Мозаика малины фото и их лечение: меры борьбы, как и чем лечить

Содержание

меры борьбы, как и чем лечить

Содержимое

  • 1 Описание и виды мозаики
  • 2 Причины появления
  • 3 Как избавиться от мозаики на малине
    • 3.1 Биопрепараты
    • 3.2 Химические препараты
    • 3.3 Народные методы борьбы
  • 4 Сорта малины, устойчивые к мозаике
    • 4.1 Краса России
    • 4.2 Геракл
    • 4.3 Рубин
  • 5 Профилактические меры
  • 6 Заключение

Многие сорта и гибриды малины отличаются общей выносливостью, включающей высокую сопротивляемость патогенной микрофлоре. Но полностью от заболеваний культура не застрахована. Одно из них – мозаика малины.

Описание и виды мозаики

Мозаичная болезнь, или мозаика малины, – собирательное название для группы заболеваний. Они имеют общий основной симптом – «пестроту» окраски листовых пластин, на которых участки с нормальной расцветкой чередуются с бледно-зелеными, почти белыми или желтыми.

Мозаика малины кусты не убьет, но и «вылечиться» самостоятельно или с помощью садовода они тоже не могут

Наиболее распространенные виды мозаики малины – крапчатость, кольцевая пятнистость и желтая сетчатость (либо хлоротичная пятнистость). В первом случае на общем зеленом фоне появляются мелкие желтые пятна, во втором – концентрические круги, в третьем – желтеет вся листовая пластина, зеленым «выделяются» только прожилки.

Желтую сетчатость легко перепутать с неинфекционной болезнью – хлорозом

Есть у мозаики малины и «сопутствующие» признаки:

  • очень медленное развитие куста или его полная остановка, постепенное снижение его высоты;
  • минимум прикорневой поросли, побегов замещения, постепенное вырождение и деформация «отпрысков»;
  • истончающиеся, искривленные молодые побеги;
  • «упрощение» формы листовых пластин, их асимметричность, «бугорчатость», «огрубление», шершавость на ощупь;
  • отмирающие верхушки побегов;
  • очень низкая урожайность, мелкие, сухие, почти «деревянные» ягоды, лишенные типичного вкуса и аромата.

Затронутые заболеванием листья постепенно деформируются

Важно! Наиболее ярко симптомы вируса мозаики малины проявляются в первой половине июня. К концу лета отмечается визуальное «улучшение» их состояния, но к середине осени проблема вновь усугубляется.

Причины появления

В большинстве случаев возбудителей разных видов мозаики разносят вредители, атакующие кусты малины:

Может стать разносчиком вируса малины и сам садовод, пренебрегающий дезинфекцией инвентаря и инструментов. Также он распространяет заболевание, пересаживая прикорневую поросль от зараженных вирусом мозаики малины кустов или прививая черенки от них на здоровые растения.

При наличии в малиннике хотя бы одного зараженного куста вирус мозаики малины распространяется очень быстро. Достаточно контакта листьев или побегов больного и здорового растений – микроповреждения на них есть практически всегда.

Важно! Семена, полученные из ягод, собранных с зараженных кустов малины, уже «несут в себе» вирус мозаики. Сеянцы из них изначально больны.

Как избавиться от мозаики на малине

Несмотря на детальное описание различных форм вируса и процесса болезни, сведений о его происхождении и «жизнедеятельности» нет. Поэтому способов лечения мозаики малины не разработано. Против любых вирусов бессильны как агрохимикаты, так и препараты биологического происхождения, не говоря уже о народных средствах.

Биопрепараты

Биопрепараты в борьбе с мозаикой малины могут использоваться только косвенно, для улучшения качества субстрата. Опыт садоводов свидетельствует, что заболевание намного реже проявляется на участках, где грунт регулярно обрабатывается ЭМ-препаратами.

Это микробиологические средства, содержащие молочнокислые, фотосинтезирующие, азотфиксирующие бактерии. Они «помогают» растениям лучше усваивать питательные вещества из грунта, что способствует укреплению их иммунитета и общей выносливости.

Содержащиеся в ЭМ-препаратах бактерии «угнетают» патогенную микрофлору в почве

Химические препараты

Агрохимикаты против мозаики на малине бессильны, но с их помощью можно бороться с насекомыми, распространяющими вирус. Проще всего избавиться от тли и клопов – здесь помогут любые универсальные инсектициды широкого спектра действия. Паутинный клещ – не насекомое, поэтому против него применяют иные препараты – акарициды и инсектоакарициды. Для борьбы с нематодой, распространяющей вирус мозаики малины, тоже есть специализированные химикаты. Большинство из них пролонгированного действия, их вносят в почву при посадке.

Химикаты нельзя применять, если до сбора урожая остается меньше времени, чем указано в инструкции

Народные методы борьбы

Народные средства – альтернатива инсектицидам и другим агрохимикатам. Но они будут эффективны против тли, только если вредители замечены вовремя и не успели расплодиться массово. Также их применяют, чтобы не дать насекомым, разносящим вирус мозаики малины, «заселиться» на кусты. Нематоды, клопы и паутинные клещи к народным средствам маловосприимчивы.

Что можно использовать против тли, разносящей вирус мозаики малины:

  • растения с резким ароматом, окружающие грядку по периметру или приготовленные из срезанной зелени настои;
  • сильно пахнущие жидкости;
  • горчичный порошок, табачную пыль, молотый жгучий перец;
  • пена хозяйственного, дегтярного, зеленого калийного мыла.

Важно! Тля и муравьи существуют в устойчивом симбиозе. При наличии на участке муравейников избавиться от вредителя, разносящего вирус мозаики малины, практически невозможно.

Сорта малины, устойчивые к мозаике

Сортов и гибридов малины, гарантированно не заражающихся вирусом мозаики, не существует. Однако ее разновидности, отличающиеся общей выносливостью, неприхотливостью в уходе и высокой холодоустойчивостью, поражаются им сравнительно редко.

Краса России

Крупноплодный, высокоурожайный сорт. Кусты высотой 1,5-2 м, не раскидистые. Ягоды удлиненно-конические, одномерные (10-12 г), очень сладкие и ароматные. Мякоть сочная, относительно плотная, семена некрупные. Урожайность – 4-5 кг с куста.

Малина Краса России переносит холода до -35 °С, но очень негативно относится к переувлажнению грунта

Геракл

Ремонтантный крупноплодный сорт. Кусты слабо раскидистые, высотой до 1,5 м, «неохотно» формирующие побеги замещения. Стебли мощные, по всей длине густо усеяны шипами. Ягоды в форме усеченного широкого конуса, весом 5-6 г (отдельные экземпляры – до 10-12 г). Вкус, аромат и цвет – стандартно «малиновый», ничего особо выдающегося.

Малина Геракл ценится за очень неплохую для культуры лежкость и транспортабельность

Рубин

Среднепоздний сорт малины. Кусты слабо раскидистые, достигают высоты 1,8 м. Побеги очень мощные, шипы на них редкие. Ягоды тупоконические, среднего размера (3,5-4 г), от плодоножки отделяются легко. Сорт ценится за стабильную урожайность (около 2 кг с куста) и отменные вкусовые качества.

Малина Рубин выведена в Болгарии, поэтому иногда встречается в продаже под названием «Болгарский рубин»

Важно! Есть и сорта малины, страдающие от вируса мозаики чаще других. К ним относятся Кинг, Мальборо, Виктория, Латам.

Профилактические меры

Чтобы минимизировать риск заражения малины вирусом мозаики, профилактике нужно уделять время регулярно. Действенные меры:

  1. Высадка районированных сортов и гибридов малины, отличающихся общей «стрессоустойчивостью» и хорошим иммунитетом.
  2. Приобретение посадочного материала у заслуживающих доверия поставщиков, способных гарантировать его качество.
  3. Систематическая борьба с сосущими и листогрызущими вредителями.
  4. Регулярная прополка малины.
  5. Ежегодная обрезка.
  6. Соблюдение севооборота.
  7. Уничтожение дикорастущей малины на участке. Она почти всегда заражена вирусом мозаики и тлей.

Обрезка необходима для предотвращения загущения куста – многие сорта и гибриды склонны к активному побегообразованию

Важно! Явно пораженные вирусом мозаики кусты малины нельзя жалеть. Их выкорчевывают и сжигают.

Заключение

Мозаика малины – собирательное название группы вирусных заболеваний, не поддающихся лечению современными средствами. Однако садовод может минимизировать риск их развития с помощью грамотной и регулярной профилактики. В запущенных случаях от кустов нужно избавляться незамедлительно.

Мозаика малины — Страница 2

  • болезни
  • вирусы

Содержание материала

  • Вирусные и вирусоподобные болезни малины и ежевики
  • Мозаика малины
  • Жилковый хлороз малины
  • Курчавость листьев малины
  • Вирус огуречной мозаики на малине
  • Вирусная кольцевая пятнистость малины душистой
  • Карликовость ежевики
  • Карликовость растений rubus

Страница 2 из 8

МОЗАИКА МАЛИНЫ (RASPBERRY MOSAIC)
Р. Конверс, Р. Стейс-Смит, К. Кадмен
Определение. Мозаика малины рассматривается как категория заболеваний, включающая те вирусные болезни Rubus, которые: а) переносятся между растениями-хозяевами Rubus тлями Amphorophora rubi (Kalt. ) и A. agathonica Hottes*  и б) вызывают шоковые симптомы, состоящие из некротизации верхушек побегов и (или) крапчатости, если переносятся на чувствительные клоны Rubus henryi Hemsl. et Kuntze или R. occidentalis L. Вирусы хлороза жилок [32] и желтухи [34] не рассматриваются как часть группы вирусов мозаики малины, поскольку они не передаются тлями Amphorophora.

Синонимы. Большое разнообразие симптомов на различных растениях-хозяевах Rubus, вызываемых вирусами, более или менее соответствующих приведенному выше определению, приводит к необычно большому числу названий болезни. Многие из этих названий являются местными или относятся к заболеваниям, для которых мало известно о вирусах возбудителях.
Так как источники многих болезней, описанных в литературе, отсутствуют, невозможно отнести их к любой из трех больших категорий групп мозаики малины, перечисленных ниже. Поэтому они разбиты на четыре категории. Мы рассматриваем мозаику малины, включающую расстройства, вызываемые: 1) термолабильными компонентами мозаики; 2) термостабильными компонентами мозаики; 3) комплексной инфекцией, в которую вовлечены термолабильный и термостабильный компоненты, давая начало обыкновенной мозаике малины; 4) изолятами неизвестной термостабильности.

*Amphorophora agathonica Hottes — вид тлей, к которому Л. Руссель (персональное сообщение) отнесены все коллекции североамериканских тлей, прежде определенные как A. rubi (Kalt.). Поскольку размещение этих видов тлей является предварительным или временным, A. agathonica в дальнейшем в этой части справочника будет указываться как A. agathonica (?).

1. Термолабильные компоненты мозаики (ТЛКМ) [66] Некроз черной малины (НЧМ) [220] Крапчатость листьев малины [31] Пятнистость листьев малины [35] Хлоротичная пятнистость листьев малины [150]

  1. Термостабильные компоненты мозаики (ТСКМ)

Желтая мозаика [11]
Желтая сетчатость Rubus (ВЖСР) [219]

  1. Обыкновенная мозаика малины

Это болезнетворный комплекс, обусловленный присутствием обоих (термолабильного и термостабильного) вирусов мозаики.
Мозаика малины = вирус некроза черной малины плюс вирус желтой сетчатости Rubus [221], или = ТЛКМ плюс ТСКМ.
Окаймление жилок [33] = мозаика малины в понимании Стейс-Смита [45].

