой пасты видовых ограничений нет – реагируют эффективно все виды орхидей, суккулентов, роз, гибискусов, сенполий, цитрусовых, камелий и другие растения.

Как применять цитокининовую пасту на орхидеях, смотрите на нашем канале Youtube

Сегодня я хочу рассказать вам, как использовать цитокининовую пасту на орхидеях. Разведение орхидей с применением цитокининовой пасты станет удовольствием.

Когда орхидея отцветает, на веточках остаются небольшие стрелочки. Находим на орхидее неоткрывшуюся почку, берем острый нож и аккуратно надрезаем почку. Набираем кончиком зубочистки небольшое количество цитокининовой пасты, намазываем на почку и ожидаем появления новой веточки или цветонос.

Результат вы увидите через две-три недели. Цитокининовая паста применяется не только на орхидеях, но и на фиалках, драценах, фикусах и других цветах. Как видите – размножение орхидей в домашних условиях – это не так сложно.  

Ускорит появление почек, развитие и рост растений, стимулирует размножение и цветение, поможет развести новые сорта фиалок, роз и других цветочных культур цитокининовая паста.

Полезная статья? Поделитесь с друзьями:

← Как выбрать и применять… Акция — разыгрываем 6… →

Цитокининовая паста 1,5 мл для орхидей и комнатных цветов

Действие цитокининовой пасты основано на способности препарата вызывать массовое деление клеток растения.
Эффективно реагируют на препарат все виды и сорта орхидей, сенполий, суккулентов, гибискусов, роз, камелий, цитрусовых и др.
Фирменная, красочная упаковка с подробным описанием по применению пасты, паста расфасована в пробирки и прикреплена в пакетике к этикетке степлером.
Объем: 1,5мл

Размножение орхидеи
Размножение орхидеи с помощью цитокининовой пасты становится благодарным занятием, особенно это можно сказать о фаленопсисах – достаточно просто смазать участок на цветоносе. Этот препарат эффективно воздействует на все виды орхидей, фиалок, фикусов, роз, цитрусовых, суккулентов и других растений.

Цитокининовая паста не имеет видовых ограничений и подходит для абсолютно любых растений.
Применение пасты для пробуждения спящих почек:
Острым стерильным инструментом, например, лезвием или ножом, делается продольный надрез у основания прицветника, если прицветник сухой, то его можно аккуратно удалить. Срез смазывается небольшим количеством пасты с помощью удобного инструмента(иголка, зубочистка, пинцет), исключая попадание препарата на другие части растения. Процесс пробуждения почки, в зависимости от вида растения и его состояния, занимает в среднем 10 дней. Не рекомендуется искусственное пробуждение сразу большого количества почек.

Применение пасты для закладки и развития новой почки:
Острым стерильным инструментом делается небольшой надрез(царапина) в желаемом месте образования почки. На царапину наносится небольшое количество препарата. Закладка почки происходит в течение 1-2 недель.
Применение пасты для роста и развития боковых побегов у орхидей:
Надрез делается в междоузлии(в месте соединения корней с листьями), немного выше первой пары листьев, сбоку. С помощью иголки наносится небольшое количество пасты. Процесс образования цветоноса занимает в среднем 1-2 недели.Размножение и обновление кустиков фиалок: в
Верхняя часть растения срезается острым стерильным ножом так, чтобы на основании растения остался 1-2 ряда листьев.
Срезанная верхушка укореняется привычным способом. Свежий срез«пенька» равномерно обрабатывается цитокининовой пастой. Через время, на«пеньке» фиалки образуются«детки», которые впоследствии срезаются и укореняются привычным способом.

В садоводстве, например, достаточно легко царапнуть луковичку или клубень, спящие почки на нижней части ствола растения с уже опавшими листьями, нанести препарат и уже через неделю можно наблюдать рост побегов, выброс цветоносов и деток. У клубневых видов завязываются дочерние луковицы и клубни.
Такое замечательное воздействие препарата на растения, связано со способностью ее формулы вызывать активное деление клеток растения, с дальнейшим стимулированием к развитию и росту зародившихся почек. Противопоказания при использовании цитокининовой пасты
Если вы задумались об использовании пасты на своих орхидеях, то обязательно советую внимательно отнестись и к противопоказаниям в применении.
Если растение больное или поражено вредителями размножение орхидеи противопоказано.
Препарат нельзя использовать для реанимации растений.
После использования препарата из обработанной точки могут появиться несколько побегов. Оставляйте наиболее сильный, все остальные удаляйте, иначе весь этот«букет» отвалится вскорости сам.
На одном растении не стоит много усердствовать — подумайте о том, выдержит ли корневая система растения.
Желательно не допускать попадания препараты на другие части растения(листья, черешки, коренья).
Не использовать препарат на молодых растениях и детках фаленопсисах, а также на свежих молодых побегах(могут сбросить листья).

