Гомеопатия в сельском хозяйстве — гомеопатия 360

Эффективность гомеопатического препарата против хлопкового мучнистого насекомого Доказательное исследование.

РЕФЕРАТ: Основная цель этой статьи — узнать об эффективности гомеопатических лекарств в борьбе с самой большой угрозой для фермеров — воздействием мучнистого червеца на растения. В этой статье показано, насколько эффективно можно использовать гомеопатию, чтобы остановить вторжение мучнистого червеца с помощью динамических лекарств, более эффективно с меньшими затратами, а также без распыления химикатов на растения.

Как мы все знаем, эффективность гомеопатических лекарства на человека сейчас, мы также должны знать, насколько они эффективны растения тоже. Способ действия, а также закон подобия также могут быть применяется даже в сельском хозяйстве. Основные принципы и режим работы введение лекарств сохраняется даже в сельском хозяйстве. Гомеопатические лекарства такие как Silicea & arnica, играют огромную роль в борьбе с мучнистыми червецами. а также защитить растения.Это помогает в улучшении рост растений, а также помогает быстрее оправиться от негативных последствий мучнистые червецы.

В гомеопатии мы придаем большое значение индивидуальности и есть уникальный способ прописать similimum, основанный на нескольких наблюдения, я также хотел бы сказать, что растения уникальны, если сравнивать их людям и животным и нужен другой подход. Закон подобия обладает огромным потенциалом и может дать новое направление, требующее внимания исследователи в альтернативном сельском хозяйстве. ¹

Испытание на растениях и поиск подходящих лекарств невыполнимая задача, поскольку мы все знаем, что придаем значение субъективным симптомам, и невозможно извлечь эти субъективные симптомы из растений, которые одно из величайших ограничений в гомеопатии и конструировании материала Медика для растений неизбежна. ²

КРАТКАЯ ИНФОРМАЦИЯ ПО БАГАЖНИКАМ:

Мучнистые червецы гораздо менее подвижны на растении, чем другие группы переносчиков, такие как тля и цикадка, что делает они относительно неэффективны как вирусные векторы. ³

Мучнистые червецы — одни из самых серьезных вредителей тепличные растения. Зараженные растения выглядят некрасиво из-за беловатого оттенка. хлопчатобумажная масса насекомых и черная сажистая плесень, развивающаяся на выделения пади. Присутствие муравьев должно насторожить садовода, чтобы тот проверил муравьев. следы, чтобы определить, несут ли муравьи мучнистого червеца в теплицу. ⁴

Обычно они переходят с одного растения на другое в соприкоснувшись с ним, ползающие нимфы передвигаются легче взрослых.Муравьи мучнистые червецы могут перемещать их с одного растения на другое, а иногда и Может произойти распространение ветром на большие расстояния. Мучнистые червецы питаются флоэмой. ⁵

РАЗМНОЖЕНИЕ И ЗАВОД НА ЗАВОД ТРАНСМИССИЯ:

Максимальный период инкубации яиц составил 120 мин. Продолжительность воспроизводства была от 10 до 47 дней. Потомство продуктивность взрослых самок была дизъюнктивной с от одной до семи нерепродуктивных периоды, перемежающиеся репродуктивной фазой жизненного цикла.Более Самки производили более 10 гусениц в день в течение минимального и максимального период 6 и 30 дней ⁶

его быстрое распространение среди самых разных сельскохозяйственных климатические зоны Индийского континента. Меньшие числа и меньшая продолжительность жизни самцы предположили, что они играют второстепенную роль в воспроизводстве, хотя полевые условия ⁷

ГОМЕОПАТИЯ В СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ:

Как мы все знаем, когда дело доходит до одного из лучшие методы лечения людей Гомеопатия приходит в голову, но когда она идет на растения, нас беспокоит только урожай, который мы получаем от него, и лучший способ получить лучший урожай — использовать на них агрессивные химикаты, а не беспокоясь о том, что они тоже живые существа, у них тоже есть жизнь.

В этой статье я поделюсь с вами одним из лучших и экономичный способ обработки растений нулевым содержанием химикатов, а также Меньше затрат и меньше обслуживания. Это будет предвестником крупномасштабного исследование, чтобы узнать истинную эффективность гомеопатических препаратов на растения, пораженные мучнистыми червецами.

Здесь я буду обсуждать эффективность Гомеопатия на растениях. Растение, пострадавшее здесь, — это гибискус. Гибискус это род цветковых растений семейства мальвовых, Malvaceae.Род довольно большой, насчитывающий несколько сотен видов, аборигенных для теплых умеренные, субтропические и тропические регионы мира. Член виды известны своими большими эффектными цветами, и эти виды широко известный как «гибискус». ⁸

Растение полностью поражено мучнистым червецом, листья начали желтеть, стебель был заполнен этими жуками и цветами имел низкорослый рост, а также отмечалось опадание листьев. Был нездоровый вид, растение было очень хрупким и от легкого прикосновения листья опадали.

Как мы все знаем, Без присутствия химических кремнезем в своих клетках, растения в основном не могут стоять в вертикальном положении или даже расти. Он регулирует все клеточные процессы, включая размножение, придает здоровую устойчивость к ломкому росту и добавляет силы и «твердости». Когда кремнезема отсутствует в почве или когда растения не могут его получить, гомеопатический кремнезем имеет огромное значение — хилые растения со слабыми и беспорядочный рост или склонные к грибковым атакам, часто становятся сильными и сильный в течение нескольких дней после распыления. ⁹

Что касается нашей Материи медики. Каждое лекарство имеет собственное описание его различных характеристик. Список и категоризация из наиболее вероятных лекарств называется Materia Medica. Materia Medica — это включать все вещества, которые были доказаны и которые использовались с очевидная эффективность. ¹⁰

На основании вышеупомянутой особенности Silicea 30 был прописали, и растение начало улучшаться, проще всего добавить 6-8 капельки желаемого средства в бутылку с водой на 150 мл и один раз встряхните. глобулы растворились.Эту смесь можно использовать для добавления к маленьким или большим количество воды в зависимости от растения. Спрей распыляли каждое утро на 2 месяца. В течение нескольких недель растение выздоровело и избавилось от мучнистых червецов и снова начал цвести. Продолжительность моей будет немного больше, чтобы выздороветь, когда по сравнению с агрессивными химикатами, но мы также должны знать, что без химикатов и очень меньше вреда для пораженного растения, его здоровье было восстановлено.