  1. Свойства термостабильности не известны

Зелено-крапчатая мозаика=зеленая мозаика [76])
Мозаика малины I [110]
Мозаика малины II (слабая) [110]
Мозаика малины II (сильная) [110]
Пятнистая мозаика [193]
Окаймление жилок [198]
Тринадцать различных типов мозаики, основанных на симптомах [125]
Вопросы о взаимоотношениях среди многих перечисленных мозаичных заболеваний и действительном числе вовлеченных вирусов могут быть решены лишь после дальнейшего определения свойств отдельных вирусов.

История и географическое распространение. В Европе, где малина культивируется с середины XVI в., на дикой малине, удаленной от культивируемых сортов Rubus, часто обнаруживают мозаику. Это же относится к восточной части Северной Америки, где малина стала возделываться только 200 лет назад.
С 1900 по 1920 г. в Северной Америке мозаику и курчавость листьев смешивали между собой и часто относили к одной болезни «желтухе». Мозаика была четко отделена от курчавости листьев в 1920-х годах. Ранние статьи о мозаике малины были опубликованы Беннетом [11], Харрисом [108, 110] и Стейс-Смитом [221]. Уилкокс и Смит [255] были.первыми, кто доказал, что Amphorophora agathonica (?) является переносчиком мозаики. Aphis rubicola Oestlund (= rubiphila Patch) также рассматривалась некоторыми учеными как переносчик. В классической статье Беннетт [11] показал, что A. rubicola не служит переносчиком вируса мозаики малины.
Мозаика малины в широком смысле встречается везде на выращиваемых сортах Rubus, особенно на красной, черной и пурпуровой малине. Симптомы не везде одни и те же. Часто этим заболеваниям даются специфические названия, поскольку они встречаются в данном районе в зависимости от выращиваемых сортов и имеющихся штаммов вируса. Мозаика малины, очевидно, не так широко распространена в Калифорнии, Орегоне и Вашингтоне, как в остальных штатах США.
Экономическое значение. Сообщений о влиянии мозаики малины или ее компонентов на рост и урожай малины очень мало [66]. Урожай ягод у двух сортов красной малины на востоке США снижался под воздействием ТЛКМ на 53% по сравнению с клонами, свободными от мозаики [66]. Подобные данные по красной малине из Шотландии [262] показывают, что по крайней мере вначале отсутствие вирусов мозаики сказывается на усилении энергии роста и повышении потенциальной урожайности. Нет точных данных о влиянии мозаики на рост и урожайность черной или пурпуровой малины и ежевики. Однако, по общим наблюдениям, вегетативный рост, урожай и качество ягод черной малины ухудшаются под влиянием мозаичной инфекции, тогда как вред пурпуровой малине и ежевике незначителен.
Круг растений-хозяев
Естественные растения-хозяева
Rubus, subgenus Idaeobatus
R. idaeus L., широко распространена R. innominatus S. Moore [254] R. leucodermis Dougl. [140, 265]
R. occidentalis L. и гибриды с красной малиной, широко распространены R. odoratus L. [265] R. parviflorus Nutt. [265]
R. phoenicolasius Maxim., обычный дикий хозяин, локально [63, 265] R. spectabilis Pursh [265]
R. idaeus L. var strigosus (Michx.) Maxim., широко распространена
Rubus, subgenus Eubatus
R. laciniatus Willd. [265, Кадмен; не опубликовано] R. loganobaccus Bailey [265] R. macropetalus Dougl. [265]
R. procerus P. J. Muell. [219, Кадмен, не опубликовано]
Rubus species
Различные названные и не имеющие названия, культивируемые и дикие, прямостоячие и стелющиеся виды ежевики [11, Кадмен, не опубликовано]. Нет сообщений о том, чтобы естественными хозяевами были растения вне рода Rubus.
Экспериментальные хозяева
Семейство Rosaceae при прививке или с участием переносчика Rubus albescens Roxb. [2191
R. henryi Hemsl. et Kuntze [31, Чамберс; не опубликовано] R. elliplicus Smith [Конверс; не опубликовано] R. saxatilis L. [31]
Fragaria vesca L. (только для B)KCR) [229] Травянистые растения-хозяева при передаче соком (только ТЛКМ) [11, 110, 125, 248]
Chenopodium amaranticolor Coste et Reyn [44]
C. quinoa Willd.
[44, 198]
Datura stramonium L. [44]
Petunia hybrida Vilm. [44]
Vigna sinensis (Tomer) Savi, использованный Фултоном (102) в качестве экспериментального хозяина для мозаики малины, был, вероятно, инфицирован вместо мозаики вирусом кольцевой пятнистости томата.
До тех пор пока исследователи смогут переносить вирус с травянистых тест-растений обратно на малину и вызывать характерные симптомы мозаики, эти сообщения должны рассматриваться только как обнадеживающие, но предварительные данные о новых травянистых хозяевах вирусов мозаики малины. Всегда следует иметь в виду, что имеются латентные, переносимые семенами вирусы Rubus, которые легко передаются соком на Chenopodium quinoa, но не переносятся тлей Amphorophora agathonica (?) [71, 74].
Симптомы. Неблагоприятные погодные условия, особенно поздние весенние заморозки, иногда способствуют образованию крапчатости на листьях плодоносящих побегов, которая очень похожа на мозаику [11]. Однако листья молодых побегов, развившиеся в конце весны, обычно выглядят нормальными.
Мучнистая роса также может иммитировать симптомы мозаики на листьях, но гриб-возбудитель образует белый мучнистый налет и водянистые участки на нижней стороне листа. На симптомы мозаики малины могут также походить повреждения листьев, вызванные инвазией красного клеща, или тлей Amphorophora rubitoxica Knowlton [217], или опрыскиванием определенными фунгицидами, или симптомы недостаточности бора в почве [170].
Разнообразие симптомов очень характерно для мозаики, даже на одном сорте Rubus. Географическое местоположение, условия вегетационного сезона и особенности сорта влияют на проявление симптомов. Имеется обширная литература о варьировании симптомов мозаики малины, но мало критических сведений о их этиологии. Какими вирусами вызываются мозаичные болезни Rubus, покажут будущие исследования, когда будут разработаны улучшенные методы идентификации вирусов. Симптомы, вызываемые некоторыми изолятами вируса мозаики, уже описывались в Великобритании Харрисом [108, 110], Прентисом и Харрисом [191], Кадменом [31, 33, 35] и в Северной Америке Беннеттом [11], Ранкином [195, 196], Шумейкером и др.
[209], Стейс-Смиттом [219, 220, 221].
Ниже приведено описание симптомов мозаики малины, встречающейся в Северной Америке.
Термолабильные компоненты мозаики (TJ1KM). Черная малина, вероятно, является культурой, которая наиболее сильно поражается как термолабильными, так и термостабильными компонентами вируса мозаики. Первоначальный некроз верхушечных листьев и верхушек побегов (рис. 63, вверху), вызываемый ТЛКМ, сопровождается крапчатостью нижних листочков (рис. 63, внизу). Хронически инфицированные растения могут развивать мелкие, крапчатые листья на карликовых побегах. Новые побеги могут образовывать розетку. Степень проявления первоначальной некротической реакции варьирует от незаметной до интенсивной [70]. Крапчатость также может варьировать от слабой до сильной; низкие температуры способствуют проявлению симптомов [11].
Красная малина. Симптомы неотчетливые. Как начальные, так и хронические симптомы варьируют от слабых хлоротических пятен вдоль боковых жилок до полного их отсутствия. Неясная крапчатость может развиваться на новом, весеннем приросте. Многие из основных сортов красной малины в Северной Америке сплошь инфицированы [64, 220]; такое же положение, вероятно, наблюдается и в Европе. Энергия роста у зараженных растений снижается, основное влияние заключается в уменьшении числа побегов на единицу площади. Густота стояния растений сорта Ньюбург, пораженного ТЛКМ, составила 49% от таковой здоровых растений [66].


Рис. 63. Вверху — симптомы начальной инфекции на побеге сорта Мюнгер, пораженного вирусом некроза черной малины, который является термолабильным компонентом вируса мозаики. Внизу — хроническая крапчатость листа, развивающаяся после вышеуказанных симптомов.  

Ежевика. Немного работ проведено по изучению вирусов мозаики на ежевике. Изредка наблюдалась резкая крапчатость. Установлено, что некоторые растения, зараженные ТЛКМ, были бессимптомными, как определено индексацией на Rubus henryi и тепловой обработкой [219, Конверс; не опубликовано].
Термостабильные компоненты мозаики (ТСКМ). Эта группа вирусов, по крайней мере на североамериканских сортах красной малины, в естественных условиях почти всегда встречается вместе с ТЛКМ [66, 221]. Поэтому описываемые здесь симптомы выявлены при экспериментальном заражении.
Черная малина. Первоначальные симптомы представляют собой расплывчатые хлоротичные пятна вдоль жилок на субтерминальных листочках. Эти пятна сливаются с хлорозом жилок, образуя сплошной, обычно асимметричный, сетевидный узор, который приводит к некоторой деформации листьев (рис. 64, слева) [221]. «Желтая мозаика» может быть выражением хронических симптомов ТСКМ на черной малине, но анализ симптомов и изучение термотерапии отсутствуют. Симптомы желтой мозаики в полевых условиях описаны Беннеттом [11]: больные растения карликовые и слабые; листья отчетливо желтые, и края их могут закручиваться вниз, но на листьях не проявляются крапчатость и пузырчатые участки. Симптомы сохраняются в жаркую погоду. Ягоды на таких растениях семенистые, крошащиеся и негодные для употребления. Зараженные растения живут недолго.
Красная малина. Шоковые симптомы не развиваются. Хронические симптомы выражены бледным, сетевидным хлорозом жилок и слабой чашевидностью листочков (рис. 64, в центре). Болезнь мало отражается на росте растений и их урожае [221].