Orchids Cloning Paste_cytokinin Paste_keiki Paste Auxin

Цитокининовая паста с ауксином, паста Кейки, паста для клонирования, размножение и повторное цветение орхидей и фиалок, рост бутонов и побегов на растениях и деревьях 4 г
1 мини-пластиковый контейнер 5 г, 1,2 дюйма X 0,5 дюйма (3 см X 1,3 см) пасты KEIKI.

Цитокининовая паста, Кейки-паста способствует активной стимуляции процесса деления клеток. Обычно пасту используют для капризных растений, таких как орхидеи, фиалки, розы, для активизации роста бутонов и побегов.
Цитокининовая паста — применение при выращивании огородных культур
В садоводстве мазь применяют для формирования новых побегов и создания крон у растений. Средство способствует формированию новых молодых растений, а также пробуждению спящих почек, из которых впоследствии формируются цветоносы или побеги. Часто используется для выведения новых капризных сортов роз. Возможна обработка клубней луковичных растений для быстрого образования новых деток.

Применение Паста Keiki для орхидей.

1. Выберите бутон орхидеи, из которого вы хотите вырастить детское растение кейки или цветочный побег. Цветоводы рекомендуют брать самый верхний или, наоборот, самый нижний бутон. Обрабатывать до 2-3 бутонов.

2. Аккуратно снимите защитную оболочку соцветия с помощью пинцета или острого лезвия. После того, как вы удалите чешуйки с помощью пинцета, вы увидите небольшой светло-зеленый бутон.

3. Чистой зубочисткой или иголкой нанесите на появившуюся почку немного цитокининовой пасты.

4. Через 12-14 дней должен появиться новый росток. Узлы на колосьях фаленопсиса образуют либо вегетативный рост (кейки), либо цветочный рост (ветвь с цветочными почками).

Если ткань узла уже дифференцирована и станет цветочной ветвью, результат изменить невозможно.
Хитрость заключается в том, чтобы нанести пасту на узел до того, как он будет дифференцирован. Однако невозможно предсказать, станет ли недифференцированный узел кейки или цветочной ветвью.

5. С образованием новых побегов желательно начать подкормку растения специальными витаминами для стимуляции роста и для полноценного питания.

6. Следите за тем, чтобы во время «пробуждения» цветок получал достаточно тепла и солнечного света.

7. Удаление кейки

Если требуется новое растение, кейки следует оставить на материнском растении до тех пор, пока у него не разовьется здоровая корневая система и не появятся два или три листа (для фаленопсиса) или побеги (дендробиум).

В этот момент его можно аккуратно удалить острым ножом и посадить в собственный горшок.

Кейки срезают ниже и выше стебля, оставляя небольшой кусочек стебля на молодом растении.
Можно ожидать, что отделенный кейки зацветет примерно за то же время, что и скрещивание или вид, зацветший из сеянца. Некоторые виды орхидей, такие как Phal pulchra keiki, часто цветут, все еще прикрепленные к материнскому растению.

Применение цитокининовой пасты при выращивании Фиалки:

Одно из самых капризных растений, которое выращивают любители комнатных цветов — фиалка. Для размножения наиболее сложных сортов используют цитокининовую пасту. Многие сорта с трудом дают детям, и это средство способствует такому процессу. На черешках, расположенных близко к земле, тонкой иглой делают небольшие царапины и наносят цитокининовую пасту. Примерно через 14 дней должен появиться результат.

Роль ауксина в развитии орхидей

1. Крибб П.Дж., Лелл С.П., Диксон К. В., Барретт Р.Л. Глава первая — Сохранение орхидей: глобальная перспектива. Сохранение орхидей: публикации естественной истории, 2003: 1-24. [Google Scholar]

2. Хью CS, Юн JWH. Глава первая — Актуальность физиологии орхидей для промышленности. Физиология тропических орхидей по отношению к индустрии: World Scientific, 2004:1-10. [Google Scholar]

3. Свартс Н.Д., Диксон К.В. Сохранение наземных орхидей в эпоху вымирания. Энн Бот 2009 г.; 104:543-56; PMID: 19218582; http://dx.doi.org/ 10.1093/aob/mcp025 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Ардитти Дж. Микроразмножение орхидей, Vol. I и II, 2-е изд.: Blackwell, 2008. [Google Scholar]

5. Тейшейра да Силва Ж.А. Орхидеи: достижения в области культуры тканей, генетики, фитохимии и трансгенной биотехнологии. Флорикульт Орнам Биотех 2013; 7:1-52 [Google Scholar]

6. Чен Т.И., Чен Дж.Т., Чанг В.К. Множественное побегообразование и регенерация растений из узловых стеблевых эксплантов орхидей Phaphiopedilum. Завод In Vitro Cell Dev Biol 2002 г.; 38:595-7; http://dx.doi.org/10.1079/IVP2002332 [CrossRef] [Google Scholar]