Так как это раздел гомеопатии для лечения растений настолько новинка, что количество информации о том, как ее использовать, постоянно растет.Потому что гомеопатия недорого и безопасно, он привлек многих увлеченных идея о том, что работа с природой представляет собой невероятный потенциал. ¹¹

1 ^ул неделя

3 ^ряд неделя

5 ^чт неделя

8 ^чт неделя

Заключение:

Поскольку все мы знаем, что гомеопатия работает для людей, животных и растений, а также поддерживает внутренние силы самовосстановления, лекарства не содержат остатков, безопасны и работают очень безвредно, не имеют побочных эффектов когда речь идет о большом количестве растений, страдающих схожими симптомами Гомеопатия очень экономичен и может изменить правила игры в сельском хозяйстве.

ССЫЛКА:

1. Betti, M. Brizzi, D. Nani, M.Peruzzi (1997): Влияние высоких разведений Arsenicum Album на проростки пшеницы от семян, отравленных тем же веществом; Британский гомеопатический журнал, апрель, Vol. 86, стр 86-89.
2. https://orgprints.org/23727/1/23727_MM.pdf оценка 02-03-2021
3. https://www.sciencedirect.com/topics/agricultural-and-biological-sciences/mealybug
4. Дэвид Э. Хартли, Введение в цветоводство (второе издание), 1992
5. Роджер Халл, Вирусология растений Мэтьюса (четвертое издание), 2002 год
6. Бен-Дов Ю.1994 Систематический каталог мучнистых червецов мира, с.686. Intercept Limited, Андовер, Великобритания.
7. https://watermark.silverchair.com/jis10 assesd on 4-03-21
8. «Род: Hibiscus L». Информационная сеть по ресурсам зародышевой плазмы. Министерство сельского хозяйства США. 2007-10-05. Архивировано 28 мая 2010 года. Проверено 16 февраля 2010 г.
9. https://homeopathyplus.com/homeopathic-silica-the-gardeners-friend
10. Homeopathic Materia Medica, Oscar E. Boericke, Narayana Publishers, page ix, Kandern, Germany
11. https: / / www.michmontreal.com/grow-your-green-thumb/assesd

Об авторе:

Доктор Скандхан. С. Кумар, BHMS MD Органон медицины, Доцент кафедры органона медицины и философии, отец Гомеопатический медицинский колледж Мюллера.

Д-р Шрейя Н. Падияр, BHMS, MD Organon of Medicine, Доцент кафедры хирургии Енепоя гомеопатическая медицина Колледж.

Как избавиться от мучнистых червецов на суккулентах | Общие проблемы суккулентов

Ваши суккуленты растут здоровыми и здоровыми, но однажды вы замечаете, что по стеблям ваших любимых растений ползают крошечные пушистые белые вещества, и если их не игнорировать, растения могут медленно увядать и в конце концов погибнуть.Пушистые белые вещества — это мучнистые насекомые, одна из самых распространенных проблем с суккулентами, связанная с вредителями, и проблема, которая требует долгой и тщательной борьбы, чтобы избавиться от них.

Заметили хлопчатобумажную ткань на ваших сочных листьях? Это мучнистый червец, обычный вредитель комнатных растений, который поедает новообразования на растении. Причина этого неясна, но в большинстве случаев они появляются, когда ваш суккулент поливают слишком сильно.

Они похожи на худшую домашнюю мозоль на свете.Мучнистые червецы любят прятаться под листьями, поэтому их сложно обнаружить у суккулентов компактной формы, таких как эхеверия или крассула. В большинстве случаев, прежде чем вы осознаете это, ваши суккуленты уже начинают деформироваться. Мучнистый червец опасен тем, что в идеальных условиях он может очень легко распространяться. Самка может отложить до 600 яиц, а вылупление занимает всего 6 дней. Следовательно, как только вы заметите какие-либо признаки мучнистого червеца, необходимо принять немедленные меры, чтобы избавиться от них.

Первое, что нужно сделать, если вы заметили мучнистые насекомые на своих суккулентах, — это поместить зараженные растения в карантин, удалить их от других растений .Осмотрите здоровые растения, чтобы увидеть, есть ли на них какие-либо признаки мучнистых насекомых.

<Изображение: Mealy Bugs на суккуленте. Фото любезно предоставлено Pinterest>

После этого подготовьтесь к очистке зараженных растений, вынув растение из горшка и полоскание под сильной струей воды . Вымойте кастрюлю в горячей мыльной воде. Дайте растению и горшку высохнуть, затем заново засыпьте новой почвой. Выбрасывайте старую почву в обычный мусор, а не в зеленый ящик.

<Изображение: Мучнистые жуки на Эхеверии.Фото любезно предоставлено Juicykits>

Если у вас нет готовой смеси суккулентной почвы, доступной сразу в вашем доме, вы можете поместить ее в пригодный для духовки контейнер, покрытый фольгой, затем запекать при 180-200 ° F не менее 30 минут или когда температура почвы достигает 180 ° F. Затем дайте остыть и пересадите. Наша рекомендация — получить новую почву, поскольку в старой почве могут остаться яйца мучнистых насекомых.

Теперь переходим к самому важному — уничтожению мучнистого червеца. Наверное, первое, что приходит в голову, — это химические пестициды.Однако некоторые из них могут быть довольно вредными для суккулентов, поэтому мы не рекомендуем их использовать. Вот несколько безопасных вариантов, которые мы опробовали и находим их очень полезными:

Сначала медицинский спирт (изопропиловый спирт) или смесь масла нима и мыла. Медицинский спирт 75% — самый дешевый, но самый эффективный метод борьбы с тлей, мучнистым червецом и паутинным клещом. Просто тщательно опрыскайте суккуленты и оставьте их там. Вы заметите, что жук начинает становиться коричневым, что означает, что они мертвы.Спирт полностью испарится за несколько минут, поэтому он не повредит растениям. Делайте это каждую неделю, пока не перестанете обнаруживать ошибки.

Масло нима — еще один безопасный инсектицид, который можно непосредственно к активным заражениям. Он может убить все стадии мучнистые червецы при контакте. Смешайте 5% масло нима с водой, добавьте несколько капель мыла и распылите его на суккулент. Помните, что нельзя использовать концентрированное масло нима, так как оно может обжечь суккуленты.

Если у вас нет пульверизатора, вы можете использовать ватную палочку, чтобы закрасить любое место с мучнистыми насекомыми.Через несколько часов промойте растение водой, чтобы избавиться от мертвых клопов. Медицинский спирт и масло нима можно легко найти в местных аптеках или в Интернете. При использовании масла нима или медицинского спирта не выставляйте растение на солнце, чтобы избежать водяных пятен или солнечных ожогов. Держите их подальше от окна или прямых солнечных лучей в течение нескольких дней.