Рис. 64. Слева и в центре — листья черной малины и красной малины сорта Вашингтон, зараженные вирусом желтой сетчатости малины, термостабильным компонентом вируса мозаики. Справа — симптомы мозаики малины (ТЛКМ+ТСКМ) на листе красной малины сорта Кутберт.
Ежевика. Желтая сетчатость: первый вирус из группы ТСКМ был выделен и описан [219] с инфицированных в естественных условиях растений ежевики сорт Гималайя (Rubus procerus P. J. Muell.), на которых он вызывал ярко-желтое посветление жилок, часто развивающееся асимметрично на листьях, и чашевидность листочков. Вегетативный рост и урожайность заметно не снижались. Термостабильные компоненты мозаики были обнаружены только однажды в питомнике ежевики в 1966 г. на растениеводческой станции в Белтсвилле, штат Мэриленд (Конверс; не опубликовано) .
Обыкновенная мозаика малины. Черная малина. Весной зараженные растения покрываются листвой на несколько дней позднее, чем здоровые растения [78]. Верхушки побегов часто некротические и ломкие. Побеги короткие и расположены розетками, хотя рост может быть нормальным во время жаркой погоды. Ягоды мелкие и семенистые. Растения обычно отмирают в течение нескольких лет.
Красная малина. Листья, образовавшиеся в холодную погоду, крапчатые, пузырчатые и искривленные (рис. 64, справа). Листья, развившиеся в жаркую погоду, могут быть бессимптомными. Вегетативный рост снижается, а урожай и качество ягод ухудшаются [221].
Ежевика. См. ТЛКМ. Сильнокрапчатые листья иногда встречаются на культивируемых и диких растениях ежевики как в США, так и в Европе, но анализ симптомов не проводили.
Характеристика вируса. Не было технических описаний вирусов, известных в качестве возбудителей мозаики малины. Кадмен [45] сообщил о неокончательных результатах опытов по перекрестной защите между термолабильными компонентами мозаики, хотя ранее он полагал [33], что только опыты подобного рода могут установить взаимоотношения между вирусами малины. Стейс-Смит [218] решил; что два штамма вируса мозаики (вероятно, ТЛКМ) не полностью защищают один от другого, но присутствие слабого штамма вызывало задержку развития симптомов от сильного штамма, если им последовательно заражали того же хозяина; это указывает на степень интерференции и, следовательно, на определенную взаимосвязь.
Передача. Мозаика малины экспериментально передается прививкой, возможно механической инокуляцией сока и тлями. Эти вирусы не передаются ни через почву, ни семенами.
а)  Передача прививкой. Передача мозаики была осуществлена прививками в расщеп, пластинкой коры, сближением [110], бутылочным способом [31] илистом [173].
Конверс [68] показал, что, если три прививки листочком с растений малины, инфицированных ТЛКМ или ТСКМ, остаются жизнеспособными в течение 14 дней на Rubus henryi, вирусы могут быть обнаружены на индикаторе с достоверностью 95%.
Типично, что ТЛКМ вызывает некроз верхушки у инокулированного прививкой R. henryi и инокулированного тлей R. occiden talis в течение 7—10 дней, в то время как ТСКМ вызывает посветление жилок, крапчатость и деформацию листьев у инокулированного прививкой R. henryi в течение 20 дней, за которыми следует некроз верхушки побегов и почек [68]. Однако некоторые изоляты ТСКМ вызывают начальный некроз листочков на R. henryi. Один необычный изолят, предположительно отнесенный к ТСКМ, вызвал сильный и быстро развившийся некроз верхушки побега R. henryi после трех последовательных тепловых обработок растения-хозяина (сорт красной малины Латам), но не мог быть передан на R. occidentalis с помощью тлей [70].
б) Механическая передача инфекционным соком. Ни один вирус из группы ТСКМ еще не был передан соком. Вирусы из группы ТЛКМ, вероятно, с успехом передавались механически с малины на Chenopodium quinoa и некоторые другие травянистые растения-хозяева Кадменом [42, 44] и Рихтером [198, 200]. Обратная инокуляция ТЛКМ на Rubus с травянистых растений и даже серия пассажей на травянистые растения не была достигнута. Бернайер и Кинг [17] сообщили о передаче двух механически переносимых вирусов малины тлей Amphorophora agathonica (?). Последующее обнаружение в одной из этих культур вируса табачной мозаики (Бернайер, персональное сообщение) делает ранние заключения авторов сомнительными.
в)  Передача с помощью переносчика. Взаимосвязь переносчика и вируса мозаики малины была описана в обзоре Кеннеди и др. [195], и только некоторые тли были определены как переносчики.
Вирусы мозаики малины являются полуперсистентными в этих переносчиках [232]. Взаимоотношения вирус — переносчик для двух видов тлей рассмотрены в таблице 7.

Взаимоотношения между изолятами вируса мозаики малины и двумя видами тлей-переносчиков
Таблица 7


Вирус

Стадия развития тлей, передающая вирус

Минимальное время
питания тлей для приобретения вируса

Необходимое время для заражения

Максимальное время сохранения вируса в тлях

Эффективность передачи одиночными тлями

Литература

Переносчик: Amphorophora agathonica (?) Hottes в Северной Америке

Некроз черной малины (ТЛКМ)

Все, кроме яиц

>15, <30 мин.

<2 мин.

Питание: 3,5 часа
Голодание: 1 день при 20°С; 4 дня при 3°С

87%

Беннетт [13]; СтейсСмит [220, 223]

Желтая сетчатость Rubus и желтая мозаика (ТСКМ)

То же

Редко <60 мин.

<15 МИН.

Питание: >2, <4 дней
Глодание: 1 день при 20°С; 4 дня при 3°С

89%

Беннетт [13]; [219, 223] Стейс-Смит

Переносчик: Amphorophora rubi Kalt. в Шотландии

Крапчатость листьев малины

Редко 5 мин

<30 МИН.

>24 часов (питание)

5%

Кадмен [31, 36]

Пятнистость листьев малины

>13, <72 часов

Кадмен [35]

Amphorophora rubi (Kalt. ) subsp. idaei Born — главный переносчик вирусов мозаики малины в Европе [51, 155]. Macrosiphum euphorbiae (Thos.), возможно, имеет в Европе меньшее значение [36]. Свенсон и Милбрат [230] рассматривали эту тлю как вероятного переносчика мозаики малины на побережье Тихого океана в США, где Amphorophora agathonica (?) иногда изредка встречается.
Ниже перечислены в порядке уменьшения их значимости в качестве переносчиков в Северной Америке следующие виды тлей, переносящие компонентов комплекса мозаики малины: Amphorophora agathonica (?) Hottes [11], Masonaphis (Oestlundia) rubicola (Oestlund [13], Amphorophora sensoriata Mason [13] и A. rubicumberlandi Knowlton et Allen [138].
Было установлено, что Amphorophora rubitoxica Knowlton [217], A. rubi (Kalt.) subsp. ruborum Born., которые встречаются на ежевике в Европе [36], Aphis rubicola Oestlund [11], A. idaei van der Goot [40] и Chaetosiphon fragaefolii (Cockerell) [229] не являются переносчиками
Amphorophora rubi (Kalt. ) subsp. idaei Born, (обычно цитируемая как A. rubi) обнаружена на дикой и культурной малине (Rubus idaeus L.) в Европе, но была отмечена на сорте Ллойд Джордж в Саммерленде, Британская Колумбия (Стейс-Смит; не опубликовано).
Биология A. rubi изучалась Дикером [88].
Amphorophora agathonica (?) широко распространена в Северной Америке на дикой и культурной малине и на малине японской (.Rubus phoenicolasius Maxim.) на востоке США [63]. Бойзенберрп [72], некоторые сорта ежевики [261, Конверс и Раселл; не опубликовано] и, возможно, виды Fragaria [159] являются зарегистрированными хозяевами, но тля в общем ограничивается красной и японской малиной. Биология A. agathonica (?) исследовалась Винтером [261]. Обзор о таксономии тлей, встречающихся на Rubus в Северной Америке, был сделан Палмером [186]. Идентификация североамериканской популяции «А. rubi» как A. agathonica (?) была предложена Кеннеди и др. [155]. (См. также примечание в начале этой статьи.) Однако почти вся литература до 1967 г. относит обычную североамериканскую большую малинную тлю к Amphorophora rubi.
Среди сортов малины имеются значительные различия в их способности поддерживать колонии тлей (см. стр. 186). В части статей об устойчивости красной малины к заселению британской популяцией A. rubi Бриггс [28, 29, 30] описал методы оценки этой устойчивости к заселению в тепличных и полевых условиях. Он перечислил четыре линии A. rubi в Англии, различающиеся по своей способности к заселению определенных дифференцирующих сортов малины с известным генотипом. Бриггс полагает, что генетический контроль реакции хозяина на эти четыре линии осуществляется двумя парами аллелей. Несмотря на их способность заселять хозяев, несущих антиколонизационные гены Аь Аг, А3, линия №4 A. rubi отличается низкой врожденной плодовитостью и поэтому не составляет угрозы для восприимчивых сортов в Англии. Старые желтые листья устойчивых сортов иногда заселялись A. rubi [28, 160].
Amphorophora agathonica (?) (Северная Америка) и A. rubi (Европа) заметно различаются по способности заселять определенные сорта малины [88, 127] (см. стр. 186).
Распространение в естественных условиях. В условиях промышленного размножения посадочного материала зараженные саженцы являются основной причиной распространения вирусов [64], поэтому основные способы борьбы должны быть сосредоточены на выращивании здорового посадочного материала. Мозаика может также распространяться вдоль ряда от инфицированного растения, когда приживутся его отпрыски или окоренившиеся верхушки.
Изучалась скорость передвижения вирусов мозаики внутри инокулированных растений малины. Беннетт [13] установил в опытах с кольцеванием, что TJ1KM передвигается вниз в побегах черной малины примерно со скоростью 5 мм в час; у ТСКМ скорость движения медленнее, но ни один из вирусов этих групп не передвигался через окольцованный участок стебля. Фримен и Стейс-Смит [97] прививали культуры ТЛКМ и ТСКМ в побеги красной малины в августе и нашли, что культура ТЛКМ обнаруживалась в корневых черенках, взятых 4 месяца спустя, с частотой, почти в 2 раза большей, чем культура ТСКМ. Они нашли, что ни один из вирусов не передвигался в течение всего периода, когда растения находились в состоянии покоя. Беннетт [13] подчеркивал, что разная скорость передвижения этих двух групп вирусов в растениях малины благоприятствует экспериментальному разделению их из смеси, встречающейся в естественных условиях.
Распространение мозаики с помощью переносчика, ограниченное Amphorophora rubi для Европы и A. agathonica (?) для Северной Америки, происходит двумя способами: относительно большой дальностью перелета крылатых тлей и местным распространением бескрылыми тлями. Крылатые особи встречаются в Англии в июне или начале июля [88]. Кадмен (не опубликовано) установил, что период миграции малинных тлей длится с конца июня до середины августа. Их максимальный инфекционный радиус действия не известен, но в США и Англии имеются полевые данные о том, что инфекционный радиус крылатых насекомых A. agathonica (?) и A. rubi соответственно должен быть больше 1U мили и, вероятно, гораздо более (Кадмен, не опубликовано; 67; Стейс-Смит, не опубликовано).
Местное распространение. Местное распространение мозаики в поле, вероятно, осуществляется в первую очередь бескрылыми тлями. Хотя бескрылые особи могут медленно передвигаться от растения к растению вдоль ряда или между рядами, представляется вероятным, что ветер, дождь и междурядная обработка являются важными факторами их перемещения [261].
Пик популяций тлей Amphorophora rubi развивается в Англии в середине лета и еще раз в начале осени [88], а в Нидерландах обычно в конце июля [160]. Максимум инвазии тлями в Британской Колумбии обычно наблюдается в конце июня [224]. В штатах Мичиган и Вашингтон самые крупные популяции A. agathonica (?) были обнаружены в конце июля и начале августа [13, 141], и они увеличивались в течение всего лета в Вермонте [Конверс и др., не опубликовано]. Мозаика распространяется радиально от отдельного источника [13], но часто продвигается быстрее вдоль рядов, чем поперек их [76, 196]. Скорость распространения значительно варьирует в различных районах.
Ранкин и его коллеги [76, 194, 195, 196] проводили обширные исследования по скорости распространения мозаики в поле, но основывались только на полевых симптомах и поэтому спутали новые инфекции с более ранними латентными инфекциями, которые стали очевидными. В полевых условиях уровень видимой мозаики был между 0 и 2% в начале наблюдений, а спустя 12 месяцев он варьировал от 10 до 28%. На плантации черной малины в штате Нью-Йорк, где не удалялись больные растения, видимая мозаика достигала в 1927 г. 27%, в 1928 г. —47% и в 1929 г. —53% [196]. Сообщалось, что ежегодная скорость распространения видимой мозаики вдоль ряда составляла от 1,5 до 13,8 м [194]. Кадмен и Фискен [48] и Кадмен [40] изучали скорость распространения ТЛКМ и ТСКМ в Шотландии, где ТЛКМ распространялся в поле быстрее, чем ТСКМ. Согласно сообщениям, без проведения борьбы с тлями скорость заражения ТЛКМ в естественных условиях в течение одного года была равна 60%.
В США Конверс [67] изучал скорость распространения мозаики (главным образом ТЛКМ) в свободном от нее посадочном материале на 14 полевых участках в 9 восточных и среднезападных штатах в течение двух лет. Скорость распространения варьировала от 0% в девяти местностях до максимум 7% на одном участке в штате Нью-Джерси. Скорость распространения инфекции мозаики на девяти сортах малины в среднем по всем участкам колебалась от 0 до 10%. Степень изоляции от диких и культивируемых Rubus и интенсивность применения инсектицидов в борьбе с тлями, по-видимому, были не так важны, как сорт в определении процента заражения мозаикой.
Меры борьбы. Для уменьшения распространения заболевания в посадочном материале существует четыре способа: 1) уничтожение зараженных культивируемых и диких видов растений — источников заболевания; 2) химическая борьба с тлями-переносчиками; 3) селекция на устойчивость хозяина к заселению тлями; 4) селекция на устойчивость хозяина к вирусам мозаики.
1. Уничтожение зараженных культивируемых и диких растений—источников заболевания. В большинстве районов выращивания малины человек в значительной мере ответствен за распространение мозаики. Многие из основных сортов Rubus, особенно красной малины на промышленных плантациях, обычно заражены ТЛКМ или ТЛКМ и ТСКМ [37, 64, 220]. Одно время удаление больных растений с участка являлось главным способом борьбы с мозаикой в питомниках малины. Хотя тщательное удаление ценно для уменьшения видимой мозаики г 149, 194, 203], латентные вирусы мозаики остаются необнаруженными и снижают энергию роста и урожайность. Такие инфицированные растения подвержены более серьезному поражению, когда их заражают добавочные вирусы мозаики, и множественная инфекция дает вспышку мозаики малины.
Общая дискуссия о роли инфексации и сертификации в борьбе с мозаикой приведена во введении (см. стр. 169).
Практикуется еще удаление больных растений на плодоносящей плантации малины, но только в качестве средства продления продуктивной жизни плантации. Однако основным способом борьбы с мозаикой малины является посадка свободных от мозаики клонов на некотором расстоянии от зараженных растений Rubus.
Дикорастущая красная малина — важный резерватор мозаики. Переносчики тли всегда присутствуют, где бы она ни находилась [40, 63, 77]. На востоке штатов США японская малина (Rubus phoenicolasius Maxim.) также обычно заражена мозаикой и служит убежищем для тлей-переносчиков мозаики [63]. Уничтожение диких растений малины до посадки культивируемых видов Rubus снижает появление видимой мозаики на выращиваемых сортах [77]. Для уничтожения растений Rubus имеются эффективные гербициды [1], но для предотвращения восстановления дикой малины из семян требуются повторные обработки.
Минимальная изоляция, требуемая для отделения культивируемых видов Rubus от зараженных мозаикой диких растений сложноплодных, не может быть точно определена. Рекомендуются расстояния примерно 400, 200 и 100 м [5, 23, 40, 67, 260].
2. Химическая борьба с тлями-переносчиками. Имеются несколько инсектицидов, которые эффективны против Amphorophora rubi и A. agathonica (?) в течение нескольких недель после опрыскивания. Некоторые из них являются для растения системными [48; Шеферс, не опубликовано]. Кадмен (не опубликовано) установил, что даже при частом применении системных инсектицидов в однолетном опыте в Шотландии 20% растений красной малины были заражены мозаикой по сравнению с 60% на неопрыснутых участках. Передача вирусов полуперсистентного типа, например вируса мозаики малины, может быть выполнена одним проколом ткани стилетом одной тли, даже если тля погибнет сразу после этого. Поэтому заражение плантаций вирусами, переносимыми тлями, не может быть полностью предотвращено с помощью инсектицидов [58]. Однако предотвращение заселения вирофорными Amphorophora с помощью инсектицидов уменьшает или предотвращает повторное распространение инфекции. Следовательно, изоляция плантаций ягодных культур от источников вирофорных тлей повышает эффективность инсектицидов в борьбе с мозаикой.