7. Моханти П., Дас М.С., Кумария С., Тандон П. Высокоэффективная криоконсервация орхидеи лекарственной Dendrobium nobile Lindl. Культ органов растительных клеток 2012 г.; 109:297-305; http://dx.doi.org/10.1007/s11240-011-0095-4 [CrossRef] [Google Scholar]

8. Новак С.Д., Уайтхаус Г.А. Ауксин регулирует развитие первого листа и способствует образованию трихом протокормы и ризомоподобных структур у развивающихся проростков Spathoglottis plicata (Orchidaceae). АоБ растения 2013; 5:пожалуйста053; http://dx.doi.org/ 10.1093/aobpla/pls053 [CrossRef] [Google Scholar]

9. Годо Т., Комори М., Накаоки Э., Юкава Т., Миёси К. Проращивание зрелых семян Calanthe tricarinata Lindl., находящейся под угрозой исчезновения наземной орхидеи, с помощью асимбиотической культуры in vitro. В пробирке Завод Cell Dev Biol 2010 г.; 46:323-8; http://dx.doi.org/10.1007/s11627-009-9271-1 [CrossRef] [Google Scholar]

10. Де К.К., Маджумдар С., Шарма Р., Шарма Б. Культура зеленых стручков и быстрое микроразмножение Dendrobium chrysanthum Wall. — садовой и лекарственной орхидеи. Фолиа Хортик 2006 г.; 18:81-90 [Google Scholar]

11. Уилкинсон К.Г., Диксон К.В., Сиваситхампарам К., Гисалберти Э.Л. Влияние ИУК на симбиотическое прорастание австралийской орхидеи и его продукцию ассоциированными с орхидеями бактериями. Растительная почва 1994 год; 159:291-5; http://dx.doi.org/10.1007/BF00009292 [CrossRef] [Google Scholar]

12. Миёси К., Мии М. Предварительная обработка фитогормонами для усиления прорастания семян и образования протокорма наземной орхидеей Calanthe discolor (Orchidaceae) в асимбиотической культуре. Научный Хортик (Амстердам) 1995; 63:263-7; http://dx.doi.org/ 10.1016/0304-4238(95)00813-9 [CrossRef] [Google Scholar]

13. Чжан ХС, О’Нил С.Д. Развитие яичников и гаметофитов координировано регулируется ауксином и этиленом после опыления. Растительная клетка 1993 год; 5:403-18; PMID:12271070; http://dx. doi.org/10.1105/tpc.5.4.403 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Цай В.К., Сяо И.Ю., Пан З.Дж., Куо К.С., Чен В.Х., Чен Х.Х. Роль этилена в развитии семязачатков орхидей. Растениеводство 2008 г.; 175:98-105; http://dx.doi.org/10.1016/j.plantsci.2008.02.011 [CrossRef] [Google Scholar]

15. Ваннесте С., Фримл Дж. Ауксин: триггер изменений в развитии растений. Клетка 2009 г.; 136:1005-16; PMID: 19303845; http://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2009.03.001 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Reinhardt D, Mandel T, Kuhlemeier C. Ауксин регулирует инициацию и радиальное положение боковых органов растений. Растительная клетка 2000 г.; 12:507-18; PMID: 10760240; http://dx.doi.org/10.1105/tpc.12.4.507 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Сваруп Р., Беннетт М. Транспорт ауксинов: источник жизни в растениях? Ячейка разработчиков 2003 г.; 5:824-6; PMID: 14667404; http://dx.doi.org/10.1016/S1534-5807(03)00370-8 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Балуска Ф., Шлихт М., Фолькманн Д., Манкузо С. Везикулярная секреция ауксина: доказательства и последствия. Поведение сигнала установки 2008 г.; 3:254-6; PMID: 19704646; http://dx.doi.org/10.4161/psb.3.4.5183 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Дхонукше П., Хуанг Ф., Гальван-Ампудиа С.С., Махёнен А.П., Кляйне-Вен Дж., Сюй Дж., Квинт А., Прасад К., Фримл Дж., Шерес Б. и др.. Связанные с плазматической мембраной киназы AGC3 фосфорилируют переносчики ауксина PIN по мотивам TPRXS(N/S), чтобы направлять апикальную рециркуляцию PIN. Разработка 2010 г.; 137:3245-55; PMID: 20823065; http://dx.doi.org/10.1242/dev.052456 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Titapiwatanakun B, Blakeslee JJ, Bandyopadhyay A, Yang H, Mravec J, Sauer M, Cheng Y, Adamec J, Nagashima A, Geisler M и др.. ABCB19/PGP19 стабилизирует PIN1 в мембранных микродоменах арабидопсиса. Завод J 2009 г.; 57:27-44; PMID: 18774968; http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-313X.2008.03668.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Блейксли Дж. Дж., Пир В. А., Мерфи А. С. Ауксиновый транспорт. Карр Опин Растение Биол 2005 г.; 8:494-500; PMID: 16054428; http://dx.doi.org/10.1016/j.pbi.2005.07.014 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Фримл Дж., Пальме К. Полярный транспорт ауксина – старые вопросы и новые концепции? Растение Мол Биол 2002 г.; 49:273-84; PMID: 12036254; http://dx.doi.org/10.1023/A:1015248926412 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Muday GK, DeLong A. Полярный транспорт ауксина: контроль, где и сколько. Тенденции Растениеводство 2001 г.; 6:535-42; PMID: 11701382; http://dx.doi.org/10.1016/S1360-1385(01)02101-X [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Скэнлон М.Дж. Полярный ингибитор транспорта ауксина N-1-нафтилфталаминовая кислота нарушает инициацию листьев, регуляцию белка KNOX и формирование краев листьев у кукурузы. Завод Физиол 2003 г.; 133:597-605; PMID: 14500790; http://dx.doi.org/10.1104/pp.103.026880 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Friml J, Wiśniewska J, Benková E, Mendgen K, Palme K. Боковое перемещение регулятора оттока ауксина PIN3 опосредует тропизм у арабидопсиса. Природа 2002 г.; 415:806-9; PMID: 11845211; http://dx.doi.org/ 10.1038/415806a [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Ардитти Дж., Кнауфт Р.Л. Влияние ауксина, актиномицина D, этионина и пуромицина на поведение цветков Cymbidium (Orchidaceae) после опыления. Ам Джей Бот 1969; 56:620-8; http://dx.doi.org/ 10.2307/2440436 [CrossRef] [Google Scholar]