Проверьте свое растение и повторяйте эти действия в течение нескольких дней, чтобы увидеть, не осталось ли там мучнистых насекомых. Затем снова распылите через неделю в профилактических целях.Вы также можете использовать масло нима, чтобы разбрызгать его в почву, чтобы убить любых прячущихся там насекомых или яиц. Если после тщательной проверки и опрыскивания в течение нескольких недель вы больше не видите появления мучнистых насекомых, верните растение на прежнее место и продолжайте проверять его каждые 3 недели.

<Изображение: Используйте ватные палочки, чтобы аккуратно выделить мучнистые насекомые. Фото любезно предоставлено Faithfoodfamilyfun.com>

Хотя масло нима и медицинский спирт довольно безопасны, есть вероятность, что они могут повредить ваш суккулент. Итак, мы рекомендуем другое натуральное средство — божья коровка . Да, вы правильно поняли! Эти милые божьи коровки — естественные враги для всех видов проблемных вредителей, в том числе для мучнистого червеца. Однако мы рекомендуем использовать божью коровку только в том случае, если ваше растение находится на ранней стадии заражения, и для профилактики.

<Изображение: Божья коровка на растении. Фото любезно предоставлено Pinterest.com>

Как предотвратить заражение мучнистым червецом

А чтобы предотвратить заражение, вы можете предпринять некоторые превентивные меры : изолируйте любое новое растение на 2-3 недели, чтобы проверить, не заражено ли оно, регулярно проверяйте все растения, чтобы остановить заражение, когда оно еще маленькое.

Кроме того, вы должны быть начеку, когда муравьи начинают теснить ваши растения, как муравьи, похожие на сладкую воду, выделяемую мучнистыми насекомыми. Следите за тем, чтобы место с вашим растением было сухим, чистым, без гниющей листвы или цветов.

Если у вас нет времени, чтобы часто осматривать суккуленты, вы можете купить божьих коровок, которые будут охранять ваши растения.

в Коробка для суккулентов, мы регулярно проверяемся Калифорнийское министерство сельского хозяйства по борьбе с вредителями и болезнями. Мы тщательно проверяем каждый суккулент перед отправкой, чтобы убедиться, что он здоров.Если вы заметили что-то необычное со своими суккулентами, немедленно сообщите нам об этом.

* Если вы покупаете что-то, на что мы ссылаемся на нашем сайте, мы можем получать комиссию.

Посмотрите видео ниже, чтобы узнать, как избавиться от мучнистого червеца на суккулентах

Если вы нашли эту статью интересной, поделитесь ею со своими сочными любящими друзьями!

И получите в подарок растение, когда ваши друзья сделают заказ.Подпишите здесь!

Узнайте больше о том, как выращивать и наслаждаться множеством великолепных суккулентов, а также умными советами по украшению из нашей рассылки. Регистрируемся!

Рекомендуемые позиции

Succulent Studios | Лучшие советы по уходу за сочными и поделки

Никому не нравится, когда нежеланные гости срывают вечеринку.

Вот и все, что такое мучнистый червец: белый, паутинный, всасывающий влагу, нежеланный садовый разбойник. Это одна из наиболее распространенных проблем с суккулентом, поэтому важно знать, как выявлять, удалять и предотвращать мучнистые червецы.Начнем с основ:

Определение мучнистого червеца

Мучнистый червец — это щитовка, обитающая на всей территории США и поражающая множество растений. Он питается влагой внутри своего растения-хозяина и может убить растение, высасывая его досуха, если его не остановить. Их часто можно найти там, где лист соединяется со стеблем, или где-нибудь на вашем суккуленте, где есть новообразования. Наиболее очевидной характеристикой мучнистого червеца является его белый цвет, хотя он также может быть светло-розовым или ярко-желто-зеленым.Второй признак мучнистого червеца, который трудно пропустить, — это белые яичные мешочки, похожие на хлопок. Самки могут отложить до 100 яиц на мешок, так что если вы их видите, пора ПРИНЯТЬ МЕРЫ!

Как от них избавиться

1) Поместите суккулент в карантин. Этот первый шаг очень важен. Мучнистые червецы быстро распространяются, и они очень хорошо прячутся в почве и других щелях. Убедитесь, что они не попадают в остальную часть вашего семейства растений, изолировав зараженные суккуленты.

2) Обрызгайте суккулент 70% изопропиловым спиртом. Обычно вы можете найти его в местной аптеке или на Amazon. Чтобы убить мучнистого червеца, спирт должен вступить в прямой контакт с мучнистым червецом, поэтому спрей так хорошо работает.

3) Используйте ватный тампон, чтобы аккуратно удалить мучнистый червец с суккулента. Если вы хотите проявлять особую осторожность, вы можете окунуть ватный тампон в спирт, чтобы убедиться, что он убивает мучнистого червеца.

4) Пересадите суккулент в хорошо дренируемый горшок с новой сухой почвой для кактусов.Поскольку мучнистые червецы так хорошо прячутся и любят пить как из корней, так и из листьев, они все еще могут оставаться в почве после того, как вы удалите их с поверхности растения. Если у вас под рукой нет запасного горшка, просто вытащите только что очищенный суккулент и отложите его, пока вы чистите горшок и заполняете его новой землей.

Профилактика

Если вам не приходилось иметь дело с мучнистыми червецами и вы хотите сохранить это в таком состоянии, убедитесь, что ваши суккуленты находятся в хорошо дренированной почве и горшках.Мучнистых червецов привлекает влажная влажная среда, поэтому использование кактусовой почвы и горшка с дренажным отверстием является очень полезным сдерживающим средством. Также стоит осмотреть все новые комнатные растения, которые вы, возможно, принесете домой.

Как всегда, дайте нам знать, если у вас возникнут какие-либо вопросы или опасения по поводу ваших суккулентов!

Ладно, хватит об этих ужасных вредителях. Готовы к таким свежим и таким чистым успехам? Нажмите кнопку ниже, чтобы получить скидку 5 долларов на свою первую коробку от Succulent Studios!