  1. Селекция на устойчивость хозяина к заселению тлями. Ранкин [194] впервые отметил, что среди сортов малины наблюдаются заметные различия в восприимчивости к мозаике, и предложил термин «klendusity» для обозначения устойчивости к заражению или способности избегать его. Однако этот термин является слишком широким и неопределенным, чтобы быть полезным. Наследственная устойчивость к питанию и заселению тлей Amphorophora agathonica (?) впервые была доказана в США [141, 206]. Хубер и Шварц указали на присутствие двух доминантных генов. Добени [84] показал, что иммунитет к тле A. agathonica (?) в Британской Колумбии у сортов красной малины, происшедших от сорта Ллойд Джордж, обусловлен одним доминантным геном. Согласно Конверсу и Бейли [72], Добени и Стейс-Смиту [85], английский сорт красной малины Ллойд Джордж уже успешно использовался в селекции для придания стабильной устойчивости к тле A. agathonica (?) ряду американских сортов. Однако не все американские сорта, имеющие в родословной сорт Ллойд Джордж, обладают устойчивостью [72].

Классическая работа Найта и др. [157, 158] указывает на присутствие семи аллельных генов у английского сорта Сеянец «А» Бомфорта и американского сорта красной малины Чиф, придающих устойчивость к четырем английским расам тли Amphorophora rubi. Найт и др. [158] нашли, что ген устойчивости Ах к тле был сцеплен с нормальным аллелем полулетального гена. В ФРГ Баумайстер [9, 10] также изучал генетику устойчивости к A. rubi. Селекционные программы по введению генов устойчивости к переносчикам проводятся на Ист-Моллингской станции [157], в Данди [146] и в Швеции [185]. В Канаде [84] и в США возобновился интерес к такого рода работе.
Несколько сортов красной малины необычны в своем взаимодействии с Amphorophora agathonica (?) и мозаикой малины. Стейс- Смит [224] показал, что растения сорта красной малины Ренер, инфицированные мозаикой, могут поддерживать большие колонии A. agathonica (?), но последние не в состоянии получать из них вирус. В противоположность этому, сорт Септембер поддерживает большие колонии A. agathonica (?), но редко поражается мозаикой в полевых условиях и не заражается экспериментально при последующем заселении крупными популяциями вирофорных тлей. Однако он легко заражался прививкой, после чего тли легко получали вирус мозаики (ТЛКМ) и переносили его на восприимчивых хозяев (Конверс, не опубликовано).

  1. Селекция на устойчивость растений-хозяев к вирусам мозаики. В конечном счете есть возможность вести борьбу путем использования устойчивости хозяина к заражению вирусами мозаики малины или против проявления болезней, которые они вызывают [45, 146]. По-видимому, английский сорт Норфолк Джайент избегает заражения мозаикой в Англии, хотя он заселяется переносчиком [48]. Так же ведет себя сорт Уилламетт на северо-западном побережье Тихого океана в Северной Америке [220]. Это примеры скорее низкой восприимчивости, а не абсолютного иммунитета к заражению мозаикой. Однако еще не ясно, «представляют ли приведенные сорта в примерах устойчивость к очень ранним стадиям вирусной инфекции после передачи переносчиком или устойчивость в отсутствии насекомого-переносчика.

Учитывая ограниченность источников генов устойчивости малины к Amphorophora rubi или к вирусам мозаики, английские селекционеры пытаются идентифицировать и включать в промышленные сорта оба вида устойчивости.
Терапия. Стейс-Смит [223] установил, что вирусы мозаики малины делятся на две группы: вирусы, сохраняющиеся в хозяине в течение 3 месяцев или более при постоянной температуре 37°С, и вирусы, инактивируемые в растениях-хозяевах при выращивании от 5 до 10 дней при 37°С. Вирус, представляющий ТЛКМ, сохранял половину инфекционности после обработки малины в течение 62 ч при 38±1,5°С [70].
В последующем работа Чамберса [61] по термотерапии была успешно использована для получения свободного от вирусов посадочного материала многих сортов малины [20, 61, 67, 69, 70, 177] и некоторых сортов ежевики (Конверс, не опубликовано).

Рис. 65. Некротическая реакция верхушки побега Rubus henryi, инокулированной прививкой листочком одним из термолабильных компонентов вируса мозаики.
Примечания. Исключительное разнообразие симптомов на малине при поражении вирусами мозаики отмечали многие исследователи [11, 13, 45, 70, 76, 108, 110, 195, 218]. Мы можем предполагать, что внутри двух групп ТЛКМ и ТСКМ имеется большое число штаммов или отдельных вирусов. Изменчивость в выражении симптомов, возникающих от одного полевого источника мозаики малины, является загадкой. Кули [76] показал, что передача инфекции с растений пурпуровой малины сорта Колумбийская, отличающихся однородностью в образовании симптомов, на черной малине вызывала симптомы мозаики широко различающихся типов. Конверс [70] установил, что непрогретые растения сорта Латам с симптомами и без них одинаково вызывали сильные симптомы, когда использовались в качестве пнокулюма, на Rubus henryi и R- occidentalis. В настоящее время нет соответствующих методов исследования вирулентности ТЛКМ или ТСКМ или определения их константности.

Обнаружение и идентификация. Любой из вирусов, который при передаче его на R. henryi прививкой будет вызывать некроз сильно
растущих верхушек или боковых почек, может быть отнесен к компонентам вирусов мозаики малины. Если этот вирус может быть передан между растениями-хозяевами Rubus с помощью тлей Amphorophora rubi или A. agathonica (?) ив последующем будет вызывать некроз у R. henryi (рис. 65), крапчатость, посветление жилок или некроз на R. occidentalis, его относят к группе вирусов мозаики малины. Тепловая обработка хозяина в течение одной недели при 37°С позволит отнести его к группе ТЛКМ или ТСКМ. В Европе сорта Сайнт Вальфрид, Норфолк Джайент, Сеянец «Б» Бомфорта и Моллинг Ландмарк используются для идентификации обнаруженных специфичных мозаичных вирусных заболеваний [35; Кадмен, не опубликовано].

  • Назад
  • Вперед
  • Назад
  • Вперед
  • Вы здесь:  
  • Главная
  • Статьи
  • Книги
  • org/ListItem»> Вирусные болезни ягодных культур и винограда
  • Вирусные и вирусоподобные болезни малины и ежевики

Еще почитать:

  • Химеры и сходные образования
  • Некроз побегов
  • Листовидные выросты
  • Вирус черной кольцевой пятнистости томата на vitis
  • Вирус мозаики резухи на vitis

Популярные метки: агротехника, болезни, вредители, вино, дегустация, здоровье, исследования, мороз, формировка, обрезка, зеленые операции, определить, питание, почва, полив, посадка, размножение, прививка, саженцы, продукция, созревание, селекция, сорта, техника и инструмент.

Поиск и метки, Контакты, Форум-виноград, Товары по виноградарству.

© Перепечатка и цитирование — только с активной гиперссылкой на сайт о винограде, в бумажных изданиях — только после согласования.

Обработка малины от болезней и вредителей: причины и симптомы

Малина, как и другие садовые культуры, может заболеть или стать жертвой вредителей. Обработку малины весной от болезней и вредителей нужно обязательно включить в список мероприятий по уходу за кустарником. Без профилактики заболеваний культура быстро может снизить урожайность или даже погибнуть, а нашествие вредителей способно испортить внешний вид кустарника и ослабить его.

В этой статье приведены описания основных болезней и вредителей малины с фото и лечением, поэтому каждый садовод сможет с легкостью определить заболевание и принять меры для его устранения.