27. Ардитти Дж., Джеффри Д.С., Флик Б.Х. Явления постопыления цветков орхидей. III. Эффекты и взаимодействия ауксина, кинетина или гиббереллина. Новый Фитол 1971 год; 70:1125-41; http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1971.tb04595.x [CrossRef] [Google Scholar]

28. Кетса С., Висутиамонкул А., ван Доорн В.Г. Ауксин необходим для индуцированного опылением роста завязей у орхидей Дендробиум. Функциональная биология растений 2006 г.; 33:887-92; http://dx.doi.org/10.1071/FP06034 [CrossRef] [Google Scholar]

29. Кетса С., Ругконг А. Производство этилена, старение и чувствительность к этилену цветков Dendrobium ‘Pompadour’ после опыления. J Hortic Sci Biotechnol 2000 г.; 75:149-53 [Google Scholar]

30. Bui AQ, О’Нил С.Д. Три гена 1-аминоциклопропан-1-карбоксилатсинтазы регулируются сигналами первичного и вторичного опыления в цветках орхидеи. Завод Физиол 1998 год; 116:419-28; PMID:9449850; http://dx.doi.org/10.1104/pp.116.1.419[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Бург С.П., Дейкман М.Дж. Участие этилена и ауксина в вызываемом пыльцой увядании цветков орхидеи ванда. Завод Физиол 1967 год; 42:1648-50; PMID: 16656700; http://dx.doi.org/10.1104/pp.42.11.1648 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Tsai WC, Lee PF, Chen HI, Hsiao YY, Wei WJ, Pan ZJ, Chuang MH, Kuoh CS, Chen WH, Chen HH. PeMADS6, GLOBOSA/PISTILLATA-подобный ген у Phalaenopsis equestris, участвующий в формировании лепестков и коррелирующий с продолжительностью жизни цветков и развитием завязей. Физиол растительной клетки 2005 г.; 46:1125-39; PMID: 15890679; http://dx.doi.org/10.1093/pcp/pci125 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Аттри Л.К., Найяр Х., Бханвра Р.К., Пехвал А. Вызванный опылением окислительный стресс в цветочных органах Cymbidium pendulum (Roxb.) Sw. и Cymbidium aloifolium (L.) Sw. (Orchidaceae): биохимическое исследование. Научный Хортик (Амстердам) 2008 г.; 116:311-7; http://dx.doi.org/10.1016/j.scienta.2008.01.009 [CrossRef] [Google Scholar]

34. Аттри Л.К., Найяр Х., Бханвра Р.К., Видж С.П. Цветочное старение орхидей, вызванное опылением: состояние окислительного стресса. Расс Дж. Плант Физиол 2008 г.; 55:821-8; http://dx.doi.org/10.1134/S1021443708060125 [CrossRef] [Google Scholar]

35. Аттри Л.К., Найяр Х., Бханвра Р.К., Видж С.П. Биохимические изменения органов цветка Rhynchostylis retusa (L.) Bl. после опыления. и Aerides multiflora Roxb. (Орхидные). J Растение Биол 2007 г.; 50:548-56; http://dx.doi.org/10.1007/BF03030708 [CrossRef] [Google Scholar]