Мучнистый червец, питающийся плодовым соком (Ferrisia virgata), является носителем популяций Candidatus Liberibacter asiaticus, которые не вызывают заболеваний у растений-хозяев

Abstract

«Candidatus Liberibacter asiaticus» (Las) является основным возбудителем huanglongbing (HLB), самой разрушительной болезни цитрусовых во всем мире.Существует три известных насекомых-переносчика HLB-ассоциированных бактерий, и все они являются представителями Hemiptera: Diaphorina citri (Psyllidae), Trioza erytreae (Triozidae) и Cacopsylla ( Psylla ) citrisuga Psyllidae). В этом исследовании мы обнаружили, что другой гемиптеран, полосатый мучнистый червец Ferrisia virgata (Cockerell) (Hemiptera: Pseudococcidae), был способен приобретать и сохранять бактерии Las. Титры бактерий положительно коррелировали со временем получения питания на Las-инфицированных листовых дисках, при этом двухнедельный период кормления приводил к значениям Ct в диапазоне от 23.От 1 до 36,1 (от 8,24 × 10 ⁷ до 1,07 × 10 ⁴ Las клеток на мучнистый червец). Мы также обнаружили, что популяция профагов / фагов Las у мучнистых червецов отличалась от популяций Las у псиллид на основе молекулярных маркеров, специфичных для Las профага: инфицированные псиллиды содержали в популяциях Las профаг / фаг FP1 и FP2, а инфицированные мучнистые червецы несли бактерии. Las популяции, в которых iFP3 является доминирующим профагом / фагом. Как и у псиллид, на основе анализа количественной полимеразной цепной реакции (КПЦР) рассеченных пищеварительных систем было показано, что бактерии Las перемещаются через стенку кишечника насекомых к слюнным железам после поглощения мучнистым червецом.Однако популяция Las, передаваемая мучнистыми червецами, не вызывала заболеваний у растений-хозяев. Это первое свидетельство генетических различий между популяциями Las, являющихся носителями различных насекомых-переносчиков, и различий между популяциями Las в отношении того, вызывают ли они заболевание у растений-хозяев.

Образец цитирования: Pitino M, Hoffman MT, Zhou L, Hall DG, Stocks IC, Duan Y (2014) Мучнистый червец, питающийся флоэмовым соком ( Ferrisia virgata, ), несет Candidatus Liberibacter asiaticus, популяции, которые не вызывают Болезнь растений-хозяев.PLoS ONE 9 (1): e85503. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085503

Редактор: Джи-Хун Лю, Ключевая лаборатория биологии садовых растений (MOE), Китай

Поступила: 20 августа 2013 г .; Принята к печати: 27 ноября 2013 г .; Опубликовано: 20 января 2014 г.

Это статья в открытом доступе, свободная от всех авторских прав, и ее можно свободно воспроизводить, распространять, передавать, изменять, строить или иным образом использовать в любых законных целях.Работа сделана доступной по лицензии Creative Commons CC0 как общественное достояние.

Финансирование: Финансирование предоставлено Министерством сельского хозяйства США и Министерством сельского хозяйства и бытовых услуг Флориды, грант №18023. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

«Candidatus Liberibacter asiaticus» (Las) является основным возбудителем цитрусовых huanglongbing (HLB), самой разрушительной болезни цитрусовых во всем мире [1]. Бактерии HLB, включающие три вида « Ca. Liberibacter ’- это грамотрицательные альфа-протеобактерии, которые обитают в клетках ситовых трубок инфицированных растений [1], [2], [3], [4], [5]. Симптомы болезни включают желтые побеги, пожелтение жилок, асимметричные пятнисто-крапчатые листья, скручивание листьев с закупоркой жилок, упадок деревьев и, в конечном итоге, гибель растений [1], [6].

Три вида псиллид являются известными насекомыми-переносчиками бактерий HLB: Diaphorina citri (Hemiptera: Liviidae), Cacopsylla citrisuga (Hemiptera: Psyllidae) и Trioza erytreae (Hemiptera: 7 Triozidae). Барвинок ( Catharanthus roseus ) является экспериментальным хозяином бактерий HLB и может быть инфицирован через паразитическую повилику ( Cuscuta campestri ) или путем прививки от инфицированного барвинка к здоровым растениям [8], [9]. Барвинок быстро заражается Las и проявляет симптомы болезни, характерные для HLB цитрусовых [1], [10].Интересно, что патоген быстрее размножается у растений барвинка по сравнению с цитрусовыми, у которых Лас поддерживает относительно низкие титры [11].

Процессы передачи векторных данных часто бывают разнообразными; некоторые из них представляют собой простую механическую передачу, когда патоген передается растению через кончики стилета во время кормления, в то время как другие, такие как бактерии HLB, должны циркулировать по телу переносчика, преодолевать барьеры кишечного эпителия и слюнных желез и, наконец, передаваться в организм человека. растения [12].В отряде Homoptera средняя кишка и слюнные железы пищеварительной системы являются органами, специфичными для пути передачи [13]. У псиллид бактерии HLB должны сначала пересечь барьеры кишечного эпителия и слюнных желез и циркулировать в гемолимфе, прежде чем, наконец, передаться растениям [14]. Стенка кишечника и слюнные железы являются наиболее важными барьерами для устойчиво передаваемых размножающихся патогенов растений [15], [16], [17], [18], [19].

Ранее мы сообщали об обнаружении бактерий Las в 63% полосатых мучнистых червецов, Ferrisia virgata (Cockerell) (Hemiptera: Pseudococcidae), собранных с растений барвинка, инфицированных Las [20].Этот мучнистый червец — насекомое, питающееся флоэмным соком, с широким кругом хозяев, включающим более 150 родов из 68 семейств, включая цитрусовые и барвинки [21]. Мучнистые червецы являются важными вредителями растений, потому что они могут нанести экономический ущерб растениям путем прямого повреждения, вызванного кормлением, выделения слюнных секретов, токсичных для растений, выделения медвяной росы на листья, что способствует развитию блокирующей фотосинтез сажистой плесени, а некоторые виды мучнистых червецов являются переносчиками растений. патогены [22]. Мучнистые червецы похожи на других полукровок, питающихся флоэмами, таких как белокрылки и листоблоки, в том, что касается того, как они используют свои стилеты для питания [22], [23].

Динамика популяций Las у растений-хозяев и насекомых опосредуется их активностью профага / фага [24]. Всего в изолятах Florida Las идентифицировано девять типов профагов / фагов. Типы A и B имеют общие высококонсервативные последовательности, локализованные в двух профагах, FP1 и FP2, соответственно, в то время как тип D локализован в iFP3 (рекомбинант FP1 и FP2). Только типы A и B изобилуют Las-инфицированными псиллидами, тогда как тип D не обнаруживается почти у всех зараженных псиллид.Присутствие iFP3 также связано с пятнистой крапчатостью листьев, фенотипом ослабления болезни [24].

В этом исследовании мы исследовали эффективность приобретения и передачи Las полосатыми мучнистыми червецами и использовали специфические молекулярные маркеры Las для дифференциации различных популяций Las, присутствующих в F. virgata и D. citri . Результаты показывают, что оба насекомых-хозяева способны приобретать и переносить разные популяции бактерий Las, но только листоборосы способны передавать популяции Las, вызывающие заболевания у растений-хозяев.

Материалы и методы

Насекомые

Насекомые для исследования содержались в отдельных клетках, расположенных в теплице на объекте USDA-ARS в Форт-Пирсе, Флорида. Ferrisia virgata, выращены на здоровом барвинке, Catharanthus roseus, выращены из семян в наших теплицах. Diaphorina citri выращивали на здоровых цитрусовых в соответствии с общими процедурами, изложенными Скелли и Хой [25].