Содержание:

  1. Болезни малины: фото и их лечение
    1. Причины
    2. Симптомы
    3. Болезни малины и борьба с ними: видео
  2. Болезни ремонтантной малины: фото и их лечение
  3. Хлороз малины: фото и лечение
    1. Причины
    2. Симптомы
  4. Дидимелла малины: лечение
    1. Причины
    2. Симптомы
  5. Мозаика малины: фото и лечение
    1. Причины
    2. Симптомы
  6. Защита малины от вредителей и болезней весной

Болезни малины: фото и их лечение

Обработка малины весной от болезней и вредителей помогает не только сохранить урожайность культуры, но и предотвратить распространение недуга по всему саду.

Как и другие плодовые культуры, кустарник может пострадать от вирусных, грибковых и бактериальных заболеваний, которые отличаются по симптомам и требуют определенного лечения. Рассмотрим подробнее самые основные патологии культуры с фото, а также приведем причины их возникновения и методы лечения.

Причины

Малина считается неприхотливой культурой, но при неправильном уходе она слабеет и становится более восприимчивой к различным патологиям. К примеру, слишком влажная и плотная почва может вызвать загнивание стеблей и корней, а в сухую погоду кустарник может стать жертвой вредителей.

Но чаще всего в недугах растения виноват сам садовод. Если кустарник обрабатывается зараженным инструментов, симптомы проявятся очень быстро. Кроме того, нельзя допускать, чтобы участок зарастал сорняками, так как это также может стать одним из факторов начала патологии.

Симптомы

Болезни малины достаточно разнообразны, поэтому мы рассмотрим самые популярные из них с симптомами.

Опасность для кустарника представляют такие патологии (рисунок 1):

  1. Хлороз возникает при образовании механических повреждений на поверхности листьев и стеблей. Этот вирус вызывает пожелтение листьев и истончение побегов. В результате патологии кусты ослабевают, ягоды становятся мелкими, и без лечения кустарник может погибнуть.
  2. Курчавость – это вирусное заболевание, которое проявляется характерными признаками. Сначала листья становятся мелкими, жесткими и морщинистыми, а нижняя сторона приобретает коричневый оттенок. Ягоды становятся кислыми, а сам кустарник погибает в течение трех лет, если не были приняты меры борьбы.
  3. Ржавчина представляет собой грибковую патологию, которая начинает проявляться в мае. Нижняя сторона листьев покрывается темными пятнами. Постепенно они усыхают и опадают, а на побегах образуются характерные коричневые язвы. Вылечить ржавчину невозможно, поэтому при обнаружении первых симптомов кустарник нужно выкопать и сжечь за пределами участка.
  4. Пурпуровая пятнистость – очень распространенное заболевание, которое вызывает быстрое усыхание кустарника. Первым симптомом является образование светло-красных пятен на листьях. Постепенно они увеличиваются и темнеют, вызывая усыхание побегов и замедление или полное прекращение роста почек.
Рисунок 1. Самые распространенные болезни культуры: 1 — хлороз, 2 — курчавость, 3 — ржавчина, 4 — пурпуровая пятнистость

Кроме того, при повышенной влажности и температуре воздуха на растениях может появиться мучнистая роса. А если листья и побеги покрылись серыми пятнами с пурпурными ободками, ваше растение стало жертвой антракноза.

В зависимости от типа патологии (вирусная, грибковая или бактериальная), используют химические средства борьбы, которыми опрыскивают пораженные растения.

Болезни малины и борьба с ними: видео

Болезни ремонтантной малины: фото и их лечение

Ремонтантные сорта подвержены тем же заболеваниям, что и обычные. Но чаще всего на кустарниках встречается хлороз, который за короткое время может погубить все растения.

Рассмотрим подробнее причины возникновения, симптомы и методы лечения хлороза у ремонтантных сортов.

Хлороз малины: фото и лечение

Определить, что культура заражена хлорозом очень легко: листья на пораженных растениях начинают желтеть. В некоторых случаях пожелтение листьев связано с недостатком минералов, но, если вы недавно делали подкормку, а кустарники все равно меняют цвет, есть смысл осмотреть их детальнее (рисунок 2).

Существуют определенные причины развития хлороза, а также характерные симптомы заболевания, которые помогают точно провести диагностику и принять меры для ее устранения.

Причины

Основная причина развития хлороза – наличие порезов и небольших ран на листьях или побегах. Они могут появиться в результате неаккуратной обрезки или неправильного ухода.

Возбудителями являются вирусы, которые переносятся насекомыми-вредителями (нематодами, клещами или тлей). Именно поэтому, чтобы не допустить развитие хлороза, нужно регулярно осматривать посадки и проводить профилактику распространения вредителей.

Симптомы

На начальном этапе хлороза участки между прожилками на листьях начинают желтеть. Постепенно желтизна распространяется по всему листу, образуя несимметричные узоры.

По мере прогрессирования листья начинают усыхать, а побеги истончаться. Ягоды приобретают неправильную форму, становятся мелкими и быстро усыхают.

Рисунок 2. Признаки хлороза кустарника

К сожалению, лечение против хлороза не было разработано, поэтому кустарники с признаками поражения нужно незамедлительно выкопать и сжечь. Болезнь считается очень опасной, поэтому участок, где находилась зараженная культура, не подходит для дальнейшего выращивания. Повторно высадить растение на такой грядке можно будет только через 10 лет.

Дидимелла малины: лечение

Дидимеллу также называют пурпурной пятнистостью из-за характерных красных пятен, которые образуются на листьях (рисунок 3).

Болезнь считается достаточно опасной, хотя распространяется сравнительно медленно. С момента возникновения первых симптомов до гибели кустарника может пройти несколько лет, но это не означает, что не нужно бороться с патологией. Чтобы избавить растение от дидимеллы, нужно знать причины, провоцирующие болезнь, и ее основные симптомы, которые помогут определить заболевание.

Причины

Как правило, первые признаки пурпурной пятнистости проявляются в сентябре, когда температура воздуха немного снижается, а влажность почвы повышается.

Провоцирующим фактором считается загущение посадок и наличие большого количества сорняков. Вирус дидимеллы также распространяется вредителями, поэтому грядку нужно регулярно очищать от сорняков и проводить профилактические опрыскивания против вредителей.

Симптомы

Характерный симптом пурпурной пятнистости – образование небольших пурпурно-коричневых пятен на молодых побегах в месте прикрепления листа. По мере прогрессирования заболевания пятна увеличиваются в размерах и распространяются не только по побегам, но и по листьям.

Постепенно пятна темнеют, а в их центре образуются светлые бугорки. Если не была проведена обработка, зараженный кустарник успешно перезимует, но в следующем году бугорки начнут трескаться, побеги слабеть, а сам кустарник снизит урожайность.

Рисунок 3. Признаки дидимеллы

Чтобы устранить дидимеллу, ранней весной нужно опрыскать все кустарники раствором бордосской жидкости (300 граммов средства на ведро воды). Обработку повторяют перед цветением и после сбора урожая, используя для этой цели однопроцентный раствор препарата (100 граммов средства на ведро воды).

Мозаика малины: фото и лечение

Мозаика чаще всего проявляется в начале лета и осенью, то есть до начала активного вегетационного периода.

Кроме внешних изменений на листьях и побегах, мозаика существенно снижает урожайность кустарника, поэтому нужно знать причины, провоцирующие болезнь, ее основные симптомы и методы борьбы.

Причины

Мозаика относится к вирусным заболеваниям, а возбудитель проникает в ткани кустарника через порезы или другие механические повреждения листьев и стеблей.

Рисунок 4. Симптомы мозаики

Разносчиками вируса могут стать как насекомые-вредители, так и сам садовод. К примеру, если провести обрезку нестерильным инструментом, можно самостоятельно занести вирус внутрь тканей. Но чаще всего именно вредители являются основной причиной возникновения мозаики, поэтому нельзя допускать, чтобы участок зарастал сорняками, а весной нужно обязательно проводить профилактическую обработку против вредителей.

Симптомы

Среди всех болезней именно у мозаики есть весьма характерные симптомы. Листья на пораженных кустарниках приобретают пестрый окрас, а темные участки чередуются со светлыми. Кроме того, поверхность листа покрывается бугорками (рисунок 4).

На больных кустарниках уменьшается количество плодов, а сами ягоды теряют вкус и становятся слишком жесткими. Молодые побеги становятся тонкими и слабыми. Действенного лечения против мозаики нет, поэтому пораженные экземпляры просто удаляют и сжигают. Для профилактик нужно следить, чтобы кустарник не повреждался вредителями.

Защита малины от вредителей и болезней весной

Весенняя обработка малины от вредителей и болезней начинается сразу же после пробуждения почек.

Примечание: Большинство возбудителей заболеваний зимуют на старых побегах или листьях, поэтому с осени нужно очистить грядку от опавшей листвы и обрезать старые побеги.

Ранней весной, а именно в начале марта, все кустарники опрыскивают однопроцентным раствором бордосской жидкости (рисунок 5). После пробуждения почек обработку повторяют. Когда начнется период цветения и формирования завязей, кустарники необходимо осматривать и вовремя удалять все поврежденные части.

Рисунок 5. Обработка малины против болезней и вредителей

Осенью, после завершения сбора урожая, проводят еще одно опрыскивание бордосской жидкостью, чтобы уничтожить личинок вредителей и возбудителей болезней, которые могли остаться на кустарниках.

Amphorophora agathonica (американская крупная малинная тля) идентификация, изображения, экология, борьба

 

На этой странице: Идентификация и распространение Биология и экология Динамика населения Другие тли на том же хозяине Ремонтно-восстановительные работы

Идентификация и распространение

Взрослые особи Amphorophora agathonica (см. первое изображение ниже) бледно-зеленые. Апикальный ростральный сегмент (R IV+V) в 1,05-1,85 раза длиннее второго заднего сегмента лапки (HT II) (ср. Amphorophora sensoriata и Amphorophora rubicumberlandi , у которых RIV+V в 0,6-0,8 раза больше). длина HTII). Трубочки бледно-зеленоватые у основания, переходящие в темно-коричневые к вершинам (ср. Amphoropha idaei и Amphorophora rubi , у которых трубочки полностью светлые, за исключением более темного апикального края, и 9).0015 Amphorophora tigwatensa , трубочки которых темные или темные). Хвост и ноги от светло- до средне-коричневого цвета. Трубочки вздуты в дистальной половине (ср. Aphis rubicola , у которых трубочки сужаются от основания к фланцу). Трубочки не имеют зоны полигональной ретикуляции (ср. Illinoia rubicola , у которых есть субапикальная зона полигональной ретикуляции). Хвост в 1,5—2,7 раза больше R IV+V и в 2,2—3,4 раза больше основания VI членика усиков. Длина тела взрослой особи Amphorophora agathonica apterae 2,4-4,7 мм. Неполовозрелые американские крупные малинные тли (см. второй рисунок ниже) имеют беловато-желтый цвет.

Оба изображения выше с разрешения, авторское право Клод Пилон, все права защищены.

Amphorophora agathonica крылатых имеют бледно-коричневые голову и грудь с бледно-зеленым брюшком.

На изображениях ниже показана (сначала) колония Amphorophora agathonica на черной малине и (второе) осветленное сооружение живородящей взрослой бескрылой особи.

Первое изображение над Стивеном Осмусом, USDA в общественном достоянии;
Авторские права на второе изображение принадлежат CBG Photography Group в соответствии с лицензией Creative Commons.

Amphorophora agathonica питается молодыми стеблями и нижней стороной листьев малины красной ( Rubus idaeus var. strigosus ), а иногда в небольшом количестве и другими Rubus виды, такие как малина черная Rubus occidentalis . Эти тли не чередуются, а остаются на малине в течение всего года. Половые формы развиваются осенью из яйцекладущих и крылатых самцов. Вид широко распространен в Северной Америке к северу примерно от 38° северной широты, включая Аляску и Новую Шотландию.