36. Хью С.С., Тан С.К., Чин Т.И., Онг Т.К. Влияние этилена на активность ферментов и мобилизацию материалов в опыленных цветках орхидеи Арахнис. J Регулятор роста растений 1989 год; 8:121-30; http://dx.doi.org/10.1007/BF02025279[CrossRef] [Google Scholar]

37. Бланшар М.Г., Ранкл Э.С. Бензиладенин способствует цветению орхидей доритаенопсис и фаленопсис. J Регулятор роста растений 2008 г.; 27:141-50; http://dx.doi.org/10.1007/s00344-008-9040-0 [CrossRef] [Google Scholar]

38. Го CJ. Гормональная регуляция цветения у симподиального гибрида орхидей Dendrobium louisae. Новый Фитол 1979 год; 82:375-80; http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1979.tb02663.x [CrossRef] [Google Scholar]

39. Го CJ, Ян А.Л. Влияние регуляторов роста и декапитации на цветение гибридов орхидей Дендробиум. Наука о растениях 1978; 12:287-92; http://dx.doi.org/ 10.1016/0304-4211(78)

-9 [CrossRef] [Google Scholar]

40. Го CJ, Seetoh HC. Верхушечный контроль цветения у гибрида орхидеи Аранда Дебора. [абстрактный]. Энн Бот (Лондон) 1973 год; 37:112-9; http://aob.oxfordjournals.org/content/37/1/113. [Google Scholar]

41. де Мело Феррейра В., Барбанте Кербауи Г., Элизабет Краус Дж., Пескадор Р., Мамору Судзуки Р. Тидиазурон влияет на эндогенные уровни цитокининов и ИУК во время цветения изолированных побегов дендробиума. J Растение Физиол 2006 г.; 163:1126-34; PMID: 17032618; http://dx.doi.org/10.1016/j.jplph.2005.07.012 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Костенюк И, О БЖ, ТАК ЕСТЬ. Индукция раннего цветения Cymbidium niveo marginatum Mak. в пробирке. Представитель растительной клетки 1999 г.; 19:1-5; http://dx.doi.org/10.1007/s0029

701 [CrossRef] [Google Scholar]

43. Го CJ. Регуляция инициации и развития цветков у гибрида орхидеи Аранда Дебора. [абстрактный]. Энн Бот (Лондон) 1977 год; 41:763-9; http://aob.oxfordjournals.org/content/41/4/763. [Google Scholar]

44. Су Ю.Х., Лю Ю.Б., Чжан Х.С. Ауксин-цитокининовое взаимодействие регулирует развитие меристемы. Мол Завод 2011 г.; 4:616-25; PMID: 21357646; http://dx.doi.org/ 10.1093/mp/ssr007 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Виноградова Т, Андронова ЕВ. Глава четвертая — Развитие семян и рассады орхидей. Биология орхидей: обзоры и перспективы VIII: Kluwer Academic Publishers, 2002: 167–234. [Google Scholar]

46. Ли Йи, Хсу С.Т., Юнг Э.К. Протокормоподобные тела орхидей представляют собой соматические зародыши. Ам Джей Бот 2013; 100:2121-31; PMID: 24136821; http://dx.doi.org/10.3732/ajb.1300193 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Ардитти Дж., Гани AKA. Обзор Тэнсли, 110. Численные и физические свойства семян орхидей и их биологические последствия. Новый Фитол 2000 г.; 145:367-421; http://dx.doi.org/10.1046/j.1469-8137.2000.00587.x [CrossRef] [Google Scholar]

48. Yam TW, Yeung EC, Ye X-L, Zee S-Y, Arditti J. Глава шестая — Эмбрионы орхидей. Биология орхидей: обзоры и перспективы VIII. Издательство Kluwer Academic Publishers, 2002 г. ; 287-384. [Google Scholar]

49. Дутра Д., Кейн М.Е., Ричардсон Л. Асимбиотическое прорастание семян и развитие проростков Cyrtopodium punctatum in vitro: протокол размножения местной орхидеи Флориды, находящейся под угрозой исчезновения. Культ органов растительных клеток 2009 г.; 96:235-43; http://dx.doi.org/10.1007/s11240-008-9480-z [CrossRef] [Google Scholar]

50. Ямадзаки Дж., Миёси К. Асимбиотическое прорастание незрелых семян in vitro и образование протокорма с помощью Cephalanthera falcata (Orchidaceae). Энн Бот 2006 г.; 98:1197-206; PMID: 17071633; http://dx.doi.org/ 10.1093/aob/mcl223 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Дутра Д., Джонсон Т.Р., Каут П.Дж., Стюарт С.Л., Кейн М.Е., Ричардсон Л. Асимбиотическое прорастание семян, развитие рассады in vitro и акклиматизация в теплице наземной орхидеи Bletia purpurea, находящейся под угрозой исчезновения. Культ органов растительных клеток 2008 г.; 94:11-21; http://dx.doi.org/10.1007/s11240-008-9382-0 [CrossRef] [Google Scholar]