Биотест на листовых дисках

Листовые диски были вырезаны из листьев барвинка, инфицированного Las, и старых или молодых листьев цитрусовых, инфицированных Las, с использованием бурава диаметром 11 мм и процедур, описанных в Pitino et al.[26]. Затем их по отдельности помещали в отдельные лунки 24-луночного планшета поверх 2 мл отвержденного 1% агара с дистиллированной водой (DWA). Одну нимфу третьего возраста, выращенную на незараженном растении, помещали на каждый листовой диск, всего 24 листовых диска на чашку. Планшеты индивидуально закрывали сеткой и помещали вверх дном, и мучнистых червецов оставляли на листовом диске на 1 или 2 недели. После первой недели 12 листовых дисков и соответствующих им мучнистых червецов анализировали с помощью количественной полимеразной цепной реакции (кПЦР) с использованием праймеров на основе 16S рДНК и зонда на основе TaqMan [27].Остальные 12 мучнистых червецов были перенесены на новые здоровые диски из листьев барвинка или цитрусовых для анализа передачи. Та же процедура была повторена с двумя новыми когортами, по одной в неделю, по одной третьей возрастной группе на диск (n = 24). Мучнистых червецов отрицательного контроля на здоровых листовых дисках оставляли для кормления в течение 2 недель, а затем анализировали с помощью количественной ПЦР. Эксперименты повторяли трижды.

Анализ всего растения

Исследования эффективности передачи проводились с использованием неинфицированных растений барвинка и зажимных клеток.Десять Las-инфицированных взрослых особей мучнистого червеца, ранее выращенных на инфицированных листьях барвинка в течение 2 недель, были помещены в зажимные клетки, прикрепленные к самому верхнему листу на тестируемом растении. Мы использовали шесть растений барвинка с одной зажимной клеткой для первого растения и добавили по одной дополнительной зажимной клетке на каждое дополнительное растение; таким образом, количество инфицированных мучнистых червецов начиналось с 10 на первом растении и заканчивалось 60 на последнем растении с приростом 10 насекомых на растение. Новые нимфы мучнистого червеца удаляли из каждой клетки каждые 4 дня.Взрослых мучнистых червецов оставляли на растениях на 4 недели. После второй, третьей и четвертой недели n = 10 мучнистых червецов были случайным образом собраны из зажимных клеток для анализа количественной ПЦР. Растения выращивали в течение дополнительных двенадцати месяцев в защищенной от насекомых теплице, их оценивали на предмет визуальных симптомов инфекции и анализировали с помощью количественной ПЦР один раз в месяц.

Рассечение

Результаты qPCR четырех тестов, проведенных на препарированном F.virgata указывает на то, что Лас смог пересечь пищеварительный канал и мембраны слюнных желез. Взрослых мучнистых червецов препарировали под стереомикроскопом и собирали тканевые органы для анализа количественной ПЦР (рис. S1B, C). Слюнные железы, пищеварительные каналы и остальное тело были вырезаны у взрослых особей F. virgata с положительным результатом. Среднее значение Ct составило 27,5 (3,98 × 10 ⁶ клеток) из кишечника, 37,5 (4,08 × 10 ³ клеток) из слюнных желез и 32,1 (1.68 × 10 ⁵ ячеек) от остальной части тела. Слюнные железы были Las-положительными в 30% случаев со значением Ct в диапазоне от 36,5 (8,12 × 10 ³ клеток) до 37,8 (3,32 × 10 ³ клеток) (Таблица 2a). Титр Las был значительно выше в кишечнике по сравнению с слюнными железами и другими частями тела (P <0,001). Дополнительный анализ рассечения был проведен с использованием инфицированных мучнистых червецов, выращенных на целых неинфицированных растениях барвинка в течение четырех дополнительных недель. Средние значения Ct для кишечника и остальных тел были аналогичны таковым у мучнистых червецов, выращенных в течение двух недель на инфицированных листовых дисках.Однако титр Las в ткани слюнной железы увеличился, при этом среднее значение Ct упало с 37,5 (9,43 × 10 ³ клеток) до 30,9 (4,08 × 10 ⁵ клеток), что указывает на перемещение бактерий Las из пищеварительной системы. канал к слюнной железе или репликация (таблица 2b).

Хотя Las инфицированные мучнистые червецы были способны передавать определяемый уровень Las на диски барвинка и листьев цитрусовых, ни один из образцов, полученных от целых растений, инокулированных с использованием системы клипсирования, не дал положительных результатов на бактерии Las в течение двенадцати месяцев (данные не показаны) .

В инфицированных мучнистых червецах и псиллидах существуют различные популяции Las-бактерий

В предыдущем исследовании девять типов вариантов Las были идентифицированы у растений и листоборков, инфицированных Las, при этом четыре типа были многочисленными (A, B, C и D), а пять типов — редкими (E, A1, A2, C1 и C2). [24]. Типы A и B были локализованы в Las профагах, FP1 и FP2 соответственно [33], и было подтверждено их существование в Las-инфицированных хозяевах цитрусовых, барвинка и псиллид. Однако тип D был обнаружен у растений-хозяев, инфицированных Las, но не у псиллид.Когда инфицированные мучнистые червецы и псиллиды были проанализированы с использованием молекулярных маркеров, специфичных для вариантов Las профага / фага, типов A, B и D [24], у мучнистых червецов были обнаружены разные популяции фагов / профагов по сравнению с псиллидами (рис. 3). Интересно, что все протестированные мучнистые червецы содержали высокий уровень типа D и очень низкий уровень типов A и B, в отличие от псиллид, у которых типы A и B были наиболее многочисленными, а тип D отсутствовал (рис. 3).

Праймеры для типа A нацелены на Las prophage FP1, Type B нацелены на Las prophage FP2, а Type D нацелены на Las prophage iFP3. При использовании двух наборов праймеров, Li и LJ900 [27], [29], нацеленных на последовательности Las 16S рРНК и профага, соответственно, была обнаружена кратная разница между значениями Ct Li и LJ900 между псиллидами и мучнистыми червецами.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085503.g003

Был небольшой разрыв между значениями Ct, достигнутыми с использованием стандартных праймеров Li, нацеленных на рРНК Las16S, и праймеров LJ 900, предназначенных для повторы профага / фага для любой из популяций профага псиллид [33].Однако разница в значениях Ct из двух анализов qPCR с использованием двух разных наборов праймеров была заметно больше у тестируемых мучнистых червецов (рис. 3). Это может указывать на высокий уровень фаговой активности у инфицированных мучнистых червецов. Было обнаружено, что популяции профагов / фагов у псиллид и мучнистых червецов различаются, что может быть связано с успешной или неудачной передачей бактерий Las растениям-хозяевам.

Обсуждение

HLB, одно из наиболее серьезных заболеваний цитрусовых, в первую очередь передается насекомыми-переносчиками, особенно азиатскими цитрусовыми псиллидами, D.citri [34], [35], [36]. Бактерии Las способны инфицировать различные ткани органов переносчика, включая пищеварительный канал и слюнные железы, которые являются наиболее важными препятствиями для успешной передачи [34], [17], [11], [18]. В этом исследовании мы обнаружили, что полосатый мучнистый червец может приобретать бактерии Las и стабильно удерживать их в органах, в том числе в слюнных железах, но не может передавать бактерии и вызывать заболевание в целом барвинке или цитрусовых (рис. S1C). .

Были использованы две разные системы анализа: биотест листового диска [37], [26] и анализ всего растения.Чтобы понять процессы приобретения и передачи, мы разработали биотест для выращивания мучнистых червецов на листовых дисках с использованием водного агара в качестве опоры вместо целых листьев. Эта система позволила нам контролировать несколько критических аспектов эксперимента: 1) была нормализована площадь поверхности листа, где мучнистый червец может приобретать или передавать бактерии; 2) уменьшена площадь, в которой мучнистый червец может передавать бактерии; и 3) разведение титра Las, которое происходит на всем листе, было уменьшено. Приобретение патогена мучнистыми червецами составило 100% через 1 неделю на инфицированных Las дисках листьев барвинка.Более того, титр положительно коррелировал со временем удержания на инфицированных листовых дисках, и через две недели значение Ct достигло 23,1 (8,24 × 10 ⁷ клеток). Предыдущий анализ передачи с использованием D. citri , выращенных на Citrus sinensis , показал, что уровень заражения составляет от 60 до 100% для нимф через 5 недель и 40% для взрослых особей [38]. Стоит отметить, что была разница в инокуляции Las между целыми растениями и тестами на листовые диски. Уровень обнаруживаемых бактерий Las в инокулированных листовых дисках был низким, в то время как количество бактерий Las было ниже порога обнаружения в инокулированных растениях.Причина, по которой бактерии Las были ниже порога обнаружения в инокулированных листьях целых растений, еще предстоит исследовать.

Хотя полосатые мучнистые червецы могут приобретать и сохранять Las, различные титры Las, обнаруженные в органах мучнистого червеца, указывают на то, что и слюнные железы, и мембраны пищеварительного тракта представляют собой барьеры для передачи Las у F. virgate [31], [16]. В целом титр Las в слюнных железах был ниже, чем в пищеварительном тракте и других частях тела.Только 30% слюнных желез дали положительный результат со значениями Ct в диапазоне от 36,5 (8,12 × 10 ³ клеток) до 37,8 (3,32 × 10 ³ клеток) (Таблица 2a), что объясняет низкую скорость передачи Las. Пищеварительные каналы имели самый высокий титр, указывающий на то, что они являются первым очагом инфекции в векторе, как ранее было показано для постоянно передаваемых бактериальных и вирусных патогенов [14], [18], [39]. Интересно, что дополнительные недели на неинфицированном барвинке не влияли на титр Las у мучнистых червецов.

Удержание Las снизилось в течение двухнедельного периода, когда Las-позитивные взрослые особи F. virgata были перемещены на неинфицированные листовые диски, что указывает на то, что бактерии не реплицировались, или же репликация была очень низкой скоростью в мучнистые червецы. Аналогичные результаты были показаны на Las-инфицированной взрослой особи D. citri [38]. Однако сохранение Las было относительно стабильным в течение четырех недель, когда положительные взрослые особи F. virgata были перемещены на целые неинфицированные растения барвинка (рис.2). Эти результаты свидетельствуют о плохой репликации или устойчивости бактерий Las в органах мучнистого червеца. Предыдущие данные показывают, что приобретение Las в D. citri увеличивается с более длительным периодом доступа для получения на зараженных цитрусовых растениях с 0% за одну неделю до 39% через пять недель [38]. Интересно, что увеличение приобретения Las F. virgata на листовых дисках также коррелировало с увеличением продолжительности периода доступа для приобретения на инфицированных листовых дисках.Более того, ограничение насекомых на Las-положительных листовых дисках позволяет мучнистым червецам достичь 100% -ной степени инфицирования всего через одну неделю, когда мучнистые червецы питались инфицированными дисками барвинка или молодых листьев цитрусовых, и 85% — старыми дисками листьев цитрусовых (рис. 2). Один взрослый псиллид был способен передавать возбудителя Las после однодневного инокуляционного периода доступа (IAP). Однако общий коэффициент успеха не превышал 6,3% с одной инокуляцией. Это увеличилось до 66% после 30-дневного IAP [40]. Отдельные положительные взрослые мучнистые червецы успешно инокулировали от 16% до 25% дисков листьев барвинка и цитрусовых с помощью Las через две недели IAP (таблица 1).

Используя Las-специфические праймеры, нацеленные на ген 16S рРНК и повторяющийся ген в области фага / профага, мы проанализировали слюнные железы псиллид и мучнистых червецов. Значения Ct незначительно различались между этими двумя наборами праймеров у псиллид, но существенно различались у мучнистых червецов (рис. 3). Что еще более важно, было обнаружено, что мучнистые червецы содержат гораздо более высокие титры типа D по сравнению с псиллидами (рис. 3). В частности, псиллиды содержат типы A и B, которые соответствуют профагам FP1 и FP2 соответственно [41].Напротив, мучнистые червецы несли в основном популяцию Las типа D с очень низкими титрами типов A и B. Эти результаты показывают, что фаг может быть более активным в мучнистом червеце, чем в листоборке, и что типы популяций кажутся разными. Бактерии Las способны перемещаться из кишечника в слюнные железы как у листоборцев, так и у мучнистых червецов; однако только листовой лист может передать бактерии Las обратно в цитрусовые и вызвать заболевание. Мы предполагаем, что фаг iFP3, который содержит тип D [24], может влиять на эффективность передачи Las за счет экспрессии важных генов или за счет снижения титра Las в слюнных железах, убивая бактерии в процессе репликации фага iFP3.Дальнейшая работа необходима для понимания взаимодействий между вектором, патогеном и растением, и характеристика родственных генов в профагах может иметь решающее значение для выяснения ключевых компонентов, связанных с передачей Las.

В заключение, F. virgta демонстрирует как сходства, так и различия по сравнению с D. citri с точки зрения приобретения и / или передачи бактерий Las. Результаты также подтверждают комплекс популяций бактерий Las и их связь с передачей насекомых и развитием болезней.Различные популяции Las, обнаруженные у двух насекомых, питающихся флоэмой, могут объяснить, почему бактерии, передаваемые полосатым мучнистым червецом, не вызывали заболеваний у растений-хозяев. Понимание факторов Las-профага (ов), влияющих на передачу Las насекомыми-переносчиками, может привести к новой тактике управления HLB.

Дополнительная информация

Рисунок S1.

Биологический анализ листового диска и общая анатомия пищеварительного тракта и слюнных желез Ferrisia virgata , наблюдаемых на неокрашенных препаратах с помощью стереомикроскопии. A) Биологический анализ листового диска для определения приобретения и передачи « Candidatus Liberibacter asiaticus» (Las) у насекомых F. virgata . Б) Общая анатомия пищеварительного тракта мучнистого червеца; Сокращения: amg — передняя средняя кишка; fc, фильтровальная камера; mt, мальпигиевы канальцы; pmg, задняя часть средней кишки. В) Общая анатомия слюнных желез мучнистого червеца; сокращения: sg — слюнные железы; asg, добавочная слюнная железа.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085503.s001

(TIF)

Благодарности

Благодарим С.Латце, М. Хикману, Дж. Смиту и К. Моултону за отличную техническую помощь, докторам К. Лесли Беньон и Шерил Армстронг за критическую рецензию рукописи.

Вклад авторов

Эксперимент задумал и спроектировал: MP MH YPD. Проведены эксперименты: МП МЗ ЛЗ ИС. Проанализированы данные: МП ЛЗ. Предоставленные реагенты / материалы / инструменты анализа: MP DH YPD. Написал бумагу: МП ЯПД.

Список литературы

1. 1. Бове Дж. М. (2006) Хуанлунбин: деструктивная, недавно возникшая столетняя болезнь цитрусовых.Журнал патологии растений 88: 7–37.
2. 2. Обер Б. Г.М., Кассин Дж. К., Бертин И. (1988) Обследование заболеваний, вызывающих озеленение цитрусовых в странах Восточной и Западной Африки к югу от Сахары. Труды 10-й конференции IOCV, IOCV, Риверсайд, 231–237.
3. 3. Бове Дж. М. А.А. (2007) Этиология трех недавних заболеваний цитрусовых в штате Сан-Паулу: внезапная смерть, пестрый хлороз и хуанлонгбинг. IUBMB Life 59: 346–354
4. 4. Jagoueix S, Bove J-M, Garnier M (1994) Ограниченная флоэмами бактерия болезни позеленения цитрусовых является членом α-подразделения протеобактерий .Международный журнал систематической бактериологии 44: 379–386.
5. 5. Teixeira DD, Saillard C, Eveillard S, Danet JL, da Costa PI (2005) «Candidatus Liberibacter americanus», связанный с цитрусовыми huanglongbing (болезнь озеленения) в штате Сан-Паулу, Бразилия. Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии 55: 1857–1862.
6. 6. Фолимонова С.Ю., Ахор Д.С. (2010) Ранние этапы развития болезни цитрусовых (Хуанлунбинь) на ультраструктурном уровне.Фитопатология 100: 949–958.
7. 7. Cen YJ, Zhang LN, Xia YL, Guo J, Deng XL (2012) Обнаружение «Candidatus Liberibacter Asiaticus» в Cacopsylla (Psylla) Citrisuga (Hemiptera: Psyllidae). Энтомолог Флориды 95: 304–311.
8. 8. Гарнье М., Бове Дж. (1983) Передача организма, связанного с болезнью позеленения цитрусовых, от сладкого апельсина к барвинку через повилику. Фитопатология 73: 1358–1363.
9. 9. Zhang M, Duan Y, Zhou L, Turechek WW, Stover E (2010) Скрининг молекул для контроля цитрусовых huanglongbing с использованием оптимизированной системы регенерации для черенков барвинка, инфицированного ‘Candidatus Liberibacter asiaticus’ ( Catharanthus roseus ).Фитопатология 100: 239–245.
10. 10. Garnier M, Gao SJ, He Y, Villechanoux S, Gandar J, and Bové JM (1991) Исследование зеленеющих организмов (GO) с моноклональными антителами: серологическая идентификация, морфологические серотипы и очистка GO. Proc. Одиннадцатая конф. Int. Орган. Цитрусовые вирусологи. Р. Х. Брлански, Р. Ф. Ли и Л. В. Тиммер, ред. Международная организация вирусологов цитрусовых, Калифорнийский университет, Риверсайд: 428–435.
11. 11. Purcell A, Nault LR (1991) Взаимодействия между растительными патогенными прокариотами, растениями и насекомыми-переносчиками.В: П. Барбоза, В. А. Крищик и К. Дж. Джонс (редакторы), Микробное посредничество при взаимодействии растений и травоядных, Wiley, New York: 383–405.
12. 12. Холл Д.Г., Ричардсон М.Л., Аммар Э.Д., Халберт С.Е. (2013) Азиатский цитрусовый листоблошка, Diaphorina citri, переносчик цитрусовой болезни huanglongbing. Entomologia Experimentalis Et Applicata 146: 207–223.
13. 13. Cruz-Gonzalez AG, Zapata M, Brodbeck BV (2011) Сорняки и насекомые, потенциально являющиеся хозяевами и переносчиками возбудителей болезней, распространены на затененных кофейных плантациях в двух районах Пуэрто-Рико.Фитопатология 101: S276 – S277.
14. 14. Ghosh SK GJ (1978) Louis (1978) Интенсивное размножение прокариот, связанное с болезнью позеленения цитрусовых в клетках флоэмы повилики. Энн Фитопатол 9 (4): 525–530.
15. 15. Gildow FE, Gray SM (1993) Базальная пластинка слюнной железы тли как селективный барьер, связанный с векторной передачей лютеовирусов желтых карликов ячменя. Фитопатология 83: 1293–1302.
16. 16. Hogenhout SA, Ammar ED, Whitfield AE, Redinbaugh MG (2008) Взаимодействие переносчиков насекомых с постоянно передаваемыми вирусами.Ежегодный обзор фитопатологии 46: 327–359.
17. 17. Аммар Э.Д., Цай К.В., Уитфилд А.Е., Рединбо М.Г., Хогенхаут С.А. (2009) Клеточные и молекулярные аспекты взаимодействий рабдовирусов с насекомыми и растениями-хозяевами. Ежегодный обзор энтомологии 54: 447–468.
18. 18. Бове JM, Renaudin J, Saillard C, Foissac X, Garnier M (2003) Spiroplasma citri, патогенный молликут растения: отношения с двумя его хозяевами, растением и вектором цикадки. Ежегодный обзор фитопатологии 41: 483–500.
19. 19. Weintraub PG, Beanland L (2006) Насекомые-переносчики фитоплазм. Ежегодный обзор энтомологии 51: 91–111.
20. 20. Hoffman MT, Duan Y, Zhou L, Stocks I, Hall D (2011). Является ли полосатый мучнистый червец, Ferrisia virgata , переносчиком бактерии huanglongbing «Candidatus Liberibacter asiaticus»? Фитопатология 101: S73 – S73.
21. 21. Каталоги статей (1997) CAB International: Сборник материалов по защите растений. Модуль 1.Журнал прикладной энтомологии 121: 559–559.
22. 22. Гуллан П.Дж., Штеффан С.А. (2003) Новый вид вредителей из рода мучнистых червецов Ferrisia fullaway (Hemiptera: Pseudococcidae) из США. Анналы Энтомологического общества Америки 96: 723–737.
23. 23. Bonani JP, Fereres A, Garzo E, Miranda MP, Appezzato-Da-Gloria B (2010) Характеристика графиков электрического проникновения азиатской цитрусовой листоблошки Diaphorina citri в сеянцах сладкого апельсина.Entomologia Experimentalis Et Applicata 134: 35–49.
24. 24. Zhou L, Powell C, Li W, Duan Y (2013) Опосредованная профагом динамика популяций « Candidatus Liberibacter asiaticus», деструктивных бактериальных патогенов в цитрусовых huanglongbing. PLoS ONE8 (12): e82248
25. 25. Скелли Л.Х., Хой М.А. (2004) Метод синхронного выращивания азиатских цитрусовых псиллид и их паразитоидов в карантине. Биологический контроль 29: 14–23.
26. 26. Pitino M, Hogenhout SA (2013) Эффекторы протеина тли способствуют колонизации тлей специфическим для каждого вида растений способом.Молекулярные взаимодействия растений и микробов 26: 130–139.
27. 27. Ли В., Хартунг Дж., Леви Л. (2006) Количественная ПЦР в реальном времени для обнаружения и идентификации видов Candidatus Liberibacter, связанных с цитрусовыми huanglongbing. Журнал микробиологических методов 66: 104–115.
28. 28. Hall DGSR, Carpenter JE, Shapiro JP (2010) Прогресс в направлении искусственной диеты для взрослых азиатских цитрусовых псиллид. Ann Entomol Soc Amer 103: 611–617.
29. 29. Morgan JK, Zhou L, Li W, Shatters RG, Keremane M (2012) Улучшенное ПЦР-обнаружение в реальном времени «Candidatus Liberibacter asiaticus» из цитрусовых и псиллид путем нацеливания на внутригенные тандемные повторы его генов-профагов.Зонды клеток Mol 26: 90–98.
30. 30. Li WB, Li DY, Twieg E, Hartung JS, Levy L (2008) Оптимизированная количественная оценка некультивируемых Candidatus Liberibacter spp. в растениях-хозяевах с помощью ПЦР в реальном времени. Болезни растений 92: 854–861.
31. 31. Аммар Э., Шаттерс Р.Г., Линч С., Холл Д.Г. (2011) Обнаружение и относительный титр ‘Candidatus Liberibacter asiaticus’ в слюнных железах и пищеварительном канале переносчика болезни Citrus Huanglongbing Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae).Анналы Энтомологического общества Америки 104: 526–533.
32. 32. ED A (1994) Распространение вирусов растений и животных насекомыми: факторы, влияющие на специфичность и компетентность переносчиков. Adv Dis Vector Res 10: 289–332.
33. 33. Morgan JK, Zhou L, Li W, Shatters RG, Keremane M (2012) Улучшенное ПЦР-обнаружение в реальном времени « Candidatus Liberibacter asiaticus» из цитрусовых и псиллид путем нацеливания на внутригенные тандемные повторы его генов-профагов.Молекулярные и клеточные зонды 26: 90–98.
34. 34. Tyler HL, Roesch LF, Gowda S, Dawson WO, Triplett EW (2009) Подтверждение последовательности «Candidatus Liberibacter asiaticus» и оценка микробного разнообразия во флоэме цитрусовых, инфицированных Huanglongbing, с использованием метагеномного подхода. Взаимодействие микробов растений Mol 22: 1624–1634.
35. 35. Capoor SP RD, Viswanath SM (1974) Болезнь озеленения цитрусовых в Deccan Trap Country и ее связь с переносчиком Diaphorina citri Kuwayama.В материалах 6-й конференции Международной организации вирусологов цитрусовых: 43–49.
36. 36. Gottwald TR (2010) Текущее эпидемиологическое понимание цитрусовых huanglongbing. Ежегодный обзор фитопатологии 48: 119–139.
37. 37. Pitino M, Coleman AD, Maffei ME, Ridout CJ, Hogenhout SA (2011) Подавление генов тли путем кормления дцРНК из растений. Plos One 6.
38. 38. Пельц-Стелински К.С., Брлански Р.Х., Эберт Т.А., Роджерс М.Э. (2010) Параметры передачи Candidatus liberibacter asiaticus азиатскими цитрусовыми псиллидами (Hemiptera: Psyllidae).J Econ Entomol 103: 1531–1541.
39. 39. Fletcher J, Wayadande A, Melcher U, Ye F (1998) Интерфейс вектора фитопатогенного молликута и насекомого: более пристальный взгляд. Фитопатология 88: 1351–1358.
40. 40. Иноуэ Х, Охниши Дж., Ито Т., Томимура К., Мията С. (2009) Повышенное распространение и эффективная передача « Candidatus Liberibacter asiaticus» взрослыми особями Diaphorina citri после кормления на стадии нимфы. Анналы прикладной биологии 155: 29–36.
41. 41. Zhou L, Powell CA, Hoffman MT, Li W, Fan G (2011) Разнообразие и пластичность внутриклеточного патогена растений и симбионта насекомых « Candidatus Liberibacter asiaticus», выявленные гипервариабельными генами профага с внутригенными тандемными повторами. Прикладная микробиология окружающей среды 77: 6663–6673.

Как избавиться от мучнистых червецов на комнатных растениях

Чтобы понять, как эффективно избавиться от мучнистых червецов, вы должны знать, что они представляют собой в первую очередь.Мучнистые червецы — насекомые с мягким телом, сосущие соки. Эти вредители питаются комнатными растениями, особенно тропическими видами с мягким стеблем.

Мучнистые червецы похожи на щитовок, у которых вместо мягкого тела твердый панцирь. Вы можете распознать заражение мучнистым червецом, если обнаружите на комнатных растениях пушистые, белые, ватные вещества. Чешуйчатые насекомые будут выглядеть на ваших растениях как моллюски.

Эти два вредителя также используют схожие методы лечения для спасения ваших комнатных растений.Вот пять лучших способов избавиться от мучнистого червеца.