Биология и экология
Динамика популяции

Кеннеди и Шеферс (1974) рассмотрели распространение и фенологию Amphorophora agathonica на посевах красной малины. Большинство Amphorophora agathonica , наблюдавшихся в 1971 и 1972 гг. на красной малине, располагались на примоканах (первогодковых побегах). Относительно мало было замечено на флориканах (тростниках второго года жизни). Алатоидные нимфы были наиболее многочисленны в конце июня, за несколько недель до пика плотности популяции. Их появление в это время свидетельствует о том, что наибольшее естественное первичное распространение малиновой мозаики из культурных насаждений можно ожидать в конце июня — начале июля. Личинки, собранные в поле в конце сентября, превратились в яйцеклеток.

Лайтле и др. (2014) изучали сезонную фенологию Amphorophora agathonica на коммерческих полях красной малины в северном штате Вашингтон, США. Нижний порог развития вида оценивается в 2,7°С. В полевых условиях популяции бескрылых и крылатых тлей начали быстро увеличиваться примерно при 800 градусо-днях роста и достигли пика при 1050 градусо-днях роста.

Другая тля на том же хозяине
Первичные хозяева

Amphorophora agathonica встречается на 7 видах Rubus ( Rubus idaeus var. melanolasius, Rubus occidentalis, Rubus odoratus, Rubus parviflorus, Rubus phoenicolasius, Rubus strigosus, Rubus strigosus).

  • Blackman & Eastop перечисляет 8 видов тлей, питающихся американской красной малиной (Rubus strigosus) во всем мире, и предоставляет формальные идентификационные ключи (Show World list). Бейкер (2015) перечисляет 5 из этих видов тлей, встречающихся в Великобритании (Показать британский список).
  • Blackman & Eastop перечисляет 8 видов тлей, питающихся американской черной малиной (Rubus occidentalis) во всем мире, и предоставляет формальные идентификационные ключи (Show World list). Из этих видов тлей Бейкер (2015) перечисляет 1 вид, встречающийся в Великобритании (Показать британский список).

Ущерб и меры борьбы

Amphorophora agathonica является основным переносчиком вирусного комплекса малиновой мозаики (RMoV) в Северной Америке. В этот комплекс входят многие вирусы, в том числе вирусы желтой сетки Rubus, некроза малины черной, пятнистости листьев малины и пятнистости листьев малины. По-видимому, он не является переносчиком курчавости листьев малины или хлороза жилок.

Лайтле и др. (2014) отслеживали распространение вирусов малины (латентный вирус малины — RpLV и вирус крапчатости листьев малины — RLMV), чтобы определить, как быстро заражаются поля и существует ли связь между присутствием Amphorophora agathonica и инфекцией. RLMV быстро распространился: 30-60% растений на четырех различных коммерческих полях дали положительный результат после трех вегетационных сезонов. Удивительно, но не было обнаружено заметной связи между присутствием или обилием тли, основанной на 10 образцах листьев, взятых с каждого растения, и шансами того, что это растение заразится RLMV.

Schaefers (1968) сообщил о борьбе с Amphorophora agathonica в питомниках малины в Нью-Йорке. Для обеспечения того, чтобы свободные от вирусов сорта малины оставались свободными от вирусов при полевом размножении посадочного материала, требуется применение эффективной программы борьбы с мозаичным переносчиком Amphorophora agathonica . В Нью-Йорке тля присутствует в поле с середины мая до конца октября, и контроль необходим в течение всего периода. Было исследовано несколько материалов для опрыскивания листвы, и было обнаружено, что им не хватает стойкости, необходимой для непрерывной программы защиты. из протестированных наиболее эффективным оказался Niagara 10242. Гранулированные системные материалы, вносимые в ряд, обеспечивали значительно улучшенный контроль по сравнению с внекорневыми опрыскиваниями, из протестированных материалов Темик неизменно был наиболее эффективным. Результаты показывают, что два применения Темика, одно в середине мая и одно в начале августа, обеспечат эффективную борьбу с тлей в течение всего сезона.

Устойчивость растений-хозяев считается практичным и рентабельным методом борьбы с насекомыми-вредителями для производителей. Лайтле и др. (2015) рассматривали влияние трех новых устойчивых сортов черной малины на пищевое поведение и продуктивность Amphorophora agathonica . Тлю больше привлекал восприимчивый сорт «Мангер» (контроль), чем устойчивые сорта. Роды происходили на устойчивых выборках, но меньше нимф откладывалось на устойчивых линиях по сравнению с восприимчивым контролем. На устойчивых выборках нимфы выживали гораздо меньше, тогда как на контроле через 11 сут почти все были живы. Тканями, ответственными за резистентность, оказались ситовидные элементы мезофилла и флоэмы. У тлей была снижена вероятность слюноотделения в ситовидные элементы луба устойчивых селекции.

Благодарности

Мы особенно благодарны Клоду Пилону за фотографии Amphorophora agathonica (больше ее замечательных фотографий см. и ).

Мы провели предварительную идентификацию по фотографиям живых образцов с высоким разрешением, а также по идентификации растения-хозяина. В подавляющем большинстве случаев идентификация была подтверждена микроскопическим исследованием сохранившихся образцов. Мы использовали ключи и описания видов Палмера (1952), Hottes & Frison (1931) и Footit & Maw (1997), а также Blackman & Eastop (1994) и Blackman & Eastop (2006). Мы полностью признаем этих авторов как источник (обобщенной) таксономической информации, которую мы представили. Любые ошибки в идентификации или информации являются исключительно нашей ошибкой, и мы будем очень признательны за любые исправления. Для помощи в терминах, используемых для морфологии тли, мы предлагаем рисунок, предоставленный Blackman & Eastop (2006).

Полезные веб-ссылки

Ссылки

  • Футтит, Р. и Мо, Э. (1997) . Тли (Homoptera: Aphidoidea) Юкона. стр. 387-404 в Х.В. Данкс и Дж.А. Даунс (ред.), Насекомые Юкона. Биологическая служба Канады (наземные членистоногие), Оттава. 1034 стр. © 1997. Полный текст
  • Хоттс, Ф.К. и Фрисон, Т.Х. (1931) . Тли, или Aphiidae, из Иллинойса. Бюллетень исследования естественной истории штата Иллинойс 19 (3), 123-447. Полный текст
  • Кеннеди, Г.Г. и Шеферс, Г.А. (1974) . Распространение и сезонная история Amphorophora agathonica Hottes на красной малине ‘Latham’. Анналы Энтомологического общества Америки 67 (3), 356-358. Абстрактный
  • Лайтл, Д.М. и др. (2014) . Сезонная фенология Amphorophora agathonica (Hemiptera:Aphididae) и распространение вирусов на красной малине в штате Вашингтон. Окружающая среда. Энтомол. 43 (2), 467-473. Полный текст
  • Лайтл, Д.М. и др. (2015) . Влияние трех новых устойчивых сортов черной малины на пищевое поведение и продуктивность Amphorophora agathonica . Взаимодействие членистоногих и растений 9 , 487-496. Полный текст
  • Осгуд младший, Э.А. (1962) . Динамика численности насекомых на присосках осины трясущейся, Populus tremuloides Mich., с особым акцентом на тополевой пятнистой тле, Aphis maculatae Oestlund, и ивовом побеговом пилильщике, Janus abbreviatus (Say). Кандидат наук. дис., ун-т. Миннесота. 109 стр.
  • Палмер, Массачусетс (1952) . Тля региона Скалистых гор: в первую очередь включает Колорадо и Юту, но также граничит с южным Вайомингом, юго-восточным Айдахо и северным Нью-Мексико. Полный текст
  • Шеферс, Г.А. (1968) . Борьба с тлей Amphorophora agathonica в питомнике малины. Журнал экономической энтомологии 61 (2), 384-387. Абстрактный

PYM: новый доступный метод на основе изображений с использованием Raspberry Pi для фенотипирования площади листьев растений в самых разных условиях

1. Godfray HCJ, Beddington JR, Crute IR, Haddad L , Лоуренс Д., Мьюир Дж. Ф. и соавт. Проблема продовольственной безопасности. Наука (80-). 2012;327:812. http://www.elgaronline.com/view/9780857939371.xml.

2. Рахаман М.М., Чен Д., Гиллани З., Клукас С., Чен М. Усовершенствованное фенотипирование и анализ данных фенотипа для изучения роста и развития растений. Front Plant Sci 2015; 6: 619. http://journal. frontiersin.org/article/10.3389/fpls.2015.00619/abstract. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

3. Catchpole WR, Wheelert CJ. Обзор Оценка биомассы растений: обзор методов. Aust J Ecol. 1992; 17: 121–131. doi: 10.1111/j.1442-9993.1992.tb00790.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

4. Фальгрен Н., Гехан М.А., Бакстер И. Свет, камера, действие: высокопроизводительное фенотипирование растений готово для крупного плана. Curr Opin Plant Biol. 2015;24:93–99. doi: 10.1016/j.pbi.2015.02.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Granier C, Vile D. Фенотипирование и не только: моделирование отношений между чертами. Curr Opin Plant Biol. 2014; 18:96–102. doi: 10.1016/j.pbi.2014.02.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Арвидссон С., Перес-Родригес П., Мюллер-Робер Б. Конвейер фенотипирования роста для Arabidopsis thaliana, объединяющий анализ изображений и моделирование площади розетки для надежной количественной оценки эффектов генотипа. Новый Фитол. 2011;191: 895–907. doi: 10.1111/j.1469-8137.2011.03756.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Weight C, Parnham D, Waites R. LeafAnalyser: вычислительный метод для быстрого и крупномасштабного анализа вариаций формы листа. Плант Дж. 2008; 53: 578–586. doi: 10.1111/j.1365-313X.2007.03330.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Jansen M, Gilmer F, Biskup B, Nagel KA, Rascher U, Fischbach A, et al. Одновременное фенотипирование роста листьев и флуоресценции хлорофилла с помощью Growscreen Fluoro позволяет определить стрессоустойчивость у 9 растений.0256 Arabidopsis thaliana и другие розеточные растения. Функция биологии растений. 2009; 36: 902–914. doi: 10.1071/FP09095. [CrossRef] [Google Scholar]

9. Cabrera-Bosquet L, Molero G, Stellacci AM, Bort J, Nogues S, Araus JL. NDVI как потенциальный инструмент для прогнозирования биомассы, содержания азота в растениях и роста генотипов пшеницы, подверженных различным водным и азотным условиям. Зерновые рес коммун. 2011; 39: 147–159. doi: 10.1556/CRC.39.2011.1.15. [CrossRef] [Google Scholar]

10. Коул Б., Кей С.А., Чори Дж. Автоматизированный анализ динамики роста гипокотилей арабидопсиса при избегании тени. Плант Дж. 2011; 65:991–1000. doi: 10.1111/j.1365-313X.2010.04476.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Römer C, Wahabzada M, Ballvora A, Pinto F, Rossini M, Panigada C, et al. Раннее обнаружение стресса от засухи у зерновых: максимизация объема симплекса для анализа гиперспектральных изображений. Функция биологии растений. 2012;39:878. http://www.publish.csiro.au/?paper=FP12060.