52. Новак С.Д., Пардивала Р.С., Грей Б.Л. Изучение индуцированного NaOCl некроза показывает, что только половина зародыша требуется для приживания проростков у Spathoglottis plicata. Линдлеяна 2008 г.; 21:32-8 [Google Scholar]

53. Лим В.Л., Лох К.С. Эндополиплоидия у Ванда Мисс Хоаким (Orchidaceae). Новый Фитол 2003 г.; 159:279-87; http://dx.doi.org/10.1046/j.1469-8137.2003.00797.x [CrossRef] [Google Scholar]

54. Хэдли Г., Харвэйс Г. Влияние некоторых ростовых веществ на асимбиотическое прорастание и развитие Orchis purpurella. Новый Фитол 1968 год; 67:441-5; http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1968.tb06393.x [CrossRef] [Google Scholar]

55. Шарма СК, Тандон П. Влияние регуляторов роста на асимбиотическую всхожесть и раннее развитие проростков Coelogyne punctulata Lindl. Биология, охрана и культура орхидей. Доклады, представленные на национальном семинаре, организованном Индийским обществом орхидей, Пенджабский университет, 1986:441-51. [Google Scholar]

56. Деб Ч.Р., Понгенер А. Асимбиотическое прорастание семян и развитие проростков in vitro Cymbidium aloifolium (L.) Sw.: многофункциональная орхидея. J Плант Биохим Биотехнолог 2011 г.; 20:90-5; http://dx.doi.org/10.1007/s13562-010-0031-4 [CrossRef] [Google Scholar]

57. Хэдли Г. Взаимодействие кинетина, ауксина и других факторов в развитии орхидей северного умеренного пояса. Новый Фитол 1970 г.; 69:549-55; http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1970.tb07607.x [CrossRef] [Google Scholar]

58. Furutani M, Vernoux T, Traas J, Kato T, Tasaka M, Aida M. PIN-FORMED1 и PINOID регулируют формирование границ и развитие семядолей в эмбриогенезе арабидопсиса. Разработка 2004 г.; 131:5021-30; PMID: 15371311; http://dx.doi.org/10.1242/dev.01388 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Рой Дж., Банерджи Н. Индукция каллуса и регенерация растений из эксплантов верхушек побегов Dendrobium fimbriatum Lindl Var. глазчатый Hk. ф. Научный Хортик (Амстердам) 2003 г.; 97:333-40; http://dx. doi.org/10.1016/S0304-4238(02)00156-5 [CrossRef] [Google Scholar]

60. Чен Дж., Чанг В. Эффективная регенерация растений посредством соматического эмбриогенеза из каллусных культур Oncidium (Orchidaceae). Растениеводство 2000 г.; 160:87-93; PMID: 11164580; http://dx.doi.org/10.1016/S0168-9452(00)00367-8 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Хуан ЛВТ, Такамура Т., Танака М. Формирование каллуса и регенерация растений из каллуса через соматические зародышевые структуры у орхидеи Цимбидиум. Растениеводство 2004 г.; 166:1443-9; http://dx.doi.org/10.1016/j.plantsci.2004.01.023 [CrossRef] [Google Scholar]

62. Тенг В.Л., Николсон Л., Тенг М.С. Микроразмножение Spathoglottis plicata. Представитель растительной клетки 1997 год; 16:831-5; http://dx.doi.org/10.1007/s0029

329 [CrossRef] [Google Scholar]

63. Хоссейн М.М., Дей Р. Множественные пути регенерации у Spathoglottis plicata Blume — исследование in vitro. S Afr J бот 2013; 85:56-62; http://dx.doi.org/10. 1016/j.sajb.2012.12.005 [CrossRef] [Google Scholar]

64. Куо Х.Л., Чен Д.Т., Чанг В.К. Эффективная регенерация растений посредством прямого соматического эмбриогенеза из листовых эксплантов фаленопсиса «Маленький Стив». В пробирке Завод Cell Dev Biol 2005 г.; 41:453-6; http://dx.doi.org/ 10.1079/IVP2005644 [CrossRef] [Google Scholar]

65. Чен Дж.Т., Чанг В.К. TIBA влияет на индукцию прямого соматического эмбриогенеза из листовых эксплантов Oncidium. Культ органов растительных клеток 2004 г.; 79:315-20; http://dx.doi.org/10.1007/s11240-004-4613-5 [CrossRef] [Google Scholar]

66. Смит РС. Роль транспорта ауксина в механизмах формирования паттерна растений. ПЛОС Биол 2008 г.; 6:е323; PMID: 19090623; http://dx.doi.org/10.1371/journal.pbio.0060323 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Танака Х., Дхонукше П., Брюэр П. Б., Фримл Дж. Пространственно-временное асимметричное распределение ауксина: средство координации развития растений. Cell Mol Life Sci 2006 г. ; 63:2738-54; PMID: 17013565; http://dx.doi.org/10.1007/s00018-006-6116-5 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Харвейс Г. Улучшенная питательная среда для выращивания орхидеи Cypripedium reginae в аксиальной форме. Может Джей Бот 1982 год; 60:2547-55; http://dx.doi.org/ 10.1139/b82-309 [CrossRef] [Google Scholar]

69. Peres LEP, Kerbauy GB. Высокое накопление цитокинина после удаления кончика корня изменяет отношение эндогенного ауксина к цитокинину во время преобразования корня в побег у Catasetum fimbriatum Lindl (Orchidaceae). Представитель растительной клетки 1999; 18:1002-6; http://dx.doi.org/10.1007/s0029

698 [CrossRef] [Google Scholar]

70. Фариа ДК, Диас АКФ, Мело И.С., де Карвалью Коста ФЭ. Эндофитные бактерии, выделенные из орхидей, и их способность стимулировать рост растений. World J Microbiol Биотехнология 2013; 29:217-21; PMID: 23014841; http://dx.doi.org/10.1007/s11274-012-1173-4 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Хейслер М.Г. , Оно С., Дас П., Зибер П., Редди Г.В., Лонг Дж.А., Мейеровиц Э.М. Паттерны транспорта ауксина и экспрессии генов во время развития примордия, выявленные с помощью живой визуализации меристемы соцветия арабидопсиса. Карр Биол 2005 г.; 15:1899-911; PMID: 16271866; http://dx.doi.org/10.1016/j.cub.2005.09.052 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

72. Алони Р., Алони Э., Лангханс М., Ульрих С.И. Роль цитокинина и ауксина в формировании архитектуры корня: регуляция дифференцировки сосудов, инициация латерального корня, апикальное доминирование корня и гравитропизм корня. Энн Бот 2006 г.; 97:883-93; PMID: 16473866; http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcl027 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Панвар Д., Рам К., Шехават ХНС. Размножение in vitro Eulophia nuda Lindl., находящейся под угрозой исчезновения орхидеи. Научный Хортик (Амстердам) 2012 г.; 139:46-52; http://dx.doi.org/10.1016/j.scienta.2012.01.011 [CrossRef] [Google Scholar]

74. Мохапатра А, Раут ГР. Микроразмножение Geoderum purpureum in vitro R. Br Ind J Biotech 2005 г.; 4:568-70 [Google Scholar]

75. Малабади РБ, Малгунд ГС, Натараджа К. Эффективная регенерация Vanda coerulea, находящейся под угрозой исчезновения орхидеи, с использованием тидиазурона. Культ органов растительных клеток 2004 г.; 76:289-93; http://dx.doi.org/10.1023/B:TICU.0000009255.69476.b7 [CrossRef] [Google Scholar]

76. Чжан Н.Г., Юн Дж.В.Х., Хью С.С., Чжоу С. Производство цитокинина, абсцизовой кислоты и ауксина воздушными корнями орхидеи САМ. J Растение Физиол 1995; 147:371-7; http://dx.doi.org/10.1016/S0176-1617(11)82170-X [CrossRef] [Google Scholar]

77. Рафик Р., Фатима Б., Муштак С., Икбал М.С., Рашид М., Али М., Хасан СЗУ. Влияние индол-3-масляной кислоты (IBA) на индукцию корней in vitro у орхидеи Dendrobium (Dendrobium sabin H.). Afr J Биотехнология 2012 г.; 11:4673-5; http://dx.doi.org/10.5897/AJB11.2319 [CrossRef] [Google Scholar]

78. Асгар С., Ахмад Т., Хафиз И.А., Ясин М. Размножение in vitro орхидеи (Dendrobium nobile) var. Эмма Уайт. Afr J Биотехнология 2011 г.; 10:3097-103; http://dx.doi.org/10.5897/AJB10.401 [CrossRef] [Google Scholar]

79. Чутима Р., Лумён С. Производство индол-3-уксусной кислоты местными тайскими грибами, связанными с орхидеями. Симбиоз 2012 г.; 56:35-44; http://dx.doi.org/10.1007/s13199-012-0158-2 [CrossRef] [Google Scholar]

80. Цавкелова Е.А., Чердынцева Т.А., Ботина С.Г., Нетрусов А.И. Бактерии, связанные с корнями орхидей и микробной продукцией ауксина. Микробиологический Рез 2007 г.; 162:69-76; PMID: 17140781; http://dx.doi.org/10.1016/j.micres.2006.07.014 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. Галдиано РФ-младший, Педриньо EAN, Кастеллан TCL, Лемос EGDM. Бактерии, продуцирующие ауксин, выделенные из корней Cattleya walkeriana, бразильской орхидеи, находящейся под угрозой исчезновения, и их роль в акклиматизации. R Бюстгальтер Си Соло 2011 г.; 35:729-37; http://dx.doi.org/10.1590/S0100-06832011000300008 [CrossRef] [Google Scholar]

82. Шимасаки К., Уэмото С. Микроразмножение наземных видов Cymbidium с помощью корневищ, развившихся из семян и псевдобульб. Культ органов растительных клеток 1990; 22:237-44; http://dx.doi.org/10.1007/BF00033642 [CrossRef] [Google Scholar]

83. Шелавантмат С.С., Мурти Х.Н., Пяти А.Н., Ашок Кумар Х.Г., Равишанкар Б.В. Размножение in vitro находящейся под угрозой исчезновения орхидеи Geodorum densiflorum (Lam.) Schltr. через корневищную культуру. Культ органов растительных клеток 2000 г.; 60:151-4; http://dx.doi.org/10.1023/A:1006426905052 [CrossRef] [Google Scholar]

84. Бапат В.А., Нараянасвами С. Ризогенез в культуре тканей орхидеи спатоглоттис. Бот-клуб Булл Торри 1977; 104:2-4; http://dx.doi.org/ 10.2307/2484656 [CrossRef] [Google Scholar]

85. Пэк К.И., Юнг Э.К. Влияние 1-нафталин-уксусной кислоты и N6-бензиладенина на рост корневищ Cymbidium forrestii in vitro. Культ органов растительных клеток 1991 год; 24:65-71; http://dx.doi.org/10.1007/BF00039732 [CrossRef] [Google Scholar]

86. Рой Дж., Банерджи Н. Развитие корневищ и побегов при размножении in vitro Geodorum densiflorum (Lam.). Шлтр. Научный Хортик (Амстердам) 2002 г.; 94:181-92; http://dx.doi.org/10.1016/S0304-4238(01)00373-9 [CrossRef] [Google Scholar]

87. Трау М.Б., Бергельсон Дж. Интерактивные эффекты жасмоновой кислоты, салициловой кислоты и гиббереллина на индукцию трихом у арабидопсиса. Завод Физиол 2003 г.; 133:1367-75; PMID: 14551332; http://dx.doi.org/10.1104/pp.103.027086 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Исида Т., Курата Т., Окада К., Вада Т. Генетическая регуляторная сеть в развитии трихом и корневых волосков. Анну Рев Растение Биол 2008 г.; 59:365-86; PMID: 18257710; http://dx.doi.org/10.1146/annurev.arplant.59.032607.092949 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

89. Chang C, Чен YC, Йен HF. Протокорм или корневище? Морфология прорастания семян Cymbidium dayanum Reichb. Бот Бык Акад Син 2005 г.; 46:71-4 [Google Scholar]

90. Варкап Дж. Х. Rhizanthella gardneri (Orchidaceae), ее эндофит Rhizoctonia и тесная связь с Melaleuca uncinata (Myrtaceae) в Западной Австралии. Новый Фитол 1985 год; 99:273-80; http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1985.tb03656.x [CrossRef] [Google Scholar]

91. Грисбах Р.Дж. Использование индолацетиламинокислот в размножении in vitro орхидей фаленопсис. Научный Хортик (Амстердам) 1983 год; 19:363-6; http://dx.doi.org/ 10.1016/0304-4238(83)

-7 [CrossRef] [Google Scholar]

92. Токухара К., Мии М. Микроразмножение фаленопсисов и доритаенопсисов путем культивирования кончиков побегов бутонов цветочных стеблей. Представитель растительной клетки 1993 год; 13:7-11; PMID: 24196174; http://dx.doi.org/10.1007/BF00232306 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

93. Моханти П., Пол С., Дас К.М., Кумария С., Тандон П. Простой и эффективный протокол массового размножения Cymbidium mastersii: декоративной орхидеи Северо-Восточной Индии. АоБ растения 2012 г.; 2012pls023; PMID: 22997547; http://dx. doi.org/ 10.1093/aobpla/pls023 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

94. Чанг С, Чанг В.К. Регенерация растений из каллусной культуры Cymbidium ensifolium var. скряга. Представитель растительной клетки 1998 год; 17:251-5; http://dx.doi.org/10.1007/s0029

387 [CrossRef] [Google Scholar]

95. Насируддин К.М., Бегум Р., Ясмин С. Протокормоподобные тела и регенерация проростков из каллюса листьев Dendrobium formosum. Как J. Plant Sci 2003 г.; 2:955-7 [Google Scholar]

96. Рахман М.С., Хасан М.Ф., Дас Р., Хоссейн М.С., Рахман М. Микроразмножение in vitro орхидеи (Vanda tessellate L.) из эксплантата верхушки побега. Джей Биоски 2009 г.; 17:139-44 [Google Scholar]

97. Огура-Цуджита Ю, Окубо Х. Стимулирование образования побегов in vitro из протокормоподобных тел гибрида тропических и умеренных видов Cymbidium. J Jpn Soc Hortic Sci 2006 г.; 75:334-6; http://dx.doi.org/10.2503/jjshs.75.334 [CrossRef] [Google Scholar]

98. Чен Т.И.