12. De Vylder J, Vandenbussche F, Hu Y, Philips W, Van Der Straeten D. Трекер Rosette: инструмент анализа изображений с открытым исходным кодом для автоматической количественной оценки эффектов генотипа. ЗАВОД Физиол. 2012;160:1149–59. http://www.plantphysiol.org/cgi/doi/10.1104/pp.112.202762. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

13. Mahlein A-K, Rumpf T, Welke P, Dehne H-W, Plümer L, Steiner U, et al. Разработка спектральных показателей для выявления и идентификации болезней растений. Окружающая среда удаленных датчиков. 2013; 128:21–30. doi: 10.1016/j.rse.2012.09.019. [CrossRef] [Google Scholar]

14. Lootens P, Ruttink T, Rohde A, Combes D, Barre P, Ruiz IR. Высокопроизводительное фенотипирование бокового расширения и отрастания разнесенных растений Lolium perenne с использованием анализа полевых изображений. Растительные методы. 2016;12:32. doi: 10.1186/s13007-016-0132-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Даммер К.Х., Дворак В., Селбек Дж. Фенотипирование полевого картофеля на ходу с использованием камеры зрения. Картофель Рез. 2016 [Google Scholar]

16. Bylesjö M, Segura V, Soolanayakanahally RY, Rae AM, Trygg J, Gustafsson P, et al. LAMINA: инструмент для быстрой количественной оценки параметров размера и формы листа. BMC Растение Биол. 2008; 8:82. дои: 10.1186/1471-2229-8-82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Minervini M, Abdelsamea MM, Tsaftaris SA. Фенотипирование растений на основе изображений с постепенным обучением и активными контурами. Экол Информ. 2014;23:35–48. doi: 10.1016/j.ecoinf.2013.07.004. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

18. Spalding EP, Miller ND. Анализ изображений возрождает возрождение в измерении роста. Curr Opin Plant Biol. 2013;16:100–104. doi: 10.1016/j.pbi.2013.01.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Такенберг О. Новый метод неразрушающего измерения биомассы, темпов роста, вертикального распределения биомассы и содержания сухого вещества на основе анализа цифровых изображений. Энн Бот. 2007; 99: 777–783. doi: 10.1093/aob/mcm009. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Паруэло Дж.М., Лауэнрот В.К., Розет П.А. Техническое примечание: оценка биомассы надземных растений с использованием фотографического метода. J Range Manag. 2000;53:190–193. дои: 10.2307/4003281. [CrossRef] [Google Scholar]

21. Mizoue N, Masutani T. Анализ изображения состояния кроны, биомассы листвы и зависимости роста стебля Chamaecyparis obtusa . Для Экол Манаг. 2003; 172:79–88. doi: 10.1016/S0378-1127(02)00281-5. [CrossRef] [Google Scholar]

22. Смит С.М., Гарретт П.Б., Лидс Дж.А., Маккормик П.В. Оценка цифровой фотографии для оценки живой и мертвой надземной биомассы в насаждениях меноспецифических макрофитов. Аква Бот. 2000;67:69–77. doi: 10.1016/S0304-3770(99)00085-6. [CrossRef] [Google Scholar]

23. Smith MAL, Spomer LA, Meyer MJ, McClelland MT. Неинвазивная оценка анализа изображений роста во время микроразмножения растений. Культ органов растительных клеток. 1989; 19: 91–102. doi: 10.1007/BF00035809. [CrossRef] [Google Scholar]

24. Golzarian MR, Frick RA, Rajendran K, Berger B, Roy S, Tester M, et al. Точный вывод о биомассе побегов из высокопроизводительных изображений злаковых растений. Растительные методы. 2011;7:2. дои: 10.1186/1746-4811-7-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Green JM, Appel H, Rehrig EM, Harnsomburana J, Chang J-F, Balint-Kurti P, et al. PhenoPhyte: гибкий доступный метод количественного определения 2D-фенотипов по изображениям. Растительные методы. 2012;8:45. http://plantmethods.biomedcentral.com/articles/10.1186/1746-4811-8-45. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

26. Easlon HM, Bloom AJ. Простая площадь листьев: автоматический анализ цифровых изображений для быстрого и точного измерения площади листьев. заявл. завод науч. 2014;2:1400033. http://www.bioone.org/doi/abs/10.3732/apps.1400033. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

27. Walter A, Scharr H, Gilmer F, Zierer R, Nagel KA, Ernst M, et al. Динамику адаптации роста рассады к измененным условиям освещения можно количественно оценить с помощью GROWSCREEN: установки и процедуры, разработанной для быстрого оптического фенотипирования различных видов растений. Новый Фитол. 2007; 174:447–455. doi: 10.1111/j.1469-8137.2007.02002.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Минервини М., Шарр Х., Цафтарис С.А. Анализ изображений: новое узкое место в фенотипировании растений [уголок приложений] IEEE Signal Process Mag. 2015; 32:126–131. дои: 10.1109/МСП.2015.2405111. [CrossRef] [Google Scholar]

29. Продавцы PJ. Отражательная способность кроны, фотосинтез и транспирация. Int J Remote Sens. 1985; 6: 1335–1372. doi: 10.1080/01431168508948283. [CrossRef] [Google Scholar]

30. Роуз Дж.В., Хаас Р.Х., Шелл Дж.А., Диринг Д.В. Мониторинг весеннего продвижения и ретроградации (эффект зеленой волны) естественной растительности. Прог. RSC 1978-1. 1973; 112.

31. Карлсон Т.Н., Рипли Д.А. О связи между NDVI, фракционным растительным покровом и индексом листовой поверхности. Окружающая среда удаленных датчиков. 1997;62:241–252. doi: 10.1016/S0034-4257(97)00104-1. [CrossRef] [Google Scholar]

32. Лукина Е.В., Стоун М.Л., Раун В.Р. Оценка покрытия растительностью пшеницы с использованием цифровых изображений. J Растительное питание. 1999; 22: 341–350. doi: 10.1080/01

  • 9909365631. [CrossRef] [Google Scholar]

    33. Чо М.А., Скидмор А., Корси Ф., ван Вирен С.Е., Собхан И. Оценка биомассы зеленой травы/травы по аэроспектральным изображениям с использованием спектральных индексов и частичной регрессии методом наименьших квадратов. Int J Appl Earth Obs Geoinf. 2007;9: 414–424. doi: 10.1016/j.jag.2007.02.001. [CrossRef] [Google Scholar]

    34. Stone ML, Solie JB, Raun WR, Whitney RW, Taylor SL, Ringer JD. Использование спектрального излучения для коррекции дефицита азота в сезонных удобрениях на озимой пшенице. Trans Am Soc Agric Eng. 1996; 39: 1623–31. http://cat.inist.fr/?aModele=afficheN&cpsidt=2497113.

    35. Li F, Gnyp ML, Jia L, Miao Y, Yu Z, Koppe W, et al. Оценка азотного статуса озимой пшеницы с помощью портативного спектрометра на Северо-Китайской равнине. Полевые культуры Res. 2008; 106:77–85. doi: 10.1016/j.fcr.2007.11.001. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

    36. Марти Дж., Борт Дж., Слафер Г.А. , Араус Дж.Л. Можно ли оценить урожайность пшеницы по ранним измерениям нормализованного разностного вегетационного индекса? Энн Аппл Биол. 2007; 150: 253–257. doi: 10.1111/j.1744-7348.2007.00126.x. [CrossRef] [Google Scholar]

    37. Kipp S, Mistele B, Baresel P, Schmidhalter U. Высокопроизводительное фенотипирование ранней силы растений озимой пшеницы. Эур Джей Агрон. 2014; 52: 271–278. doi: 10.1016/j.eja.2013.08.009. [CrossRef] [Google Scholar]

    38. Raspberry Pi. Учи, учись и твори с Raspberry Pi. https://www.raspberrypi.org/.

    39. Гетцбергер А., Застроу А. О сосуществовании преобразования солнечной энергии и выращивания растений. Инт Джей Сол Энерджи. 1982; 1: 55–69. http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/01425918208909875.

    40. Дюпраз С., Марроу Х., Талбот Г., Дюфур Л., Ножье А., Ферар Ю. Сочетание солнечных фотоэлектрических панелей и продовольственных культур для оптимизации землепользования: к новым агроэлектрическим схемам. Обновить энергию. 2011 [цитировано 3 февраля 2014 г. ]; 36: 2725–32. http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0960148111001194.

    41. Marrou H, Wery J, Dufour L, Dupraz C. Продуктивность и эффективность использования радиации салата, выращенного в полутени фотогальванических панелей. Эур Джей Агрон. 2012 [цитировано 3 февраля 2014 г.]; 44: 54–66. http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1161030112001177.

    42. Lichtenthaler HK. Хлорофиллы и каротиноиды: пигменты фотосинтетических биомембран. Методы Энзимол. 1987: 350–82. http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/0076687987480361.

    43. Книплинг Э.Б. Физические и физиологические основы отражения растительностью видимого и ближнего инфракрасного излучения. Окружающая среда удаленных датчиков. 1970;1:155–159. doi: 10.1016/S0034-4257(70)80021-9. [CrossRef] [Google Scholar]

    44. Оцу Н. Метод порогового выделения из гистограмм уровней серого. IEEE Trans Syst Man Cybern. 1979; 9: 62–6. http://ieeexplore.ieee.org/lpdocs/epic03/wrapper.htm?arnumber=4310076.

    45. Granier C, Aguirrezabal L, Chenu K, Cookson SJ, Dauzat M, Hamard P, et al. PHENOPSIS, автоматизированная платформа для воспроизводимого фенотипирования реакции растений на дефицит почвенной влаги у Arabidopsis thaliana, позволила идентифицировать образец с низкой чувствительностью к дефициту почвенной влаги. Новый Фитол. 2006; 169: 623–635. doi: 10.1111/j.1469-8137.2005.01609.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

    46. Rey H, Dauzat J, Chenu K, Barczi JF, Dosio GAA, Lecoeur J. Использование трехмерного виртуального подсолнуха для имитации захвата света на уровне органов, растений и участков. : вклад перехвата органов, влияние гелиотропизма и анализ генотипических различий. Энн Бот. 2008; 101:1139–1151. doi: 10.1093/aob/mcm300. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

    47. Cookson SJ, Van Lijsebettens M, Granier C. Корреляция между переменными роста листьев указывает на внутренний и ранний контроль размера листьев у Arabidopsis thaliana . Окружающая среда растительной клетки. 2005; 28:1355–1366. doi: 10.1111/j.1365-3040.2005.01368.x. [CrossRef] [Google Scholar]

    48. Granier C, Tardieu F. Расширение листа и деление клеток зависят от уменьшения поглощенного света до, но не после снижения скорости деления клеток в листе подсолнечника. Окружающая среда растительной клетки. 1999; 22:1365–1376. doi: 10.1046/j.1365-3040.1999.00497.x. [CrossRef] [Google Scholar]

    49. Scaife A, Cox EF, Morris GEL. Взаимосвязь между массой побегов, густотой растений и временем при размножении четырех видов овощей. Энн Бот. 1987;59:325–34. http://aob.oxfordjournals.org/content/59/3/325.abstract.

    50. Арнольд С.М., Монтейт Дж.Л. Развитие растений и средняя температура в среде обитания Тисдейла. J Экол. 1974; 62:711. http://www.jstor.org/stable/2258951?origin=crossref.

    51. Мерзляк М.Н., Гительсон А.А., Чивкунова О.Б., Ракитин В.Ю. Неразрушающее оптическое обнаружение изменений пигмента во время старения листьев и созревания плодов. Завод Физиол. 1999; 106: 135–141. doi: 10.1034/j.1399-3054.1999.106119.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

    52. Tomé F, Jansseune K, Saey B, Grundy J, Vandenbroucke K, Hannah MA, et al. rosettR: протокол и программное обеспечение для анализа площади рассады и роста. Растительные методы. 2017;13:13. http://plantmethods.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13007-017-0163-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

    53. Варма В., Осури А.М. Black Spot: платформа для автоматической и быстрой оценки площади листьев по отсканированным изображениям. Завод Экол. 2013; 214:1529–1534. doi: 10.1007/s11258-013-0273-z. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

    54. Wang X-F, Huang D-S, Du J-X, Xu H, Heutte L. Классификация изображений листьев растений со сложным фоном. Прикладные математические вычисления. 2008; 205: 916–26. http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0096300308003718.

    55. Монтейт Дж.Л., Мосс С.Дж. климат и эффективность растениеводства в Великобритании [и обсуждение] Philos Trans R Soc B Biol Sci. 1977; 281: 277–294. doi: 10.1098/rstb.1977.0140. [CrossRef] [Google Scholar]

    56. Бенсинк Дж. О морфогенезе листьев салата в зависимости от света и температуры. ВАГЕНИНГЕН: H. VEENMAN & ZONEN N.V.; 1971. [Google Scholar]

    Малина (Rubus spp.) — Плодовая гниль и Botrytis тростника

    1. Болезни растений
    2. Описание хозяина и болезни

    Причина Исследование, проведенное в 2015 году, показало, что большинство изолятов представляют собой Botrytis cinerea, грибок, вызывающий пятнистость цветков, предуборочную гниль, послеуборочную гниль и инфекции тростника. Потери урожая могут превышать 50% в годы, когда дожди продолжаются во время цветения и сбора урожая. Потери урожая в Восточной Канаде прогнозировались по средней влажности и переносимому по воздуху инокуляту за 1-2 недели до цветения.

    На малине зимует в виде склероций на побегах и мицелия в опавших листьях и мумифицированных плодах. Весной склероции образуют конидии. Влажная влажная среда идеальна для спорообразования и распространения патогенов. Споры разносятся в основном ветром, но также могут переноситься брызгами дождевой или поливной воды. Споры нуждаются в свободной воде на поверхности растений для прорастания и заражения. Влажная погода (например, дождь, сильная роса, туман или даже полив) непосредственно перед и во время цветения важна для развития болезни. Все части цветка, кроме чашелистиков, очень восприимчивы. В течение многих лет считалось, что начальные инфекции цветов являются латентными, так что гриб находится в состоянии покоя до тех пор, пока плоды не созреют. Появляется все больше доказательств того, что цветение может не быть критическим временем для заражения. Зрелость плодов может иметь гораздо большее значение для развития болезни. Концентрация спор в воздухе возрастает и остается повышенной во время и после сбора урожая. Плодовая гниль может быть более распространена во влажную погоду, на полях с системами верхнего орошения или там, где плоды перезревают в поле для механического сбора урожая. Конидии могут поражать зрелые или стареющие листья, что приводит к заражению флориканами, а иногда и первичными инфекциями через черешки. Заражение тростника также может происходить через раны.

    Симптомы Гнилые плоды, обычно с пучками серого грибка, разрастающимися на всей ягоде или ее части. В некоторые годы лишь несколько костянок на ягоде могут иметь грибной нарост. Зараженные ягоды редко выделяют сок. Сосуды сорванных плодов также могут быть колонизированы грибковыми спорами и стать серыми. Гнилые плоды могут мумифицироваться и оставаться прикрепленными к сосуду. Бледно-коричневые пятна могут появляться на листьях первоцвета в середине или конце лета.

    Коричневое поражение в форме щита вначале можно увидеть вокруг узла тростника, что указывает на заражение через колонизированный черешок листа. Эта форма щита будет потеряна по мере расширения поражения. Инфекции тростника между узлами проявляются в виде поражений от желтовато-коричневого до коричневого и распространяются в обоих направлениях, часто охватывая более одного узла. Повреждения тростника демонстрируют типичные концентрические «водяные знаки» с конца лета до конца зимы. Склероции могут быть видны на побегах в виде блестящих, черных, пузырчатых структур. Склероции появляются на увядших цветоносах ранней осенью, а затем на примоканах поздней осенью и в течение всей зимы. Молодые поврежденные первоцветы могут погибнуть, когда поражения опоясывают побеги. Повреждения старых первоцветов обычно не убивают побеги.

    Культурный контроль Ни одна культурная практика не обеспечивает адекватного управления серой гнилью в очень благоприятных условиях. Объедините несколько тактик для лечения этого заболевания. Использование культурных тактик снижает зависимость от применения фунгицидов и может помочь справиться с устойчивостью к фунгицидам.

    • Сорта «Munger», «Chilliwack», «Comox», «Fairview» и «Meeker» показали умеренную устойчивость к плодовой гнили Botrytis. «Чилкотин», «Нутка» и «Уилламетт» продемонстрировали устойчивость к инфекциям, вызванным ботритисом.
    • Создайте открытый полог растений: используйте систему дрессировки с двойной верхней проволокой, подрезайте, избегайте чрезмерного внесения азотных удобрений и контролируйте сорняки. Эти методы улучшают циркуляцию воздуха, увеличивают проникновение света и ускоряют высыхание поверхности растений после полива и дождя.
    • Избегайте чрезмерного внесения азотных удобрений.
    • Собирайте фрукты в самое прохладное время дня. Держите собранные плоды в тени в поле, а затем как можно скорее переместите их в холодильник. Собирайте часто, чтобы ягоды не перезрели.
    • Борьба с раннеспелыми примоканами.
    • Отрегулируйте полив, чтобы растения не оставались влажными в течение длительного периода времени. Переключитесь с дождевания на капельное/капельное орошение.
    • Удаляйте опавшие плоды во время подвязывания.

    Химическая борьба Опрыскивать сначала при цветении 5%, а затем снова с интервалом 7-10 дней в течение цветения. Обработка в течение вегетационного периода, особенно перед сбором урожая, помогает бороться с дождливой погодой. Тщательное покрытие и проникновение в навес имеют важное значение. Штаммы грибов могут стать устойчивыми к фунгициду, если он используется исключительно в режиме опрыскивания. Чтобы снизить вероятность толерантности, чередуйте или добавляйте в баковые смеси фунгициды с разными механизмами действия. Сведите к минимуму использование любой группы фунгицидов не чаще двух раз в год. Из Германии сообщалось о штаммах, устойчивых к 5 различным механизмам действия. Устойчивость к группе 2, 9и 17 фунгицидов были зарегистрированы в северном Вашингтоне. Прекращение применения фунгицидов Группы 2 в течение многих лет привело к повышению чувствительности и позволило снова использовать их в ограниченном количестве в этой области. Обследования, проведенные в Орегоне с 2014 по 2017 год, показали, что Botrytis устойчив к фунгицидам групп 7, 9 и 17. При выборе продуктов для ротации и/или смешивания необходимо учитывать фунгициды группы 7, когда они используются при орошении в качестве нематоцида.

    • Bonide Captan 50 WP на 5 столовых ложек/галлон воды можно использовать в домашних садах. Не использовать в течение 3 дней после сбора урожая. Н
    • Captan 80 WDG при 2,5 фунта/А. Не применять в течение 3 дней после сбора урожая. Избегайте использования, когда медоносные пчелы активны из-за токсичности личинок. Фунгицид группы М4. 48-часовой повторный вход.
    • CaptEvate 68 WDG при 3,5 фунта/га Не применять в течение 3 дней после сбора урожая или более 17,5 фунта/га/сезон. Избегайте использования, когда медоносные пчелы активны из-за токсичности личинок. Группа 17 + фунгицид М4. 48-часовой повторный вход.
    • Cueva от 0,5 до 1 галлона/100 галлонов воды/аэр. Можно использовать в день сбора урожая. Фунгицид группы М1. 4-часовой повторный вход. О
    • Elevate 50 WDG при 1,5 фунта/А. Можно использовать до дня сбора урожая включительно. Фунгицид группы 17. 12-часовой повторный вход.
    • Fontelis в количестве от 14 до 24 жидких унций/год плюс еще один фунгицид. Можно использовать в день сбора урожая. Фунгицид 7 группы. 12-часовой повторный вход.
    • Продукты на основе ипродиона плюс еще один фунгицид с другим механизмом действия. Можно применять в день сбора урожая. Не смешивайте с инсектицидами из-за токсичности для взрослых и/или личинок медоносных пчел. Фунгицид 2 группы. 24-часовой повторный вход.
      • Iprodione 4L AG от 1,5 до 2 пинты/А.
      • Метеор от 1,5 до 2 пинты/А.
      • Nevado 4F от 1,5 до 2 пинты/А.
      • Rovral 4 Текучесть от 1,5 до 2 пинты/А.
    • Kenja 400 SC, от 13,5 до 15,5 жидких унций/год. Не использовать в течение 7 дней после сбора урожая. Фунгицид 7 группы. 12-часовой повторный вход.
    • Luna Tranquility от 16 до 27 жидких унций в день. Можно использовать в день сбора урожая. Фунгицид группы 7+9. 12-часовой повторный вход.
    • Oso SC от 6,5 до 13 жидких унций/год. Можно применять в день сбора урожая. Группа 19фунгицид. 4-часовой повторный вход. О
    • Ph-D WDG с концентрацией 6,2 унции/год плюс адъювант. Можно применять в день сбора урожая. Фунгицид группы 19. 4-часовой повторный вход.
    • Pristine от 18,5 до 23 унций/год. Не используйте с какой-либо другой добавкой в ​​бак. Можно использовать в день сбора урожая. Комбинация фунгицидов групп 7 и 11. 12-часовой повторный вход.
    • Switch 62,5 WG при плотности от 11 до 14 унций/год. Можно использовать до дня сбора урожая включительно. Комбинация фунгицидов групп 9 и 12. 12-часовой повторный вход.

    Примечание. Испытания в западной части штата Вашингтон показали, что Serenade и Regalia не контролируют это заболевание и не рекомендуются к применению.

    Биологический контроль Было показано, что многие различные организмы эффективны в контролируемых условиях, но контроль становится более разнообразным в полевых условиях. Комбинируйте с культурными тактиками и/или интегрируйте с синтетическими фунгицидами для достижения наибольшей эффективности.

    • Botector (штаммы Aureobasidium pullans DSM 14940 и 14941) от 5 до 10 унций/год в зависимости от объема воды. Можно применять в день сбора урожая. Совместим с серой, маслами и некоторыми фунгицидами, но не со многими синтетическими фунгицидами. 4-часовой повторный вход. О
    • BotryStop (штамм Urocladium oudemansii U3) от 2 до 4 фунтов/акр. Хранить в холодильнике перед использованием. Совместим со многими смачивающими агентами, некоторыми фунгицидами и биологическими препаратами, но не со всеми. Неизвестная эффективность в PNW. 4-часовой повторный вход. О
    • DoubleNickel 55 (штамм Bacillus amyloliquefaciens D747) от 0,25 до 3 фунтов/акр. Неизвестная эффективность. Фунгицид группы ВМ02. 4-часовой повторный вход. О
    • Prestop (штамм Gliocladium catenulatum J1446) на 0,33 унции/5 галлонов воды. Не используйте с другими продуктами в баке. 4-часовой повторный вход. О
    • Stargus (штамм F727 Bacillus amyloliquefaciens) от 2 до 4 кварт/год. Можно использовать до сбора урожая включительно. Фунгицид группы ВМ02. 4-часовой повторный вход. О
    • Zen-O-Spore (штамм U3 Ulocladium oudemansii) от 2 до 4 фунтов/акр. Неизвестная эффективность. 4-часовой повторный вход. О

    Ссылки Карисс, О., Макнилис, В.

  • Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *