Комплект слив №2 (слива русская) — Весна — Слива — Плодовые
АГРОТЕХНИКА СЛИВЫ
Сроки посадки. Лучшее время для посадки сливы — конец апреля-начало мая. Осенняя посадка на большей части территории России сопряжена с риском подмерзания саженцев в зимний период. Однако саженцы с закрытой корневой системой хорошо приживаются и осенью (но сажать их надо не позднее 15—20 сентября).
Место для посадки. Растения сливы не переносят переувлажнения почвы. Из-за близкого расположения грунтовых вод корням не хватает кислорода. Это приводит к ослаблению роста, невызреванию однолетних побегов, подмерзанию деревьев зимой. Глубина залегания грунтовых вод должна быть не менее 1,5—2 м от поверхности земли.
Слива хорошо растёт почти на всех типах почв: дерново-подзолистых, серых лесных, чернозёмных. Однако получение обильных урожаев возможно только на плодородных и хорошо обеспеченных влагой. Лучшие условия для роста сливы складываются на нейтральных и слабо щелочных почвах с рН 7,0—7,5. На большей части территории страны преобладают кислые почвы (рН менее 5,5), поэтому перед посадкой на них необходимо провести раскисление доломитовой мукой или мелом (из расчёта 2 кг на 1 кв.м).
Подготовка к посадке. Посадочные ямы готовят заранее: при осенней посадке за 4—6 недель; при весенней — с осени (в октябре) или весной (как только оттает почва). Когда саженцев много, их размещают рядами с расстоянием между растениями в ряду от 2,5—3-х (для слаборослых сортов) до 3—4-х м (для сильнорослых) и с междурядьями 4—5 м.
Посадочные ямы выкапывают диаметром 60—80, глубиной 50—60 см. Выкапывая яму, почву из верхнего плодородного слоя складывают в одну сторону, а из нижнего малоплодородного — в другую. Затем готовят посадочный грунт, который составляют в равных пропорциях из верхнего плодородного слоя, компоста (или перепревшего навоза) и речного песка. В него добавляют 6 спичечных коробков двойного суперфосфата, 4 коробка сернокислого калия и литровую банку древесной золы. Грунт хорошо перемешивают и заполняют им яму на 2/3.
Посадка. По центру ям забиваются посадочные колья, которые должны быть прямыми, очищенными от коры, длиной 150—160 см. Питательную смесь в яме перед посадкой нужно взрыхлить и в виде холмика подсыпать к колу. Посадку удобнее проводить вдвоём: один устанавливает саженец с северной стороны кола, расправляет корни, а другой засыпает их плодородной почвой. Для лучшего заполнения землёй промежутков между корнями, саженец при засыпке слегка встряхивают, а почву осторожно утаптывают. После посадки корневая шейка должна быть на 3—5 см выше поверхности почвы. После завершения посадки по границе приствольного круга насыпают земляной валик. Затем молодое деревце хорошо поливают (2 ведра воды под одно растение). Улучшению приживаемости и дальнейшему росту саженца способствует мульчирование приствольного круга торфяной крошкой, перегноем, перепревшим навозом или опилками в радиусе 0,5 м слоем 8—10 см.
Саженец подвязывают к посадочному колу в двух местах, используя для этого шпагат или тесьму (подвязка проводится восьмёркой).
Обрезка. Высаженные саженцы до начала распускания почек необходимо обрезать. Однолетку, не имеющую кроны, обрезают на высоте 70—80 см от поверхности почвы. Если система формирования дерева пока не выбрана, у двухлетнего саженца ветви в средней части кроны обрезают на 1/3 длины, нижерасположенные — меньше, вышерасположенные — больше. После обрезки все ветви должны быть на одном уровне, а центральный проводник выше их на 20 см.
В последующие годы проводят формирование кроны. В первую очередь удаляют все ветви, расположенные под углом меньше 35 градусов к стволу, а также — растущие внутрь кроны. Кроме того, вырезают перекрещивающиеся и слабые ветви. По желанию регулируют и высоту дерева, обрезая центральный проводник или переводя его на сильную боковую ветвь.
Для сливы самая удобная — разреженно-ярусная формировка, когда в первом ярусе оставляют проводник и три скелетные ветви на расстоянии 20—25 см друг от друга. Во втором ярусе ниже на 50—60 см оставляют четыре ветви.
Удобрения. Под плодоносящее дерево ранней весной или поздней осенью вносят (на 1 кв.м. приствольного круга) органические удобрения: 10 кг перепревшего навоза или компоста. Минеральные азотсодержащие комплексные удобрения, усиливающие рост и облиственность, вносят весной до начала цветения из расчёта 30 г на 1 кв. м приствольного круга. Ещё две подкормки минеральными комплексами, содержащими азот, проводят после окончания цветения и после массового опадения завязей. Осенью сливе очень нужны фосфор и калий.
Растения, хорошо обеспеченные калием, дают здоровые, богатые витаминами и сахарами плоды. У таких растений хорошо вызревают побеги. Они спокойно переносят зимние холода и меньше болеют. При недостатке калия плохо усваиваются азот и фосфор. Очень важен этот элемент во время созревания плодов и в конце вегетации. В этот период под одно дерево нужно вносить (на 1 кв. м) до 50 г сернокислого калия. Чтобы не повредить корневую систему дозу эту вносят в два приёма с интервалом в три недели.
Кроме того, абрикос больше, чем другие плодовые культуры нуждается в фосфоре. Лучше всего подойдёт двойной суперфосфат, который вносят дважды — до цветения и после июньского опадения завязей (из расчёта 30 г на 1 кв.м).
Для устранения избыточной кислотности осенью в саду проводят сплошное раскисление доломитовой мукой.
Подготовка к зиме. В ноябре, как и для всех косточковых культур, проводят обильный влагозарядковый полив. Этот агроприём способствует повышению зимостойкости дерева и обеспечивает его лучшую перезимовку. В первые два года после посадки перед наступлением устойчивых холодов приствольные круги молодых слив мульчируют опавшими листьями (слой 15 см), а сверху в один слой укладывают еловый лапник. Это поможет уберечь корневую систему от вымерзания в период «чёрной» бесснежной зимы.
В ноябре обязательно нужно побелить стволы и нижние скелетные ветви, чтобы весной избежать солнечных ожогов и морозобоин. К тому же медный купорос, содержащийся в побелке, будет защищать кору от вредителей и возбудителей грибных болезней.
Особенности осенней посадки саженцев плодовых деревьев
Если вы получили свои саженцы поздней осенью или даже после выпадения снега, то рекомендуем Вам, не спешить с высадкой на постоянное место, а сохранить их до весны следующими методами:
А. Прикоп в почву.
Место для прикопки саженцев выбирают самое высокое, где менее всего возможен застой воды. Выкапывают канавку глубиной 50 см в направлении с запада на восток. Южную сторону ее делают наклонной, северную – вертикальной.
Саженцы раскладывают в канавке по одному (ни в коем случае не пучком), в наклонном положении (под углом 45 градусов), вершиной на юг. Корни и половину штамба засыпают рыхлой почвой и хорошо поливают, чтобы увлажненная земля проникла во все пустоты между корнями; после этого снова подсыпают почву.
Чтобы корни у прикопанных растений не подмерзли, место их расположения засыпают торфом, перегноем или плодородной почвой. Для защиты от мышей между саженцами и сверху кладут ветки ели или можжевельника.
Б. Хранение в снежном бурте.
Для этого саженцы складывают в пучок таким образом, чтобы корневые шейки были на одном уровне. Связывают сверху донизу, бережно прижимая ветки. Корни обкладывают со всех сторон влажным субстратом — торфом, опилками, еще лучше мхом — и оборачивают мешковиной. Затем весь пучок заворачивают в пленку, обвязывают и закапывают глубоко в снег, подыскав защищенное от солнца место. Чтобы снежное покрывало подольше не таяло, сверху насыпают опилки или торф.
Советуем внимательно отнестись и к зимовке этикетки с названием сорта. Перед прикопкой их заворачивают в фольгу или полиэтиленовую пленку и привязывают к саженцам шпагатом, не перегнивающим в почве.
Слива русская (алыча) Царская — Питомник растений Сибирский сад
(описание сорта, фото)
Средний срок, плоды 18–25 г, ярко-жёлтые, со слабым восковым налётом, сочные с отличным кисло-сладким вкусом
Описание сорта:
Средний срок созревания.
Плоды среднего размера, весом 18–25 г. Кожица ярко-жёлтая, плотная, со слабым восковым налётом. Мякоть жёлтая, нежная и сочная с отличным десертным кисло-сладким вкусом. Плоды имеют долгий срок хранения и великолепно переносят транспортировку.
Сорт ценится за скороплодность и высокие урожаи. Плодоношение начинается со второго года после посадки. Алыча царская отличается устойчивостью к сильным морозам и ко многим распространённым болезням и вредителям. Самобесплодный: для хорошего урожая нужны по меньшей мере 2 дерева сливы русской разных сортов. Но в какой-то степени опылителем может служить и любой сорт обычной сливы (или алычи).
Как купить саженцы сливы русской (алычи) Царская
в питомнике «Сибирский сад»
В нашем питомнике купить саженцы сливы русской (алычи) Царская можно на открытых торговых площадках и в магазинах питомника. Адреса, график работы, телефоны торговых точек смотрите в разделе «Контакты» (в верхнем меню).
Питомник «Сибирский сад» осуществляет доставку саженцев по России. Заказать растения вы можете в нашем интернет магазине по адресу: zakaz.sibsad-pitomnik.ru или перейдите по ссылке в верхнем меню. Информацию об условиях оформления заказов, их оплаты и доставки саженцев по России вы найдете также в интернет магазине в соответствующих разделах.
Питомник Сибирский сад реализует саженцы оптом и приглашает к сотрудничеству организации, занимающиеся продажей саженцев, ландшафтным дизайном, а также организаторов совместных покупок. С условиями сотрудничества можно ознакомиться в разделе «Оптовикам» (в верхнем меню).
Слива русская (Алыча) «Красномясая Стойкая»
Prunus cerasifera
Форма и крона
Крона шаровидная, средней густоты.
Размер взрослого растения
Дерево средне-рослое, до 2,5 м.
Декоративность
Декоративна во время цветения и плодоношения.
Цветение и плоды
Плоды средней массой до 25 г.
Зимостойкость
Зимостойкость высокая.
Размеры и цена
Высота
Упаковка корневой
системы
Цена
Наличие
Кол-во
140-150 см
5-10 л
890 ₽ 890 ₽Под заказ
В корзину
150-160 см
7 л
980 ₽ 980 ₽Под заказ
В корзину
Остатки актуальны на: 3 Сентября 2021, 16:47
Условия выращивания
Для размещения саженца необходимо выбрать на участке хорошо освещенное, солнечное, защищенное от заморозков и холодных ветров место. Лучшим временем для посадки является весна после схода снега и достаточного прогревания земли, но до момента набухания почек растения, что в средней полосе соответствует примерно первой половине апреля. Саженцы с защищенной корневой системой в контейнерах можно посадить в грунт и позже.Осенью высаживать алычу не желательно, так как она может не успеть подготовиться к морозам. При приобретении саженца в осеннее время его можно просто прикопать на возвышенном месте до следующего сезона. Алыча не очень требовательна к почвам, но, конечно, больше предпочитает хорошо дренированные, плодородные, богатые гумусом и органикой. Нежелательно высаживать деревце в слишком кислую или излишне щелочную землю. Перед посадкой такой грунт лучше сначала облагородить.
Особенности агротехники
Чтобы алыча прижилась на постоянном месте, хорошо росла и плодоносила, за ней необходимо правильно ухаживать. При поливах растения следует соблюдать меру. Алыча плохо переносит избыток влаги в почве. Но корневая система растения располагается поверхностно, поэтому полив все-таки необходим. Его проводят несколько раз за вегетационный период, примерно по 5-6 ведер воды на взрослое дерево. Важной частью ухода является обрезка кроны и лишних ветвей. Алычу можно выращивать в виде дерева или куста. Растение отличается быстрым ростом побегов. При сильном вытягивании молодые, еще зеленые побеги прищипывают. При формировании кроны дерево не обрезается слишком сильно. Вырезаются лишь поврежденные, больные, излишне вытянувшиеся и волчкообразные ветви. Корневую поросль обычно удаляют. Сильное же разрежение кроны может приводить как к солнечным ожогам, так и к вымерзанию растения в климатической зоне с суровыми морозами.На зиму приствольную зону обычно мульчируют, можно укрывать растение на холодный период, чтобы избежать
Использование
Дерево с компактной кроной. Плоды красные. Мякоть тёмно-красная, кисло-сладкая, хорошего вкуса. Кожица со слабой горчинкой. Созревают плоды 16-20 августа. Ароматную ягоду можно употреблять в свежем виде и использовать для приготовления соков и консерваций. Сорт самобесплодный. Лучшие опылители: Скороплодная, сорта Сливы русской. Малозимостойкий сорт. Поражается камедетечением.
Мичуринский государственный аграрный университет | Сафаров Рустам Мевлудович В условиях Краснодарского края изучены сортоподвойные комбинации сливы русской в периоде роста и плодоношения с целью выделения лучших из них для использования в интенсивных технологиях возделывания. Выделены наиболее слаборослые, продуктивные, скороплодные сортоподвойные комбинации. Они представляют наибольшую ценность для использования в технологиях интенсивного типа при производстве плодов сливы русской Использование слаборослого клонового подвоя ВВА-1 в интенсивных технологиях производства плодов сливы русскойВведениеСреди новых для России плодовых растений видное место занимает слива русская (Prunus rossica Erem.). Биологические особенности сливы русской – адаптивность, продуктивность, раннее созревание плодов, раннее и обильное плодоношение позволяют применять в насаждениях этой культуры интенсивные технологии, что еще больше способствует проявлению этих качеств и получению высокого экономического эффекта от её возделывания. В последние годы выделены новые ценные сорта сливы русской, а также клоновые подвои различной силы роста, которые могут с успехом быть использованы для создания высокопродуктивных насаждений этой культуры. Плоды лучших сортов сливы русской представляют ценность для употребления в свежем виде и приготовлении высококачественных консервов. Появилась возможность выделить лучшие из них и рекомендовать наиболее перспективные сорто-подвойные комбинации для использования их в технологиях интенсивного типа при возделывании сливы русской. С этой целью на Крымской ОСС СКЗНИИСиВ проводятся исследования, первые результаты которых приведены в данной работе. Объекты и методы исследованийЭкспериментальная работа проведена на 3 квартале плодовых насаждений Крымской ОСС. Участок расположен на пологом склоне северной экспозиции. Почва серая лесная, тяжелая, типичная для Предгорной зоны, Западной подзоны Краснодарского края. Участок неорошаемый. Опыты заложены весной 2005 г. Расстояние при посадке 5 х 1,5 м. Конструкция насаждений – «плодовая стена». Изучали сорто-подвойных комбинации с участием слаборослого клонового подвоя ВВА-1. Для испытания были взяты сорта сливы русской Июльская роза, Кубанская комета, Путешественница, Шатер, Гек, Комета поздняя, Евгения, Глобус, Обильная, Найдена, Колонновидная. Все изучавшиеся сорта и подвои включены в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к размножению в Российской федерации. В каждом варианте было высажено по 10 растений, по схеме «дереводелянка». Наблюдения за ростом деревьев, прохождением фенофаз, учет урожая и качества плодов проводили в соответствии с общепринятыми методиками [1]. Обсуждение результатов2005-2010 гг., когда проводились наблюдения за опытными растениями, приходятся на период роста и плодоношения (по П.Г. Шитту). Погодные условия этих лет, характеризуются как чрезвычайно неблагоприятные для роста и плодоношения деревьев сливы русской, – засухой 2007 г. и засушливым периодом в другие годы. Морозами в зимы 2005-2006 гг., 2009-2010 гг., заморозками в период «цветения» в 2009 г. Все это привело к ослаблению и подмерзанию деревьев, полной гибели урожая в 2009 г. и значительной (до полной) у некоторых сортов в 2010 г. В итоге у сливы русской за указанный период получены лишь два урожая, а в 2009 г. урожай погиб полностью. Тем не менее, полученные в результате наблюдений сведения о характере роста, плодоношения и других показателях биологии позволяют сделать предварительные выводы об особенностях биологии сорто-подвойных комбинаций у сливы русской в первые годы их произрастания в саду. Важнейшее значение для продуктивности насаждений сливы русской имеет быстрое нарастание биомассы деревьев, свойственное этой культуре. Это позволяет уже на 3-4 год деревьям сортов сливы русской закладывать достаточно большое число цветковых почек, что предопределяет их ранее вступление в плодоношение и формирование достаточно большого урожая плодов, как в первые, так и в последующие годы плодоношения. Промышленный сорт алычи Кубанская кометаПо характеру силы и другим особенностям роста деревья различных сорто-подвойных комбинаций в значительной мере различаются между собой. Среди различных сортов сливы русской привитых на слаборослом подвое ВВА-1 имеются различия в росте. Различаются между собой три группы сортов по этому показателю: 1 группа – наиболее сильнорослые сорто-подвойные комбинации сортов: Июльская роза, Гек, Евгения, Обильная; 2 группа – среднерослые сорто-подвойные комбинации с участием сортов: Кубанская комета, Шатер, Найдена, Путешественница, Глобус, Комета поздняя; 3 группа – сорто-подвойные комбинации, у деревьев которых кроны малообъемные: Колонновидная [3]. Для формирования полноценного садового агроценоза, важное значение имеет длительность периода освоения отводимой дереву площади питания (табл. 1). Таблица 1 Биометрические показатели роста деревьев сортов сливы рус- ской на клоновом подвое ВВА-1, 2010 г., посадка 2005 г., Крымская ОСС
Чем он короче, тем более скороплодна сорто-подвойная комбинация и быстрее начнется период полного плодоношения. Поскольку технологическая полоса, свободная для прохождения техники, в междурядьях считается не менее 2 м, то ширина кроны в сторону междурядий в наших опытных насаждениях допускается до 3 м, что близко к оптимальным размерам для развития деревьев среднерослых сорто-подвойных комбинаций, но несколько велика для деревьев на слаборослых подвоях. Отведенную им площадь проекции кроны 3 х 1,5 м они освоили к 4 годам роста.. Наиболее быстро из всех изучавших сортов на клоновом подвое ВВА-1 – к четырем годам освоили отведенную им площадь: Евгения, Гек, Июльская роза, Обильная. У этих же сортов на подвое ВВА-1 наиболее быстро увеличивался и объем кроны. Так же за четыре года освоили отведенную им площадь и корнесобственные деревья сорта Кубанская комета. Так же наблюдалась наиболее быстрое увеличение объема кроны у корнесобственных деревьев сортов Глобус и Кубанская комета. Деревья сортов сливы русской на слаборослом подвое ВВА-1 изначально были в 1,5-2 раза меньших размеров, чем корнесобственные. В ряду кроны деревьев большинства сортов сливы русской стали смыкаться уже к концу 2-3 вегетационных периодов. Больше всего – на 3 год смыкание деревьев в ряду было отмечено у сортов: Путешественница, Найдена, Гек, Евгения, Обильная. За 5 лет не освоили отведенную деревьям площадь привитые на ВВА-1 сорта Колонновидная и Комета поздняя. Это позволяет считать для последних возможным большее, чем 1,5 м между деревьями загущение в рядах тогда, как для остальных сортов сливы русской, алычи это расстояние близко к оптимальному. Наиболее высокорослые деревья на подвое ВВА-1 в возрасте 5 лет были деревья сортов Комета поздняя, Колонновидная, Гек, Глобус и Обильная – свыше 2,5 м. Видимо, в этом возрасте уже необходимо проведение для деревьев этих сорто-подвойных комбинаций рамочной обрезки с ограничением роста их в высоту. В целом можно считать, что при формировке насаждений сливы русской по типу «плодовая стена» с использованием слаборослого подвоя ВВА-1 уже на 3-4 годы, а на среднерослом подвое к 5 году достаточно оформлены и готовы к товарному плодоношению (рис. 1,2.). Рис.1 Кубанская комета / корнесобственнаяПри подборе сортов для высокоинтенсивных насаждений одним из лимитирующих факторов является наличие взаимоопыляемых сортов. Немаловажное значение имеет и сроки наступления созревания плодов для планирования поступления продукции. Определенное значение для оценки целесообразности использования разных сорто-подвойных комбинаций имеет различия между ними в прохождении отдельных фенофаз [2]. Рис. 2 Алыча на подвое ВВА-1В частности, прививка на клоновые подвои нередко несколько ускоряет прохождение фенофаз у сортов сливы русской, особенно при использовании клонового подвоя ВВА-1. Продолженные наблюдения за прохождением фенофаз у сортоподвойных комбинаций сливы русской показали, что деревья на клоновом подвое ВВА-1 несколько ускоряют сроки начала роста и цветения по сравнению с корнесобственными деревьями (табл. 2). Таблица 2 Особенности цветения у различных сортов сливы русской (подвой ВВА-1, схема посадки 5 х 1,5 м, сад посадки 2005 г.)
По продолжительности цветения все сорто-подвойные комбинации приближались или были равны контролю. Для сливы русской весьма значимо влияние подвоя на созревания плодов у сорта – привоя. Проведенные наблюдения позволили установить, что клоновые подвои существенно влияют на эту важнейшую фенофазу в сторону сдвига в сторону более раннего прохождения. Практически все клоновые подвои вызвали более раннее созревание у всех изучавшихся сортов. Урожайность – наиболее важный показатель продуктивности плодовой культуры, которой определяется, биологическими особенностями сорта, а также влиянием на него погодных условий и стресс-факторов. Важное место в этом ряду занимает правильный подбор сорто-подвойных комбинаций, исходя из месторасположения сада и схемы посадки, система содержания почвы, наличие системы минерального питания и защиты растения от основных болезней и вредителей, оптимизация которых в период формирования урожая является основным условием для полной реализации продуктивного потенциала растения сливы русской. Промышленный сорт алычи ГекНа слаборослом клоновом подвое ВВА-1 уже на 3-й год роста высокий урожай получен на деревьях сортов Шатер, Путешественница и Глобус. Сорта Кубанская комета, Комета поздняя, Евгения, Обильная и алыча Пурпуровая в трехлетнем возрасте деревьев плодоносили хуже других. Обращает на себя внимание тот факт, что первые три сорта близкие родственники. Это говорит о том, что меньшая скороплодность этих сортов по сравнению с сортами Шатер, Путешественница и Глобус имеет одну генетическую основу. В пятилетнем возрасте своей выдающейся продуктивностью выделились деревья сорто-подвойной комбинации Путешественница / ВВА-1. Путешественница меньше других сортов сливы русской пострадала от мороза -24°С в конце января после оттепели и лучше других сортов реализовал свою высокую скороплодность (табл. 3). Таблица 3 Продуктивность сортов сливы русской и алычи на клоновом подвое ВВА-1, Крымская ОСС
Несмотря на подмерзание цветковых почек вполне удовлетворительно – лучше других плодоносили привитые на ВВА-1 сорта Шатер, Найдена, Глобус, Колонновидная. Плохо плодоносили на этом подвое сорта Июльская роза, Комета поздняя, Евгения, Обильная, алыча Пурпуровая. По итогам двух лет плодоношения наиболее скороплодными сортами при прививке на ВВА-1 можно считать сорта сливы русской Путешественница, Найдена, Шатер, Глобус. Эти же сорта характеризуются и наиболее высокой удельной продуктивностью в пересчете на 1 м2 проекции кроны, 1 м3 объема кроны и 1 см2 поперечного сечения штамба. Выдающимися показателями удельной продуктивности характеризуется также сорт Колонновидная. Эту его особенность целесообразно реализовать при большем загущении с использованием суперинтенсивных формировок. К числу наиболее продуктивных в первые годы плодоношения можно включить сорто-подвойные комбинации подвоя ВВА-1 с сортами русской сливы Комета поздняя, Обильная. На клоновом подвое ВВА-1 плоды у всех привитых на нем сортах сливы русской были мельче, чем на корнесобственных деревьях. (рис. 3.). Рис.3. Алыча на подвое ВВА-1Это связано было с тем, что при достаточно большой нагрузке плодами деревья, привитые на незасухоустойчивый подвой ВВА-1 страдали сильнее от недостатка влаги, чем на среднерослых, более засухоустойчивых подвоях, развивавших значительно более мощную корневую систему. Это особенно резко проявилось в 2008 г., когда после засушливого 2007 г. и недобора в осадках в начале вегетационного периода 2008 г. ощущался значительный дефицит влаги в почве (таблица. 4). Таблица 4 Масса плодов у сортов сливы русской на клоновом подвое ВВА-1, Крымская ОСС
При сравнительно хорошей влагообеспеченности в мае-июне 2010 г. плоды у сортов русской сливы на слаборослом подвое ВВА-1 были даже крупнее, чем на корнесобственных деревьях. Это подтверждает сделанные в других опытах выводы о том, что при благоприятных условиях возделывания, в частности при орошении у слаборослого клонового подвоя ВВА-1 плоды сортов косточковых культур не мельчают. У такой скороплодной культуры, как слива русская важнейшее значение приобретает показатель возраста, когда деревья вступают в пору плодоношения. Хотя у отдельных растений сливы русской единичные плоды можно было наблюдать уже на второй год роста дерева, товарное плодоношение деревьев у большинства сорто-подвойных комбинаций на ВВА-1 наблюдалось на третий год роста деревьев в саду. Промышленный сорт алычи ЧукВыводыВ результате проведенных наблюдений за деревьями сливы русской с использованием различных сорто-подвойных комбинаций в молодом саду представляется возможным сделать предварительные выводы и рекомендации для их использования в производственных условиях.
Литература
Члены АППЯПМ Снаговский Николай Филиппович,генеральный директор ЗАО «Вейделевское» (Белгородская область)Основные направления работы АППЯПМ
| |||||||||
Слива русская (алыча) | Кантри Сад
Алыча, или слива русская, — это и плодовое, и декоративное дерево одновременно. Появилась такая возможность комбинации различных качеств благодаря значительной работе селекционеров в части выведения различных сортов и выполнения прививок. Хозяйство «Кантри Сад» имеет собственную коллекцию, состоящую из нескольких видов, а потому предлагает купить саженцы алычи, сливы русской в Москве.
Что важно знать для грамотного выбора саженцев алычи
Как и любые другие саженцы, молодые деревья алычи следует выбирать не только исходя из предпочтений вкусовых или декоративных, но и технических возможностей участка и собственно деревьев. Если говорить об участке, то должно быть обеспечено соответствующее по площади, освещению и составу почв место, а если говорить о саженцах сливы, то их сорт, срок созревания, скороспелость и другие важные для садовода параметры могут выбираться по вкусу.
Но важно помнить и о том, что любое дерево должно обладать определенными качествами, позволяющими не только выживать в данном климатическом поясе, но и приносить урожай. Питомник «Кантри Сад» в этом смысле сделал немало, а потому предлагает купить саженцы алычи (сливы русской), которые обладают морозостойкостью и устойчивостью к различным заболеваниям.
В ассортименте питомника в настоящий момент представлено несколько сортов алычи, которая является результатом скрещивания нескольких растений – собственно алычи, а также уссурийской и китайской сливы. Полученная комбинация демонстрирует все вышеназванные качества, являя владельцам крупные, мелкие и средние по размеру плоды разного цвета и с разными сроками созревания. Интересно, что предлагаемые саженцы с одинаковым успехом могут быть использованы в качестве элемента декора, выгодной плодоносящей культуры, так и в качестве подвоя для выполнения собственных экспериментов с гибридными сортами.
Как работает питомник «Кантри Сад»
Выбрать и заказать саженцы алычи на сайте питомника «Кантри Сад» не представляет сложности, поскольку управление этим процессом интуитивно понятно, а фотографии и описания помогают сделать правильный выбор. В случае затруднений всегда можно получить грамотную консультацию от персонала питомника и оговорить условия доставки саженцев алычи (сливы русской) к месту высадки в Москве и Московской области. Поскольку хозяйство делает все для того, чтобы приобретенные саженцы дали в скором будущем хороший урожай, то владельцам остается проверить состояние ветвей и корневой системы, штамбы и точки роста, а также следовать рекомендуемым условиям ухода за растениями.
Слива русская: описание сорта Алыча гибридная
Ни одна брошюра, содержащая перечень и описание сортов плодовых культур, не ответит вам на вопрос о том, что же такое Слива русская, или Алыча гибридная. Все дело в следующем: культура эта получила свое начало только в конце прошлого столетия, на опытно-селекционной станции в Крыму, где трудились над решением задачи по выведению холодостойких сортов алычи крупноплодной. Около трех десятилетий спустя стало очевидно, что команда станции во главе с профессором Ереминым не просто справилась с проблемой, а создала самостоятельный вид, оригинальную плодовую культуру.
Немного о биологической стороне
Над усовершенствованием новинки работу продолжили знатоки селекции как нашей страны, так и стран ближнего зарубежья. Уникальность гибридной алычи признали на международном уровне, а название «Слива русская» закрепили официально.
Удивительное растение суммировало в своей генетической структуре характерные черты североамериканской и китайско-уссурийской слив, а также персика, абрикоса и вишни песчаной. В результате такой мозаики плодовая культура опередила по морозостойкости своих «родителей».
Слива русская опережает алычу по количеству вызреваемых плодов, а сливу – по их качеству, отличается скороплодностью и практически не выпревает, обладает отличной засухоустойчивостью.
Даже при поверхностном анализе фото этой диковинки сразу становятся понятны отличительные черты дерева: оно похоже то на алычу, то на сливу (определяющим фактором здесь является сорт), но лист более плотный и темный, чем у китайской сливы.
Плод крупный (от 30 до 40 грамм). Форма его напоминает шар или овал, отличается разнообразием цвета (от розовой до пестрой), сладким вкусом (слабая кислинка у косточки лишь придает дополнительное очарование) и экзотически благоухает (в аромате присутствуют оттенки запаха черешни и винограда, миндаля и персика). Косточка удаляется без усилий.
Различные сорта гибрида при правильном возделывании настолько зимоустойчивы, что без последствий переносят даже суровые морозы, вплоть до -45°С. Но лучше не рисковать и воспользоваться рекомендациями по укрыванию русской сливы, если она посажена в регионе с регулярным понижением температур до -35 °С.
Весенние заморозки не вызывают повреждений и переносятся гибридом легко, а в период цветения дерево радует хозяина необычайной красотой.
Что же касается непосредственно высадки культуры, то предпочитает она почвы суглинистые и супесчаные, хорошо дренированные. Некомфортно чувствует себя на участках с высокой затененностью и глинистых почвах, с благодарностью отзывается на щедрую освещенность солнцем. Полив должен быть достаточно частым, но без фанатизма – дождитесь, пока хорошо просохнет верхний слой земли, так как избыток воды повредит дереву. В засуху поливаем 1 раз в пять дней.
Еще один плюс сорта в том, что выращивание ее проходит успешно даже у садоводов-новичков. Дерево прощает ошибки по уходу после их устранения, к тому же реже поражается болезнями и вредителями.
В саду лучше иметь несколько сортов (2-3), разнящихся по срокам созревания – это поможет повысить урожай и улучшит перекрестное опыление.
Опылителями могут выступать привычные алыча со сливой.
Слива русская дает возможность полакомиться вкусными плодами, качество которых не уступает южным сортам даже в сибирских суровых условиях. При этом описание биологически активных веществ плода впечатляет: он содержит витамин С, органические кислоты, пектин, каротин, антоциан. В целях профилактики употребляют при гиповитаминозе С и А, применяют при гипертонии и ряде других заболеваний (для улучшения проницаемости сосудов).
Умелые хозяйки заготавливают плоды впрок, варя мармелад, варенье, компоты.
Размножаем, высаживаем и ухаживаем
Лучшее время для появления этой красавицы в саду – весна. Размножается она как окулировкой «глазком», так и порослью. Если русская слива будет расти на территории с суровым климатом, то лучше воспользоваться корнесобственным саженцем.
Яма для деревца должна быть не менее 60 х 70 см, в лунку можно добавить древесной золы (около 100 грамм на 1 саженец). Максимальная густота для слаборослых видов составляет 6х4 м, сильнорослых — 8×6 м.
Посадив приобретенную новинку, обрезаем и хорошо поливаем ее (до 40 литров воды на один саженец).
Крону формируем постепенно, придерживаясь правил по аналогичной процедуре у домашней сливы. Главная особенность – не нужно менять конституцию, присущую данному виду. Обрезая молодые плодоносящие деревья, ветви стараемся подчинять центральному проводнику. После первых легких морозцев лунку засыпаем землей, слоем более 10 сантиметров.
В трех словах о сортах
Приобретая саженцы Сливы русской, не удивляйтесь, если получите предложение купить сорта алычи – именно такое наименование этому чуду селекции присвоено в Госреестрах России и Украины.
Самыми распространенными являются следующие виды:
Кубанская комета. Этот тип гибрида максимально приспособлен к различным условиям выращивания (обладает отличной урожайностью как на даче под Санкт-Петербургом, так и в садах жителей Дальнего Востока). Слаборослое дерево обладает высокой морозоустойчивостью, относительно терпеливо к засухе. Вес плода, созревающего в первой декаде июля, 35-40 грамм.
Комета поздняя. Селекционирован из сеянца предыдущего указанного сорта, созревает позже на декаду. По остальным характеристикам подобен материнскому дереву.
Колонновидная. У этого вида алычи срок цветения более поздний. Отличается оригинальной вытянутой кроной, состоящей из нескольких скелетных ветвей и лидера. Масса темно-красных плодов кисло-сладкого вкуса около 40 грамм.
Найдена. Слаборослый, урожайный гибрид (на одном дереве вызревает до 50 килограмм ярких кисло-сладких плодов, достигающих технической спелости к середине августа), превосходящий по зимостойкости Кубанскую комету.
Обильная. Крупноплодные (до 45 грамм) плоды светло-желтого цвета можно собирать уже в июле. Косточка легко извлекается.
Подарок Санкт-Петербургу. Почти совершенно нечувствителен к морозам. Еще одна специфичность вида – устойчивость к различным вредителям и болезням. Сбор удлиненных, чудно пахнущих плодов проводят в конце августа. Минус только один: сорту необходимы опылители, так как он самобесплоден.
Путешественница. Парадоксальный сорт: поздно цветет и рано созревает. Создан для садоводов, проживающих в средней полосе России. Масса плода – 25 грамм.
Тимирязевская. Среднерослый, самоплодный вид с ранним сроком сбора плодов среднего веса.
Более подробно о сливе русской можно узнать от опытного селекционера:
Алыча (слива русская) Сонейка — описание сорта, фото, характеристики
Слива сорта “Сонейка” (или “Солнышко”) – это один из белорусских гибридов, выведенный на основе алычи “Мара”, переопыленной пыльцой диплоидных сортов сливы. Выведением занимался Белорусский НИИ плодоводства в лице доктора сельхознаук В.Матвеева. “Сонейка” очень молода – в Госреестре она значится с 2009 года, распространена в Беларуси и в России (по центральным и чуть более северным широтам).
Описание плодов сливы сорта “Сонейка”
Алыча “Сонейка” переняла от Мары цвет плодов и характерную плотную кожицу – фрукты желтого цвета, обретают небольшой румянец при созревании, мякоть ближе к янтарным оттенкам. Форму имеют округлую, достигают средне-крупных и крупных размеров – их масса колеблются в диапазоне 40-50 грамм. Сочная, сладкая мякоть интересно сочетается с кисловатой кожурой. Косточка небольшая, практически не отделима от мякоти – типичная проблема для алычи.
Область применения сливы максимально разнообразна. Плоды очень хороши в свежем виде, их консервируют, делают из них варенья, джемы и компоты, отлично подходит для начинки в выпечке. К тому же, Сонейка нашла своё место в косметологии – её используют при создании кремов, бальзамов, шампуней и прочего. У плодов высокий промышленный потенциал, они хорошо выдерживают длительные перевозки на большие расстояния, способны долго лежать и не портиться.
Крона и листья
Деревья слаборослые, в высоту не вырастают выше 3 метров. Формируют плоскую округлую крону с средне-низкой густотой покрытия. Ветви имеют свойство опускаться, от чего облиственность может казаться ещё меньше, но сами листья достаточно крупные, овальной формы с заострённым кончиком.
Цветение и опыление
“Сонейка” очень скороплодна, густо покрывается белыми цветами и даёт первые плоды уже на 2-3 год после посадки. Цветёт в мае, плоды созревают к концу августа. Урожайность деревьев высокая – в среднем они приносят по 30-40 кг плодов за сезон. Алыча зреет равномерно, практически одновременно.
Для образования завязи необходимо высаживать рядом деревья-опылители, подходящие по срокам цветения, плюс важно учитывать, что сорт произошёл от опыления пыльцой диплоидных видов слив. Отлично справляются с такой задачей разновидности восточно-европейских слив.
Особенности культуры
Растение отличается устойчивостью к засухе и заморозкам – и то, и другое деревья переносят хорошо, однако плодовые почки могут подмерзать при резких перепадах температур весной. Сорт устойчив к клястероспориозу и большинству плодовых вредителей. При хорошем поливе плоды набирают больше сочности (но важно не затопить алычу).
русских соленых слив {моя любимая закваска на сегодняшний день}
Пока я ждал, когда на фермерском рынке яблоки будут стоить дешевле, чем детеныш панды, я решил попробовать рецепт русских соленых слив, который давно уже думал. Поворотным моментом стало получение целой группы слив, которые были хорошими, но не лучшими. Слишком кислые, слишком твердые, они не были вкусными даже в выпечке и пирогах.
ЧТО ТАКОЕ РОССИЙСКИЕ СОЛОВЫЕ СЛИВЫКак следует из названия, соленые или молочно-ферментированные сливы были частью русской традиции сохранения летнего урожая.Привлечение плодов деревьев было популярной практикой в центральной и южной частях России, где они росли в изобилии.
В исторической и классической литературе немало упоминаний о русских маринованных сливах. Они были любимым гарниром к мясу и дичи. Другое дело — добавить их к раздаче маринованных закусок во время питья водки.
РОССИЙСКИЕ СОЛОВЫЕ СЛИВЫ — ОДНА ИЗ САМЫХ ПРОСТОГО ФЕРМЕНТОВКак бы мне ни нравилась моя ежегодная осенняя традиция рассола яблок (которая может быть довольно сложной), я был поражен простотой процесса и потрясающими результатами, которые я получил от ферментации слив.Я уже нахожусь на своей третьей партии, и я не сталкивался ни с какими моментами типа «если бы я знал это раньше».
Сливы не плавают, как яблоки, поэтому не остается проблем с подрумяниванием неаппетитных сторон, подвергшихся насыщению кислородом. Все остается идеально погруженным, не прилагая к этому усилий.
Сливы, которые не имеют хорошего вкуса в свежем виде, после брожения просто восхитительны. Могу сказать вам с уверенностью — мои дети никогда не съели бы 12 свежих слив за один присест, как это случилось с моей первой партией соленых слив.Вкус и текстура действительно особенные.
Многие рецепты предполагают холодное брожение слив в течение нескольких недель после первоначального брожения при комнатной температуре. Я следую этому совету, но сливы имеют прекрасный вкус еще до того, как они хранятся в холодильнике.
ВАРИАНТЫ РОССИЙСКИХ СОЛОВЫХ СЛИВСуществует довольно много разновидностей русских маринованных слив, плавающих по старой стране. К популярным относятся горчица, мед и ржаная мука из пророщенного солода (солод).Практически во всех рецептах используется ржаная мука.
Прежде чем вы спросите, можете ли вы использовать сыворотку в качестве закваски, которую Салли Фэллон придумала в статусе, эквивалентном Windex у греков (он же «работает для всех и всех») — не беспокойтесь.
Есть причина, по которой традиции сохраняются определенным образом. Если бы добавление молочной закваски к рассольным фруктам было хорошей идеей, каждая бабушка в Сибири использовала бы ее.
КАК ЗАГОТОВИТЬ РОССИЙСКИЕ СОЛОВЫЕ СЛИВЫ
Ингредиенты
10-12 красных слив (или достаточно, чтобы заполнить пол-галлонную банку Мэйсона) твердые, но спелые
Квартал фильтрованной воды (или достаточно, чтобы заполнить полгаллонную банку Мейсон сливами)
Горсть свежей листья мяты
При наличии горсть листьев смородины (см. примечание ниже)
1 чайная ложка соли
1 столовая ложка цельнозерновой ржаной муки
1/4 стакана сырого светлого меда (темный вкус слишком сильный)
1-2 столовые ложки закваски (I используйте закваску на ржаной закваске) или кусок черствого ржаного хлеба
1/2 чайной ложки стручков кардамона (по желанию)
Инструкции
Поместите сливы в пол-галлоновую банку Мейсон, чередуя листья мяты и смородины, если используете.Надежно закрепите их.
Отмерьте необходимое количество воды — наполните сливовую банку водой. Вылейте воду в кастрюлю среднего размера.
Добавьте 1 чайную ложку соли и 1 столовую ложку цельнозерновой ржаной муки. Взбейте, доведите до кипения. Остудить до комнатной температуры.
После охлаждения добавьте 1/4 стакана сырого меда и пару столовых ложек активной закваски. Взбейте. Это ваш рассол .
Залейте сливы рассолом до самого верха.
Плотно накрыть и оставить при комнатной температуре на 5-7 дней.Открывайте банку один раз в день и удаляйте все пенистые остатки, образующиеся сверху.
Перенесите банку в холодильник и дайте закваске созреть за 2-4 недели до еды.
Примечания
Я выращиваю пару кустов смородины только для листьев, они идеально замачиваются в чае и добавляют приятный аромат квасу, чайному грибу или другим продуктам, ферментированным лактозом. Листья черной смородины особенно ароматны.
Русские соленые сливы
Курс: Lacto Fermented
Кухня: РУССКАЯ
Автор: Валерия — Блог Beets ‘n Bones
Ингредиенты
- 10-12 красных слив или достаточно, чтобы заполнить твердую, но спелую банку Мейсон на полгаллона
- Кварта фильтрованной воды или достаточно, чтобы наполнить банку Мейсон на полгаллона сливами в ней
- Горсть свежих листьев мяты
- горсть листьев смородины, если есть (см. Примечание ниже)
- 1 чайная ложка соли
- 1 столовая ложка цельнозерновой ржаной муки
- 1/4 стакана сырого светлого меда (темный вкус слишком сильный)
- 1-2 столовые ложки закваски Я использую закваску на ржаной закваске или кусок черствого ржаного хлеба
- 1/2 чайной ложки стручков кардамона по желанию
Инструкции
Поместите сливы в пол-галлоновую банку Мейсон, чередуя листья мяты и смородины, если используете.Надежно закрепите их.
Отмерьте необходимое количество воды — наполните сливовую банку водой. Вылейте воду в кастрюлю среднего размера.
Добавьте 1 чайную ложку соли и 1 столовую ложку цельнозерновой ржаной муки. Взбейте, доведите до кипения. Остудить до комнатной температуры.
После охлаждения добавьте 1/4 стакана сырого меда и пару столовых ложек активной закваски. Взбейте. Это ваш рассол.
Залейте сливы рассолом до самого верха.
Плотно накрыть и оставить при комнатной температуре на 5-7 дней. Открывайте банку один раз в день и удаляйте все пенистые остатки, образующиеся сверху.
Перенесите банку в холодильник и дайте закваске созреть за 2–4 недели до еды.
Примечания
Я выращиваю пару кустов смородины только ради листьев, они идеально подходят для заваривания чая и добавляют приятный аромат квасу, чайному грибу или другим продуктам, ферментированным на молоке. Листья черной смородины особенно ароматны.
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
Сохранить
СвязанныеСливовый кофейный торт — Ароматная фабрика Ольги
Этот сливово-кофейный торт представляет собой нежный и пушистый бисквит, наполненный сочными нотами и сладкой сливой. Его легко и быстро приготовить, и он станет отличным угощением к чашке кофе.
Сливы прекрасно подходят для выпечки. Сочные сливы добавляют этому сладкому и нежному пирогу нужное количество влаги и терпкости. Взбивание яиц с сахаром придает легкости пирогу, делая его действительно воздушным и воздушным. Сметана — отличное дополнение, придающее торту идеальную консистенцию.
Вы также можете использовать в этом торте много других фруктов и ягод вместо слив. Персики, абрикосы и нектарины — отличный выбор, потому что они очень похожи по размеру и консистенции на сливы.Вы также можете использовать в пироге любые ягоды или их разновидность.
По текстуре этот торт очень похож на яблочную шарлотку, поэтому, если у вас есть яблоки, у меня есть семейный любимый рецепт, который вы также можете попробовать.
Ингредиенты для сливового кофейного торта:
Мне нравится простота ингредиентов для этого торта. Они у меня под рукой почти все время, так что я могу взбить торт в любое время, когда захочу приготовить быстрый десерт, так что у нас неожиданная компания.
Яйца и сахарный песок — Я использую большие яйца во всех своих выпечках. Важно, чтобы яйца были комнатной температуры, иначе они не взбиваются, и пирог будет более плоским.
Сметана — сметана придает тесту терпкость и насыщенную сливочность. Вы также можете использовать простой йогурт вместо сметаны. Для достижения наилучшего результата сметана также должна быть комнатной температуры. Если оно комнатной температуры, оно лучше впитается в тесто.
Цедра лимона — цедра лимона придает пирогу такой восхитительный вкус и аромат. Это действительно поднимает торт на новый уровень.
Универсальная мука и разрыхлитель — При добавлении в тесто для торта муку и разрыхлитель важно просеивать вместе и аккуратно складывать, чтобы яйца, взбитые в тесте, не сдулись в максимально возможной степени. . Так торт останется нежным, воздушным и воздушным.
Подготовка слив к выпечке:
Очень важно использовать в пироге спелые, сладкие и сочные сливы.Если сливы недостаточно спелые и имеют более терпкий вкус, это повлияет на торт. Во время выпечки они не станут слаще, так что имейте это в виду.
Разрезать сливы пополам, удалив косточку, а затем нарезать ломтиками примерно 1/2 дюйма.
Как я уже упоминал, вы также можете использовать персики, абрикосы или нектарины вместо слив, готовя их точно так же, как сливы. Также можно использовать любой сорт или ягоды. Если ягоды маленькие, например малина, ежевика, смородина, крыжовник или черника, добавьте их в тесто для торта.Вы также можете использовать вишню без косточек или разрезать более крупные ягоды, например клубнику, пополам или четверть.
Приготовление торта:
- Разогрейте духовку до 350 градусов. Смажьте маслом форму для выпечки 9 × 13 дюймов. (Если хотите, можете выстелить его пергаментной бумагой, чтобы было легче вынуть пирог из формы для выпечки. Обычно я подаю его прямо с противня, поэтому я не использую пергаментную бумагу.)
- Удалите косточки со слив и нарежьте сливы на кусочки 1/2 дюйма.
- Смешайте яйца в большой миске с помощью ручного миксера или насадки-венчика на стационарном миксере, постепенно вливая сахар. Перемешивайте не менее 5 минут, пока яйца не станут бледно-желтыми и пушистыми.
- Добавьте сметану и цедру лимона, смешав их с жидким тестом и смешайте.
- Используйте мелкое сито, чтобы просеять муку и разрыхлитель над жидким тестом. Очень аккуратно влейте его в яичную смесь, стараясь как можно больше не сдуть яйца.
- Вылить тесто в подготовленную форму для запекания. Сверху выложить подготовленные сливы. Большая часть слив будет покрыта жидким тестом.
- Выпекать в разогретой духовке 40-50 минут.
- Охладите примерно 5-10 минут перед тем, как нарезать торт для подачи. Если вы использовали пергаментную бумагу, переверните кофейный пирог на решетку для охлаждения и снимите пергаментную бумагу.
- Храните торт при комнатной температуре, слегка накрыв чистым кухонным полотенцем, 1-2 дня.Лучше всего подавать в тот же день.
Сливовый кофейный торт
Этот сливово-кофейный торт представляет собой нежный и пушистый бисквит, наполненный сочными и сладкими сливками. Его легко и быстро приготовить, и он станет отличным угощением к чашке кофе.
- Автор: Ароматизатор Ольги
- Время на подготовку: 20 минут
- Время приготовления: 40 минут
- Общее время: 1 час
- Доходность: 8–10 1x
- Категория: Сладости
- 6 средних слив без косточек, нарезать кусочками 1/2 дюйма
- 5 яиц, комнатная температура
- 1 стакан сахарного песка
- 1 стакан сметаны, комнатной температуры
- 1/2 чайной ложки цедры лимона
- 1 1/3 стакана универсальной муки
- 1 чайная ложка разрыхлителя
- Разогрейте духовку до 350 градусов.Используйте сливочное масло или масло, чтобы смазать форму для выпечки размером 9 × 13 дюймов.
- Нарежьте каждую сливу ломтиками толщиной 1/2 дюйма. Отложите в сторону.
- В стоячем миксере с насадкой для венчика или ручным миксером перемешайте яйца, постепенно добавляя сахар, пока они не станут бледными и пушистыми, не менее 5 минут.
- Добавьте сметану и цедру лимона; смешать, чтобы соединиться.
- Просейте муку и разрыхлитель над жидким тестом и осторожно добавьте его в яичную смесь, стараясь не выпустить воздух из яиц как можно сильнее.
- Вылить тесто в подготовленную форму для запекания.
- Сверху выложить подготовленные сливы. Когда вы разложите сливы поверх жидкого теста, некоторые из них погрузятся в жидкое тесто, а некоторые могут остаться ближе к верхней части теста.
- Выпекать в разогретой духовке 40-50 минут, пока пирог полностью не пропекется в центре. Я использую деревянную шпажку, чтобы проверить готовность. Он должен выйти совершенно чистым, на вертеле не должно быть жидкого теста.
- Охладите примерно 5-10 минут перед тем, как нарезать и подавать.
- Хранить торт при комнатной температуре, слегка прикрыв чистым кухонным полотенцем, 1-2 дня.
Банкноты
Если вы хотите вынуть торт из формы для выпечки, выстелите ее пергаментной бумагой перед тем, как вылить тесто в форму для выпечки.
Вместо слив вы также можете использовать нарезанные нектарины или персики, также нарезанные ломтиками толщиной 1/2 дюйма. Также можно использовать ягоды.
Ключевые слова: бисквит со сливами, сливовый торт, сливовый кофейный торт
Это обновленная версия рецепта сливового кофейного торта, которая была первоначально опубликована 20 марта 2013 года.Я обновил картинки и уточнил инструкцию, но рецепт все тот же. Наслаждаться!
Анализ последовательностиизолятов штамма С вируса оспы сливы из России выявил преобладание мутации D96E в универсальных эпитопах и событиях межштаммовой рекомбинации
вирусов. 2018 сен; 10 (9): 450.
Геннадий Осипов
2 Татарский НИИ сельского хозяйства, г. Казань 420059, Россия; ur.liam@egvopiso
2 Татарский НИИ сельского хозяйства, Казань 420059, Россия; ур.liam @ egvopisoПоступило 10.07.2018 г .; Принято 22 августа 2018 г.
Лицензиат MDPI, Базель, Швейцария. Эта статья представляет собой статью в открытом доступе, распространяемую в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution (CC BY) (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/). Эта статья цитировалась другими статьями в PMC. .Abstract
Понимание генетического разнообразия, географического распространения и антигенных свойств Вируса оспы сливы (PPV) является предпосылкой для улучшения борьбы с акулой, наиболее опасным вирусным заболеванием косточковых культур во всем мире.Сорок новых изолятов штамма С PPV были обнаружены у кислой вишни ( Prunus cerasus ) из трех географически удаленных (700–1100 км) регионов европейской части России. Анализ их 3’-концевых геномных последовательностей показал, что девятнадцать изолятов (47,5%) несут мутацию D96E в универсальном эпитопе белка оболочки. Почти все они не могут быть обнаружены с помощью моноклонального антитела 5B в твердофазном иммуноферментном анализе с тройным антителом и вестерн-блоттинге, что потенциально может поставить под угрозу серологическое обнаружение PPV в вишнях.Полноразмерные геномы семи изолятов PPV-C были определены с использованием секвенирования следующего поколения. Используя программу обнаружения рекомбинации (RDP4), событие рекомбинации, охватывающее область от (Cter) P1 до середины гена HcPro , было предсказано во всех доступных полных геномах PPV-C. Изоляты Tat-4, принадлежащие штамму CV, и RU-17sc (PPV-CR) были определены как основные и второстепенные родители, соответственно, что указывает на возможные пути эволюции штаммов, адаптированных к вишне.Вишня пушистая ( P. tomentosa ) впервые была идентифицирована как естественный хозяин PPV-C.
Ключевые слова: Вирус оспы сливы , вишня, штамм C, секвенирование следующего поколения, рекомбинация, передача семян
1. Введение
Вирус оспы сливы (PPV, род Potyvirus , семейство Potyviridae ) является возбудителем акулы, наиболее опасного вирусного заболевания косточковых культур [1]. Он имеет геном одноцепочечной положительной смысловой РНК длиной около 10 т.п.н., кодирующий полипротеин 355 кДа.Короткая перекрывающаяся открытая рамка считывания (ORF), называемая PIPO, также экспрессируется как продукт слияния P3N-PIPO, необходимый для движения от клетки к клетке [2]. PPV передается от растения к растению при вегетативном размножении инфицированного материала и от тлей непостоянным образом. Вирус был обнаружен во всем мире, за исключением Австралии, Новой Зеландии и Южной Африки [3]. Одной из причин глобального распространения, по-видимому, является высокая генетическая изменчивость PPV, обеспечивающая его адаптацию к различным видам косточковых плодов и окружающей среде.На основании различий в полных последовательностях генома и филогенетического анализа на сегодняшний день распознаются десять штаммов PPV (D, M, C, EA, Rec, W, T, An, CR, CV) [2,4,5]. Они могут различаться по антигенным и эпидемиологическим свойствам, географическому распространению, патогенности и предпочтениям хозяина, хотя четкая связь между такими характеристиками и молекулярной принадлежностью не очевидна для каждого штамма [6]. В естественных условиях PPV-C, -CR и -CV были обнаружены только на кислом ( Prunus cerasus ) и сладком ( P.avium ) вишни и считаются адаптированными к вишне сортами.
Штаммы CR и CV пока обнаружены только в России [5,7,8]. PPV-C был выявлен в странах бывшего СССР: Молдове [9,10,11], Беларуси [12] и России [13,14,15,16,17]. Кроме того, сообщалось о вишне и черешне из Италии [18], Румынии [19], Венгрии [20], Хорватии [21] и Германии [22]. В большинстве случаев эти изоляты были обнаружены на отдельных деревьях, и до сих пор не была показана эпидемиологическая значимость PPV-C.Обследования, проведенные в регионах с высокой заболеваемостью PPV-C, могут улучшить понимание эпидемиологии этого штамма.
К сожалению, большинство обнаруженных изолятов PPV-C на сегодняшний день не охарактеризовано. Всего четыре полные последовательности генома природных изолятов из Беларуси (BY101, BY181), России (Volk143) и Германии (GC27) депонированы в GenBank. Полноразмерные геномы еще двух изолятов SoC и SwC были секвенированы после их сохранения в Nicotiana benthamiana [23] и могут содержать мутации, возникшие в результате адаптации к травянистому хозяину.Недостаточное количество доступных последовательностей PPV-C ограничивает возможность анализа их разнообразия, эволюции и генетических факторов, способствующих адаптации к вишне [22].
Черешня и вишня имеют экономическое значение во многих регионах мира и особенно популярны в Европе, на Ближнем Востоке, в странах Средиземноморья и Северной Америке [24]. Инфекция PPV-C может повлиять на урожайность и качество плодов. Преждевременное опадание плодов и апикальный некроз ветвей наблюдались также на естественно инфицированных деревьях черешни [25].Экспериментально PPV-C был передан механическим путем, прививкой или тлей сливе ( P. domestica ), персику ( P. persica ), вишне махалеб ( P. mahaleb ), миробалану ( P. cerasifera ). , абрикос ( P. armeniaca ), вишня пуховая ( P. tomentosa ), P. marianna и некоторые межвидовые гибриды [9,18,25,26], представляющие потенциальную угрозу распространения PPV-C от зараженной вишни до других видов Prunus в окрестностях [27].В связи с этим большой интерес представляет изучение распространенности и естественного диапазона хозяев PPV-C для минимизации его дальнейшего распространения.
Иммуноферментный анализ (ELISA) с использованием PPV-специфического моноклонального антитела 5B [28] считается наиболее надежным методом серологического обнаружения вируса [2]. Антитело 5B распознает универсальный эпитоп 94/96 DRDVDAG 100/102 , который локализован на стыке N-концевого и корового доменов белка оболочки (CP) и, как предполагалось, экспрессируется в любом изоляте PPV [ 29].Однако было показано, что почти все известные изоляты недавно открытого штамма CR несут мутацию D96E в универсальном эпитопе. Они не были обнаружены тройным сэндвичем антител (TAS) -ELISA с использованием антитела 5B [7] или все еще могут распознаваться этим антителом после снижения pH экстракта [8]. Сообщалось также, что два изолята PPV-C несут эту мутацию и не могут быть обнаружены с помощью антитела 5B [14]. Изучение частоты этой мутации среди изолятов PPV-C является важной задачей для обеспечения надежной диагностики изолятов, адаптированных к вишне.
В этой работе мы обнаружили и охарактеризовали сорок новых изолятов PPV-C, собранных с вишни в трех географически удаленных регионах европейской части России, что расширило информацию о распространении и естественном диапазоне хозяев этого штамма. Анализ частичных и полных последовательностей генома позволил выявить широкое распространение мутации D96E среди новых изолятов и выявить новое событие рекомбинации в геномах PPV-C, что поставило вопрос о надежном серологическом обнаружении PPV у вишни и возможных путях эволюции вируса. адаптированные к вишне сорта.
2. Материалы и методы
2.1. Растения вишни и изоляты вирусов
Листья вишни с типичными симптомами акульей болезни (неправильные бледно-зеленые кольца, пятна или арабески) были взяты со взрослых деревьев в действующих и заброшенных коллекциях сортов, а также на опытных участках сортов или гибридов на Павловской научно-исследовательской станции им. Вавилова. Научно-исследовательский институт растениеводства (г. Павловск, Санкт-Петербургская область, Россия), Ботанический сад МГУ им. М.В. Ломоносова (Москва, Россия) и Зональная научная станция Татарского научно-исследовательского института сельского хозяйства (г. Казань, Республика Татарстан, Россия) в ходе опросов, проведенных в 2012–2016 гг.Обследованные насаждения расположены в трех географически удаленных (700–1100 км) регионах европейской части России (Рисунок S1). Изоляты, изученные в данной работе, перечислены в. Московские изоляты Bg6, Bg10, Bg26, Bg60, Bg66 обнаружены на привитых растениях вишни. Все остальные изоляты были собраны с корнесобственных (непривитых) деревьев. Изоляты Ка5, Ка10, Ка11, Ка21, Ка55, Ка56 были взяты из семенных гибридов, полученных путем свободного опыления местных сортов вишни. Изоляты Ka19 и Ka20, а также Ka42 – Ka45 были обнаружены на укорененных черенках двух разных материнских растений.Татарский изолят Ка7 обнаружен на семенном гибриде двух местных сортов. Изоляты Ka1 и Pul были собраны с деревьев дикой вишни, а Ka31, Ka54, Ka57, Ka58 были обнаружены на корневых побегах неизвестного происхождения. Другой изолят Ка15 был получен с вишни пушистой ( P. tomentosa ), проявляющей умеренный хлороз на зрелых листьях. Все изоляты вируса хранили в виде лиофилизированного материала из инфицированных листьев в плотно закрытых флаконах при 4 ° C.
Таблица 1
Новый российский Штамм С вируса оспы сливы , исследованные в данной работе.
| Изолят | Prunus cerasus Сорт / гибрид | Тип посадки | Место отбора проб | Геномная область Секвенирована | Номер доступа GenBank | Полный геном | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh411853», «term_id»: «1464464364», «term_text»: «Mh411853»}} Mh411853 |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Bg10 | Сания | Коллекция сортов | Москва | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446284», «term_id»: «146464378 «,» term_text «:» Mh446284 «}} Mh446284 | |
| Bg26 | Черешневая | Коллекция культур | Москва | Полный геном | {» type «:» entrez-nucleors » text «:» Mh411854 «,» term_id «:» 1464464366 «,» t erm_text «:» Mh411854 «}} Mh411854 | |
| Bg60 | Апухтинская | Коллекция культур | Москва | Покровный белок | {» type «:» entrez-text «nucleotide:», {text «nucleotide», «Mh446285», «term_id»: «1464464380», «term_text»: «Mh446285»}} Mh446285 | |
| Bg66 | Багряная | Коллекция сортов | Moscow gen | Тип «Полный» -nucleotide «,» attrs «: {» text «:» Mh411855 «,» term_id «:» 1464464368 «,» term_text «:» Mh411855 «}} Mh411855 | ||
| Ka1 | Неизвестно | Заброшенная коллекция | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446286», «term_id»: «1464464382», «term_text»: «Mh446286»}} Mh446286 | |
| Ka5 | Гибрид 12a-7-8 | Опытный участок сорта 1 | Татарстан | Покровный белок | {«type»: «entrez-nucl eotide «,» attrs «: {» text «:» Mh446287 «,» term_id «:» 1464464384 «,» term_text «:» Mh446287 «}} Mh446287 | |
| Ka7 | Труженица Татарийская | Слободский тест участок 2Татарстан | Полный геном | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh411857», «term_id»: «1464464372», «term_text»: «Mh411857» }} Mh411857 | ||
| Ka10 | Гибрид 34-86 | Опытный образец сорта 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: » Mh446288 «,» term_id «:» 1464464386 «,» term_text «:» Mh446288 «}} Mh446288 | |
| Ka11 | Гибрид 98-19 | Тестовая площадка сорта 1 | Белок Татарстана | «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» Mh446289 «,» term_id «:» 1464464388 «,» term_text «:» Mh446289 «}} Mh446289|||
| Ka12 | Аморель Теньковская | Cultiva r тестовый участок 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446290», «term_id»: «1464464390», «term_text»: » Mh446290 «}} Mh446290 | |
| Ka13 | Нижнекамская | Опытный участок культуры 1 | Татарстан | Белок оболочки | {» type «:» entrez-nucleotide «{» text «rs1 «, text6291:» «,» term_id «:» 1464464392 «,» term_text «:» Mh446291 «}} Mh446291 | |
| Ka16 | Черешневая | Испытательный участок сорта 1 | Татарстан» | белок «Entrez» -nucleotide «,» attrs «: {» text «:» Mh446292 «,» term_id «:» 1464464394 «,» term_text «:» Mh446292 «}} Mh446292 | ||
| Ka19 | Гибридный тест Cultivar 33-64 | участок 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446293», «term_id»: «1464464396», «term_text»: «Mh446293» }} Mh446293 | |
| Ka20 | Гибрид 33-64 | Тестовая площадка сорта 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446294», «term_id» «:» 1464464398 «,» term_text «:» Mh446294 «}} Mh446294 | |
| Ka21 | Гибрид 80-8 | Испытательный участок сорта 1 | Татарстан | Белок шерсти | » entrez «тип нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» Mh446295 «,» term_id «:» 1464464400 «,» term_text «:» Mh446295 «}} Mh446295 | |
| Ka22 | Тверитиновская | Тестовый участок Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446296», «term_id»: «1464464402», «term_text»: «Mh446296»}} Mh446296 | ||
| Ka23 | Севастьяновская | Опытный образец сорта 1 | Татарстан | Полный геном | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh411859», «term_id»: «1464464376», «term_text»: «Mh411859»}} Mh411859 | |
| Ka24 | Памят Сахарова | Опытный участок сорта 1 | Татарстан « | белок энт. нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» Mh446297 «,» term_id «:» 1464464404 «,» term_text «:» Mh446297 «}} Mh446297 | ||
| Ka27 | Gilfanovskaya | Cul test plot Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446298», «term_id»: «1464464406», «term_text»: «Mh446298»}} Mh446298 | ||
| Ka28 | Зональная | Опытный участок сорта 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446299», «term_id»: «1464464408», «term_text»: «Mh446299»}} Mh446299 | |
| Ka31 | Корневой ответвление | Тестовая площадка сорта 2 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446300», «term_id»: «1464464410», «term_text»: «Mh446300»}} Mh446300 | |
| Ka36 | Морел Ранняя | Частный сад | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446301», «term_id»: «1464464412», «term_text» : «Mh446301»}} Mh446301 | |
| Ka42 | Гибрид 102-8 / 2 | Опытный участок культуры 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-nucleotide:», » {«text»: «Mh446302», «term_id»: «1464464414», «term_text»: «Mh446302»}} Mh446302 | |
| Ka43 | Hybrid 102-8 / 3 | Татарстан 1 | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446303», «term_id»: «1464464416», «term_text»: «Mh446303»}} Mh446303 | ||
| Ka44 | Гибрид 102-8 / 4 | Испытание на культивирование участок 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446304», «term_id»: «1464464418», «term_text»: «Mh446304» }} Mh446304 | |
| Ka45 | Гибрид 102-8 / 5 | Тестовая площадка сорта 1 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text» : «Mh446305», «term_id»: «1464464420», «term_text»: «Mh446305»}} Mh446305 | |
| Ka54 | Корневой ответвление | Заброшенный гибридный фруктовый сад | Тип | Татарстан 9044 : «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446306», «term_id»: «1464464422», «term_text»: «Mh446306»}} Mh446306 | ||
| Ka55 | Гибрид 1-4- 16 | Заброшенный гибридный сад | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446307», «term_id»: «1464464424», «term_text» : «Mh446307»}} Mh446307 | |
| Ka56 | Гибрид 1-5-2 | Заброшенный гибридный сад | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446308″, » term_id «:» 1464464426 «,» term_text «:» Mh446308 «}} Mh446308 | |
| Ka57 | Корневой ответвление | Заброшенный гибридный сад | Покрытие Татарстана | » нуклеотидный «тип | , «attrs»: {«text»: «Mh446309», «term_id»: «1464464428», «term_text»: «Mh446309»}} Mh446309 | |
| Ka58 | Корневой ответвление | Заброшенный гибридный сад | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446310», «term_id»: «1464464430», «term_text»: «Mh446310»}} Mh446310 | ||
| Ka62 | Заря Татарий | Коллекция заброшенных сортов 2 | Татарстан | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: { «text»: «Mh446311», «term_id»: «1464464432», «term_text»: «Mh446311»}} Mh446311 | |
| Pav2 | Черешневая | Сорт коллекция | Павловск | ТипПавловск | «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» Mh446312 «,» term_id «:» 1464464434 «,» term_text «:» Mh446312 «}} Mh446312||
| Pav3 | Шакировская | ar collectionПавловск | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446313», «term_id»: «1464464436», «term_text»: «Mh446313»} } Mh446313 | ||
| Pav5 | Заря Татарий | Коллекция сортов | Павловск | Покровный белок | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«term_id14», «Mh44_id» «:» 1464464438 «,» term_text «:» Mh446314 «}} Mh446314 | |
| Pav67 | Труженица Татарии | Коллекция сортов | Павловск | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446316», «term_id»: «1464464442», «term_text»: «Mh446316»}} Mh446316 | |
| Pav8 | Тукаевская | Коллекция сорта | Павловск | Белок оболочки | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh446315», «term_id»: «1464464440», » term_text «:» Mh446315 «}} Mh446315 | |
| Pul | Неизвестно | Дикое дерево | Москва | Полный геном | {» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «: «Mh411856», «term_id»: «1464464370», «term_text»: «Mh411856»}} Mh411856 | |
| Ka15 | Prunus tomentosa | Тестовый участок сорта 1 | Татарстан | Полный геном | {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Mh411858», «term_id»: «1464464374», «term_text» : «Mh411858»}} Mh411858 |
2.2. Иммуноферментный анализ (ELISA)
Образцы анализировали методом ELISA с двойным сэндвичем антител (DAS) с использованием набора реагентов SRA 31505 (Agdia, Elkhart, IN, USA) и TAS-ELISA с моноклональным антителом 5B, поставляемым с комплект К-10В (Agritest Srl, Валенцано, Италия). Ткань листа измельчали в фосфатно-солевом буферном растворе (PBS) с добавлением 0,02% ( v / v ) Tween 20, 2% ( w / v ) поливинилпирролидона (MW около 40000), 0.5% ( v / v ) Triton X-100 и 0,02% ( w / v ) азида натрия при соотношении 1/20 ( w / v ). Осветленные экстракты помещали в лунки микропланшета (MaxiSorp, Nunc, New York, NY, USA), предварительно покрытые поликлональными PPV-специфическими антителами (Agdia), и инкубировали в течение 2 ч при 37 ° C. Последующие шаги были выполнены в соответствии с инструкциями производителя набора / набора. Положительный и отрицательный контроли были взяты из набора К-10В. Оптические плотности измеряли через 40 мин после добавления подложки на длине волны 405 нм [30].
2.3. Полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР)
Иммунозахват ОТ-ПЦР выполняли согласно Wetzel et al. [31] с использованием экстрактов растений, приготовленных так же, как для ELISA (см. Выше). Поликлональные PPV-специфические антитела из набора реагентов SRA 31505 (Agdia) разводили 1/200 в 0,05 М карбонатном буфере, pH 9,6 и инкубировали в одноразовых микроцентрифужных пробирках (чашка Multiply-Pro 0,5 мл, Sarstedt, Nümbrecht, Германия при 4 ° C в течение ночи. Экстракты листьев (100 мкл) инкубировали с предварительно покрытыми антителами в течение 1 ч при 37 ° C.Пробирки трижды промывали PBS, содержащим 0,05% ( v / v ) Tween 20, до и после инкубации сока растений. Геномную РНК высвобождали из захваченных иммунитетом вирусных частиц обработкой пробирок 1% ( v / v ) Triton X-100 при 70 ° C в течение 10 мин. Для синтеза первой цепи кДНК использовали случайные гексамерные праймеры и обратную транскриптазу MMLV (Евроген, Москва, Россия). Продукты ОТ использовались в ПЦР для (i) обнаружения PPV с использованием общих праймеров P1 / P2 [32]; (ii) идентификация штамма; и (iii) секвенирование 3’-концевой области генома.Типирование штаммов проводили с использованием пар праймеров HSoC-1 / CSoc-1, HSoC-2 / CSoC-2 [25,33] и M10-5 ‘/ M11-3’ [34], разработанных для идентификации штамма C, а также праймеры к штаммам D, M, W, CR и CV с использованием условий реакции, описанных в исходных протоколах [5,8,35,36]. Изоляты 1410 [37], Fl-3 [7], Bg66 [14], Pav-17 [38] и Tat-2 [30] из нашей лабораторной коллекции были использованы в качестве положительных контролей для штаммов W, CR, C , D и CV соответственно. Положительный контроль PPV-M был предоставлен с помощью набора K-11B (Agritest).Отрицательный контроль был получен из листьев вишни, свободных от PPV. Продукты ПЦР анализировали электрофорезом в 2% ( w / v ) агарозном геле и визуализировали путем окрашивания бромидом этидия.
2,5. Секвенирование всего генома
Геномная РНК из захваченных иммунитетом вирусных частиц была использована для синтеза и амплификации библиотек кДНК с использованием набора для полной амплификации полного транскриптома (WTA2, Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США), как описано ранее [40]. Полученные библиотеки подвергали высокопроизводительному секвенированию на платформе Illumina MiSeq (изоляты Ka7, Ka15, Ka23) или платформе 454 (Bg6, Bg26, Bg66, Pul).Контиги были собраны de novo с помощью программы SPAdes v.3.10.1 [41]. Контиги, относящиеся к PPV, были идентифицированы с помощью поиска BLASTn (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) и сопоставлены с геномом PPV, который показал наибольшую оценку BLAST. Для заполнения внутренних зазоров были разработаны соответствующие грунтовки. 5’-концевую область амплифицировали с использованием набора 5’RACE (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA) в соответствии с протоколом производителя. Соответствующие продукты ПЦР очищали из агарозного геля с помощью набора Cleanup Standard (Evrogen) и секвенировали в обоих направлениях на установках Evrogen.Полноразмерные последовательности генома были депонированы в GenBank под номерами доступа {«type»: «entrez-nucleotide-range», «attrs»: {«text»: «Mh411853-Mh411859», «start_term»: «Mh411853″, » end_term «:» Mh411859 «,» start_term_id «:» 1464464364 «,» end_term_id «:» 1464464376 «}} Mh411853-Mh411859.
2.6. Анализ последовательностей
Помимо последовательностей новых изолятов, перечисленных в, те, которые принадлежат к штаммам C, CR, CV, W и EA, были извлечены из GenBank и использованы в анализах. Это были SwC ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «Y09851», «term_id»: «40252370», «term_text»: «Y09851»}} Y09851), SoC ( {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AY184478», «term_id»: «37731826», «term_text»: «AY184478»}} AY184478), GC27 ({«type» : «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «KY221840», «term_id»: «1250175258», «term_text»: «KY221840»}} KY221840), Volk143 ({«type»: «entrez- нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» KJ787006 «,» term_id «:» 660443618 «,» term_text «:» KJ787006 «}} KJ787006), BY181 ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» HQ840518 «,» term_id «:» 340025614 «,» term_text «:» HQ840518 «}} HQ840518), BY101 ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: { text «:» KC020124 «,» term_id «:» 530453400 «,» term_text «:» KC020124 «}} KC020124), RU-18sc ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «: «KC020125», «term_id»: «530453402», «term_text»: «KC020125»}} KC020125), RU-30sc ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs «: {» текст «:» KC020126 «,» term_id «:» 530453404 «,» term_text «:» KC020126 «}} KC020126), Fl-3 ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {«text»: «MG736812», «term_id»: «14
994″, «term_text»: «MG736812»}} MG736812), Kp8-1 ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {» text «:» MG736813 «,» term_id «:» 14996 «,» term_text «:» MG736813 «}} MG736813), Kp8-2U ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text » : «MG736814», «term_id»: «14998″, «term_text»: «MG736814»}} MG736814), Pul-1 ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: » MG736815 «,» term_id «:» 14000 «,» term_text «:» MG736815 «}} MG736815), Pul-DS ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» MG736816 » , «term_id»: «14
002″, «term_text»: «MG736816»}} MG736816), Tat-2 ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «MF447179″, » term_id «:» 1351232700 «,» term_text «:» MF447179 «}} MF447179), Tat-4 ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» MF447180 «,» term_id » : «1351232702», «term_text»: «MF447180»}} MF447180), LV-141pl ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «HQ670746», «term_id»: » 32733 5415 «,» term_text «:» HQ670746 «}} HQ670746), LV-145bt ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» HQ670748 «,» term_id «:» 327335419 » , «term_text»: «HQ670748»}} HQ670748) и EA-2005 ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AM157175», «term_id»: «850″, «term_text»: «AM157175»}} AM157175) как филогенетическая внешняя группа.Множественные выравнивания были выполнены, как описано ранее [5], с использованием ClustalW v.2.1 или более старой версии этой программы, включенной в программное обеспечение BioEdit v. 7.2.4 [42]. Идентичность нуклеотидной (нуклеотидной) и выведенной аминокислотной (аа) последовательности определяли с использованием алгоритма ClustalW, реализованного в MegAlign v. 7.1.0. (Пакет DNASTAR Lasergene, DNASTAR Inc., Мэдисон, Висконсин, США). Для филогенетического анализа использовалась версия алгоритма максимального правдоподобия PhyML 3.0 [43]. Графическое представление дерева производилось программой MEGA7 [44] с выбором опции «корень в середине».Программа обнаружения рекомбинации v.4.69 (RDP4) [45] использовалась для поиска рекомбинации в выровненных полных последовательностях генома с использованием настроек по умолчанию, за исключением того, что были параметры «последовательности линейны» и «список событий, обнаруженных более чем 4 методами». выбрал. 2.7. Вестерн-блот-анализ
Вестерн-блот-анализ CP PPV-C проводили, как описано ранее [30]. Образцы листьев гомогенизировали в 2-кратном загрузочном буфере с использованием соотношения 1/15 ( w / v ) и нагревали при 96 ° C в течение 7 минут.Белки разделяли 10% ( w / v ) SDS-PAGE и переносили на мембрану Immobilon-P (Millipore, Берлингтон, Массачусетс, США). Мембрану блокировали в течение 1 ч при комнатной температуре 5% ( w / v ) сухого обезжиренного молока (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США), разбавляли PBS и зондировали антителом 5B в Разведение 1/10 000. Меченные HRP антимышиные IgG (W4021, Promega, Madison, WI, USA) использовали в качестве вторичных антител (разведение 1/20 000). PBS с 0,1% ( v / v ) Tween 20 использовали для промывания мембран и разбавления иммуноспецифических реагентов.Детектирование проводили с использованием набора ECL (Promega).
2,8. Исследование передачи через семена PPV-C
Созревшие плоды собирали с вишни, инфицированной изолятами Bg66 и Ka22. PPV был обнаружен в кожуре собранных плодов методом RT-PCR. Мякоть удаляли, и семена подвергали холодной стратификации для прорастания во влажном субстрате в течение примерно шести месяцев. Вирус в проростках проверяли с помощью ОТ-ПЦР с использованием праймеров P1 / P2 дважды в течение шести месяцев после посадки в горшки.
3. Результаты
3.1. Обнаружение и анализ 3’-концевой последовательности новых изолятов PPV-C
Сорок новых изолятов PPV-C были обнаружены в трех географически удаленных регионах европейской части России (Рисунок S1). Все изоляты были легко обнаружены с помощью DAS-ELISA с поликлональными антителами к PPV () и RT-PCR с использованием праймеров P1 / P2. На основании согласованных результатов ОТ-ПЦР с тремя парами праймеров, специфичных для PPV-C, они были идентифицированы как принадлежащие к штамму C.Положительной реакции в ОТ-ПЦР с праймерами к штаммам D, M, CR, CV или W не наблюдалось, что исключает смешанные инфекции.
Таблица 2
Реактивность изолятов штамма C вируса оспы сливы с поликлональными антителами и моноклональными антителами 5B в твердофазном иммуноферментном анализе с двойным антителом (DAS) или тройным антителом (TAS), соответственно.
| Изолятор | Оптическая плотность при 405 нм 1 | Универсальный эпитоп 4 | |||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| DAS-ELISA 2 | TAS-ELISA 3 904 9044 9044 9044 903 904 904 2.42 | 0,20 | ERDVDAG | ||||
| Bg10 | 2,32 | 0,27 | ERDVDAG | ||||
| Bg26 | 2,80 | 0,21 | ERDVDAG | ||||
| Bg60 | 2.56 | 2.34 | DRDVDAG | ||||
| Bg66 | 2.69 | 1.09 | DRDVDAG1 | ||||
| DRDVDAG | |||||||
| Ka5 | 2,63 | 1,36 | DRDVDAG | ||||
| Ka7 | 2,70 | 2,87 | DRDVDAG 9044 | 2,5 Ка11 | 2,69 | 0,24 | ERDVDAG |
| Ka12 | 2,76 | 1,45 | DRDVDAG | ||||
| Ka13 | 2.95 | 0,22 | ERDVDAG | ||||
| Ka15 | 2,23 | 2,35 | DRDVDAG | ||||
| Ka16 | 2,81 | 2,48 | 2,48 DRDVDAG | ||||
| Ka20 | 2,78 | 0,18 | ERDVDAG | ||||
| Ka21 | 2,68 | 0.24 | ERDVDAG | ||||
| Ka22 | 2,74 | 0,27 | ERDVDAG | ||||
| Ka23 | 3,12 | 2,87 | DRDVDAG | ||||
| Ka24 | 2,95 | 0,26 | ERDVDAG | ||||
| Ka27 | 2,78 | 1,74 | DRDVDAG | ||||
| Ka28 | 3,07 | 0,24 | ERDVDAG | ||||
| Ka31 | 2.82 | 2,66 | DRDVDAG | ||||
| Ka42 | 2,54 | 0,66 | ERDVDAG | ||||
| Ka43 | 2,71 | 2,20 | DRDVDAG | ||||
| Ka44 | 1,95 | 1,59 | DRDVDAG | ||||
| 0,24 | ERDVDAG | ||||||
| Ka55 | 2.54 | 2,18 | DRDVDAG | ||||
| Ka56 | 2,76 | 2,34 | DRDVDAG | ||||
| Ka57 | 2,57 | 0,23 | 9044 ERDVDAG|||||
| Ka58 | 2,68 | 0,29 | ERDVDAG | ||||
| Ka62 | 2,65 | 0,69 | ERDVDAG | ||||
| Pav2 | 2,78 | 0.22 | ERDVDAG | ||||
| Pav3 | 2,65 | 1,46 | DRDVDAG | ||||
| Pav5 | 2,72 | 0,21 | ERDVDAG | ||||
| Pav67 | 2,63 | 0,23 | ERDVDAG | ||||
| Pav8 | 2,89 | 2,56 | DRDVDAG | ||||
| Pul | 2,74 | 2,96 | DRDVDAG | ||||
| .21 | 0,24 | ||||||
Принадлежность к штамму C обнаруженных изолятов была дополнительно подтверждена секвенированием 3’-концевой области генома с последующим филогенетическим анализом гена CP . Новые изоляты были сгруппированы вместе с известным PPV-C (). Изоляты Pav2, Ka16 и Bg26, обнаруженные на cv. Черешневая в трех отдаленных населенных пунктах отличались друг от друга. Отдельные изоляты Ka42, Ka43, Ka44 и Ka45 были обнаружены на вегетативном потомке переданного из семян гибрида 102-8, что свидетельствует об их независимой инокуляции.Напротив, последовательности генов CP Ka19 и Ka20 (от вегетативного потомка гибрида 33–64), а также Pav5 и Ka62 (от сорта «Заря Татарий», сохраняемых в Санкт-Петербурге и Татарстане). регионов), были на 100% идентичны друг другу, что позволяет предположить, что соответствующие материнские растения, по-видимому, являются источником вируса. Не было обнаружено географической кластеризации изолятов PPV-C. Анализ выведенных последовательностей аминокислотных остатков CP новых изолятов PPV-C выявил 19 изолятов с мутацией D96E в универсальном эпитопе (), что указывает на его широкое распространение среди PPV-C из трех исследованных регионов.Согласно филогенетическому анализу, последовательности гена CP D96E-положительных изолятов образуют отдельный кластер с 73,5% бутстреп-поддержкой ().
Филогенетическое дерево, основанное на последовательностях гена белка оболочки изолятов штамма С вируса оспы сливы (PPV). Дерево было реконструировано с использованием версии PhyML 3.0 алгоритма максимального правдоподобия [43]. Значения начальной загрузки (> 70%) показаны рядом с соответствующими узлами. Узлы с поддержкой начальной загрузки менее 70% были свернуты.Инвентарные номера GenBank ранее охарактеризованных изолятов указаны в разделе «Материалы и методы», а новые — в. Изоляты, несущие мутацию D96E, помечены скобкой. Масштабная линейка показывает количество замен на остаток.
3.2. Серологический анализ
Изоляты, экспрессирующие типичный универсальный эпитоп DRDVDAG, были распознаны в TAS-ELISA с антителом 5B, тогда как изоляты, несущие мутацию D96E, были в основном отрицательными (), что согласуется с предыдущими результатами исследования D96E-положительного штамма C. и изоляты CR [7,8,14].В то же время ряд образцов продемонстрировал неожиданные результаты в TAS-ELISA. Оптическая плотность в K10 была явно ниже, чем в других изолятах с эпитопом DRDVDAG. Замена D100N может потенциально повлиять на связывание антитела 5B из-за различий в боковых цепях аспарагина (N) и аспарагиновой кислоты (D). Однако аналогичные результаты наблюдались при анализе изолятов Bg66, Ka5, Ka12, Ka27, Ka44 и Pav3, экспрессирующих неизмененный универсальный эпитоп. С другой стороны, слабые, но различимые положительные сигналы были обнаружены для изолятов Ka42 и Ka62, несущих мутацию D96E.
Вестерн-блот-анализ выбранных образцов, различающихся последовательностью универсального эпитопа, продемонстрировал, что антитело 5B способно обнаруживать набор полос в случае изолятов Ka5, Ka7 и Pav3, содержащих эпитоп DRDVDAG (). Этот результат показывает, что денатурированный CP может распознаваться антителом 5B так же эффективно, как и его аналог в интактной вирусной частице, что указывает на то, что конформация молекулы CP не является решающей для связывания антитела 5B. По всей видимости, самая верхняя полоса представляет собой полноразмерную КП.Его молекулярная масса (MW), рассчитанная в соответствии с электрофоретической подвижностью, составляла около 41 кДа, что намного выше молекулярной массы, рассчитанной с учетом аминокислотного состава (36,8 кДа). Атипичная подвижность может быть связана с гликозилированием остатков серина и треонина в N-концевом домене с помощью N-ацетилглюкозамина, как было ранее показано для штаммов D, M и Rec окрашиванием гликопротеином Вестерн-блоттинга [46] и масс-спектрометрией. [47,48]. Нижние полосы считаются продуктами расщепления открытого на поверхности N-концевого домена ЦП клеточными протеазами [49].Антитело 5B может успешно связываться с частично переваренным CP, поскольку универсальный эпитоп расположен рядом с устойчивым к протеазе ядром и не подвергается протеолизу. В соответствии с результатами TAS-ELISA изолят Ka10 был слабо окрашен, а Bg26 и Pav67 не были обнаружены с помощью антитела 5B. Как и в случае TAS-ELISA, D96E-положительные изоляты Ka42 и Ka62 практически не обнаруживались вестерн-блоттингом. Выравнивание последовательностей аминокислот вокруг универсального эпитопа не выявило каких-либо релевантных замен в его непосредственном контексте, способных повлиять на связывание антитела 5B ().
Вестерн-блоттинг выбранных изолятов PPV-C, различающихся последовательностью универсального эпитопа. Стрелки слева от рисунка указывают положения маркеров молекулярной массы (кДа) (Thermo Scientific, Уолтем, Массачусетс, США).
Множественное выравнивание частичных последовательностей белков оболочки российского PPV-C. Цифры над выравниванием указывают положения аминокислот в белке оболочки. Выделена последовательность универсального эпитопа.
3.3. Анализ полных геномов и полипротеинов
Почти полные последовательности генома изолятов Ka7, Ka15, Ka23, Bg6, Bg26, Bg66 и Pul были собраны от одного (Ka7, Ka23) до шести (Pul) контигов (длиной от 202 до 9744 нт) с покрытием 92.От 2 до 99,5% наиболее близкого генома (BY181) с минимальным охватом от 7x (около 5’-конца генома) до 154x (около 3’-конца генома). Никакой гетерогенности не было обнаружено ни в каких образцах, проанализированных с помощью секвенирования следующего поколения (NGS), что позволяет предположить, что каждый из них содержит только один изолят PPV. Остальные пробелы были устранены с помощью обычного секвенирования по Сэнгеру с использованием пользовательских праймеров и 5’-RACE. Не было различий в последовательностях между исходной сборкой и продуктами ПЦР с закрытием пробелов в перекрывающихся областях.Геномы этих изолятов состоят из 9795 нуклеотидов и кодируют полипротеины длиной 3143 а.о. Обе последовательности nt и aa полностью коллинеарны ранее охарактеризованным геномам PPV-C. ORF PIPO [50] была идентифицирована в положениях с 2909 по 3226. Изоляты PPV-C имеют от 98,2 до 99,4% и от 97,9 до 99,9% идентичностей на уровнях nt и aa, соответственно. Филогенетический анализ новых и известных полноразмерных последовательностей PPV-C вместе с несколькими изолятами, принадлежащими штаммам CR, CV, W и EA, был выполнен с использованием алгоритма максимального правдоподобия.Геномы новых изолятов PPV-C объединены в кластеры с известным PPV-C со 100% поддержкой начальной загрузки (A).
Филогенетический анализ последовательностей генома полноразмерного штамма С PPV ( A ) и предполагаемых рекомбинантных последовательностей от нуклеотидов 664 до 1723 ( B ). Деревья были реконструированы с использованием версии PhyML 3.0 алгоритма максимального правдоподобия [43]. Значения начальной загрузки (> 70%) показаны рядом с узлами. Узлы с поддержкой начальной загрузки менее 70% были свернуты. Принадлежность штамма указана справа от деревьев.Инвентарные номера известных изолятов GenBank указаны в разделе «Материалы и методы», а новые — в. Масштабная линейка показывает количество замен на остаток.
Все предполагаемые сайты и мотивы расщепления, связанные с передачей тлей, идентичны в полипротеинах новых изолятов. Было обнаружено, что большинство аминокислотных остатков, уникальных для адаптированных к вишне штаммов [5,8], консервативны, за некоторыми исключениями. Аланин (A) в положении 1022 (белок P3) заменяет валин (V) в Ka23.Тирозин (Y) в положении 1415 (CI) заменяет гистидин (H) в Bg6. Треонин (T) в положении 2836 (CP) заменяет изолейцин (I) в Ka15. Серин в положении 2919 (CP) заменяет аланин во вновь секвенированном изоляте GC27 из Германии [22]. Упомянутые позиции, вероятно, следует исключить из списка аминокислот, уникальных для штаммов, адаптированных к вишне. Кроме того, на основании предполагаемых предковых последовательностей Sanderson et al. [51] идентифицировали восемь сайтов аминокислот в белках P1 (позиции 117, 137, 158, 180) и VPg (позиции 1949, 1957, 1970, 2038), которые, по-видимому, подверглись положительной селекции во время адаптации PPV к вишне.Все они были сохранены в новых изолятах PPV-C. Однако в изолятах Tat-2 и Tat-4 (штамм CV) позиция 158 занята глутамином (Q) вместо гистидина (H), общего для всех других известных адаптированных к вишне изолятов [5], что позволяет предположить, что это положение является не важен для адаптации вируса к вишне. Изолят Ка15 был обнаружен на естественно инфицированных P. tomentosa . Пять аминокислотных замен в P1 (Q36R), NIb (A2799V) и N-концевом домене CP (T2836I, D2860A, A2866T) отличают его от изолятов вишни.Связаны ли эти положения с определением диапазона хозяев, еще предстоит выяснить с использованием большего количества изолятов PPV-C из пушистой вишни.
3.4. Рекомбинационный анализ полных последовательностей генома
Анализ RDP4 обнаружил событие рекомбинации в 5’-концевой области всех доступных геномов PPV-C (). Это событие было подтверждено шестью различными алгоритмами, реализованными в костюме RDP4, со статистически значимыми значениями P (). Предполагаемая рекомбинантная последовательность охватывает геномный сегмент от (Cter) P1 до середины гена HcPro .Точки разрыва рекомбинации были идентифицированы в положениях нуклеотидов от 625 до 664 и от 1653 до 1723, в зависимости от изолята. Границы события рекомбинации были подтверждены секвенированием продуктов ПЦР (длиной ≈450 нт каждый), охватывающих предполагаемые положения контрольных точек в геномах Bg6, Bg26, Bg66, Pul, Ka7, Ka15 и Ka23. Обе последовательности, определенные обычным методом Сэнгера, были идентичны последовательностям, полученным с помощью высокопроизводительного секвенирования, что исключает возможность того, что химерные последовательности могут быть получены из двух изолятов, совместно заражающих хозяина.Изоляты Tat-4, принадлежащие штамму CV, и RU-17sc (PPV-CR) были определены как основные и второстепенные родители, соответственно. Представленные результаты были получены с использованием «минимального» выравнивания, состоящего из тринадцати полноразмерных геномов PPV-C, а также двух штаммов CR (RU-17sc, Kp8-2U) и CV (Tat-2, Tat- 4). Анализ RDP4 расширенного выравнивания, включая, кроме того, все другие доступные полноразмерные геномы PPV-CR (RU-18sc, RU-30sc, Kp8-1, Pul-DS, Fl-3, Pul-1) и выбранные изоляты штаммов W (LV-141pl, LV-145bt), EA ({«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AM157175», «term_id»: «850″, » term_text «:» AM157175 «}} AM157175), D ({» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» AB545926 «,» term_id «:» 316982647 «,» term_text «:» AB545926 «}} AB545926, {» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» AY
Анализ событий рекомбинации при выравнивании тринадцати полноразмерных геномов изолятов штамма С PPV с помощью программы рекомбинантного обнаружения (RDP) v.4.69 [45]. Представлены обобщенные результаты обнаружения событий рекомбинации, полученные шестью различными методами, реализованными в RDP4. Названия изолятов указаны над длинными столбиками. Имена предполагаемых несовершеннолетних родителей указаны рядом с короткими полосами под соответствующими полосами изоляции. Карта генома PPV и линейка представлены в масштабе под графиком.
Таблица 3
События рекомбинации, выявленные в полных геномах штамма C вируса оспы сливы с помощью программы обнаружения рекомбинации v.4.69 (RDP4).
| Номер события | Рекомбинантный | Начальная точка останова | Конечная точка останова | Основной родительский | Второстепенный родительский | p Значения, вычисленные с помощью семи методов, созданных с помощью | ||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Maxchi | Chimaera | SiScan | 3Seq | |||||||||
| 1 | Bg6 | 664 | 1723 | Tat-4 | sc | 916.6 × 10 −7Не обнаружено | 7,5 × 10 −5 | 2,7 × 10 −4 | 8,1 × 10 −4 | 1,3 × 10 −22 | 2,1 × 10 −8 | |
| Bg26 | 664 | 1703 | ||||||||||
| Bg66 | 664 | 1723 | ||||||||||
| BY101 | 9044 9044 | 6641 BY101 | 6641 | |||||||||
| GC27 | 649 | 1723 | ||||||||||
| Ka7 | 664 | 1723 | ||||||||||
| Ka15 | 625 | 1723 | 9044 9044Ka15 | 625 | 1723 | 904 904649 | 1653 | |||||
| SoC | 664 | 1723 | ||||||||||
| SwC | 664 | 1723 | ||||||||||
| 664 | 1723 | |||||||||||
| 2 | SoC | 9096 | 9756 | SwC | Volk143 | 2.0 × 10 −3 | 7,9 × 10 −3 | 8,1 × 10 −3 | 1,2 × 10 −3 | 9,1 × 10 −4 | 7,4 × 10 — 3 | 2,4 × 10 −3 |
3.5. Изоляты PPV-C не передаются через семена
Сто шестьдесят восемь сеянцев вишни, инфицированных PPV-C, проверяли на возможность передачи вируса через семена. Ни видимых симптомов, ни положительных результатов при RT-PCR не наблюдалось в течение шести месяцев после посадки проросших семян, что позволяет предположить, что PPV-C не передается через семена вишни.
4. Обсуждение
В данной работе охарактеризовано сорок новых изолятов PPV-C из трех географически удаленных регионов европейской части России. Подавляющее большинство из них было обнаружено на вишне. Ранее сообщалось только об одном российском изоляте PPV-C для черешни [15]. Другой изолят штамма С был обнаружен на естественно инфицированной пушистой вишне ( P. tomentosa ). Пушистая вишня является известным древесным индикатором PPV и может быть экспериментально инфицирована PPV-C [25,53].Однако, насколько нам известно, это первое сообщение о естественной инфекции PPV-C пуховой вишни в полевых условиях. Предыдущие исследования фруктовых садов и частных садов, а также диких деревьев показали широкое распространение PPV-C в европейской части России [13,14,15,16]. Кроме того, изолят PPV-C BarS-1 был обнаружен на вишне в частном саду недалеко от города Барнаул (Западная Сибирь) в азиатской части России [17]. Результаты, представленные в этой работе, могут в дальнейшем способствовать более четкому пониманию распространенности и генетического разнообразия PPV-C.
Высокая заболеваемость PPV-C в России явно контрастирует со спорадическим обнаружением этого штамма за пределами страны. Это различие можно объяснить, если предположить, что PPV-C или даже все адаптированные к вишне штаммы возникли в России с последующим распространением по всей европейской части страны и случайным распространением в соседние государства. Следует отметить, что изолят SoC, впервые обнаруженный в Молдове, считается завезенным из России вместе с зараженными сортами вишни [9,25].Примечательно, что хорватский изолят PPV-C оказался идентичным SoC из Молдовы [21].
Межштаммовая рекомбинация, обнаруженная в 5’-концевой области среди всех доступных полноразмерных геномов PPV-C (,), может пролить больше света на эволюцию этого штамма. Изоляты, принадлежащие к штаммам CV и CR, были признаны основными и второстепенными родителями соответственно. Оба штамма обнаружены только в России и имеют довольно ограниченное распространение. Присутствие этого события рекомбинации во всех изученных геномах PPV-C позволяет предположить, что оно могло произойти в предшественнике изолятов современного штамма C.Рекомбинация может повысить приспособленность его потомства и сыграть важную роль в успешном распространении PPV-C по посадкам черешни в России. Сравнительно высокие значения P и высокий уровень расхождения предполагаемых родителей друг от друга указывают на то, что это событие должно было произойти давным-давно.
Семь новых и шесть ранее охарактеризованных полноразмерных геномов PPV-C имеют от 98,2 до 99,4% и от 97,9 до 99,9% идентичностей на уровне нуклеотидов и аминокислот, соответственно, в соответствии с предыдущими данными, указывающими на низкую молекулярную гетерогенность штамма C [15 , 22].В то же время было показано, что популяция PPV-C неоднородна с точки зрения того, что около половины известных изолятов несут мутацию D96E, а другой — нет (). D96E-положительные изоляты были обнаружены в трех неродственных и географически удаленных посевах. Подавляющее большинство изолятов PPV-C, несущих эту мутацию, не распознавалось антителом 5B в TAS-ELISA. Мутация D96E в изолятах штамма CR также влияет на их обнаружение с помощью этого антитела [7,8]. Таким образом, эта мутация может потенциально поставить под угрозу обнаружение PPV в вишнях из-за ложноотрицательных результатов при использовании антитела 5B.Причины, по которым это антитело распознает остаток аспарагиновой кислоты (D), но обычно не распознает очень похожую глутаминовую кислоту (E), неизвестны, что способствует дальнейшим исследованиям взаимодействия 5B / DRDVDAG. Например, много остатков серина и треонина сосредоточено вокруг универсального эпитопа (). Их гликозилирование может мешать связыванию антитела 5B и объяснять относительно низкие сигналы в TAS-ELISA для изолятов Bg66, Ka5, Ka12, Ka27, Ka44 и Pav3 ().
Интересно, что последовательности гена CP D96E-положительных изолятов были сгруппированы вместе согласно филогенетическому анализу ().Подобные результаты ранее были получены при изучении вируса картофеля Y (PVY) [54]. Было показано, что значительная часть изолятов штамма PVY O распознается моноклональным антителом 1F5, специфичным к PVY N , благодаря единственной мутации Q98R в их CP. Филогенетический анализ полных геномов показал, что такие изоляты образуют отдельный подкластер O5 внутри штамма PVY O со 100% бутстреп-поддержкой. За исключением серологии, группа PVY O -O5 не отличалась от обычной группы PVY O [54].В отличие от PVY, полноразмерные геномы Bg6 и Bg26, несущие мутацию D96E, не образуют отдельный кластер (A). Не исключено, что в будущем сегрегация двух групп изолятов PPV-C может продолжиться или, наоборот, мутация D96E может быть исключена из популяции. Стоит отметить, что мутация D96E, по-видимому, случайным образом распределяется среди изолятов штамма C и, по-видимому, не обеспечивает какого-либо избирательного преимущества для их выживаемости в вишне. Для сравнения: почти все известные изоляты PPV-CR экспрессируют эпитоп ERDVDAG, тогда как CP PPV-CV содержат последовательность DRDVDAG.
Передачи PPV-C через семена вишни не обнаружено. Этот результат согласуется с предыдущими данными, полученными для семян абрикоса, персика, сливы и миробалана от PPV-D, -M, -Rec и W-инфицированных растений [55,56,57,58,59,60] . Между тем, различные изоляты Ka5, Ka7, Ka10, Ka11, Ka21, Ka55 и Ka56 были обнаружены на семенах вишневых деревьев (), что позволяет предположить, что эти растения могли быть независимо инфицированы посредством передачи тлей. Природные векторы PPV-C неизвестны.Наиболее эффективными векторами PPV считаются Myzus persicae , Aphis spiricola и Hyalopterus pruni [2]. Было показано, что зеленая персиковая тля M. persicae и широкобобовая тля A. fabae передают изоляты PPV-C в лабораторных условиях [11,18]. Однако колонизирующий M. cerasi был единственным видом тли, наблюдаемым на вишне в обследованных регионах. Наши попытки передать изоляты Pul, Ka13, Ka16 и Ka23 с M.cerasi от зараженных деревьев до сеянцев вишни и N. benthamiana не удалось, что согласуется с предыдущими результатами Labonne et al. [61].
Благодарности
Авторы благодарят А. Юшева и С. Орлову (НИИ растениеводства им. Вавилова) за помощь в полевых исследованиях насаждений вишни, М. Логачеву (Сколковский институт науки и технологий, основной объект геномики) и А. Кудрявцевой (Институт молекулярной биологии им. Энгельгардта РАН) за секвенирование нового поколения.
Вклад авторов
A.S., P.I. и S.C. разработали эксперименты; А.С., Т.Г. и Г.О. проводили эксперименты; ПИ. проведенная биоинформатика; A.S., P.I., T.G., G.O. и S.C. проанализировали результаты; S.C., P.I. и Т. написал газету. Все авторы прочитали и одобрили окончательную рукопись.
Финансирование
Работа поддержана Российским научным фондом, грант № 14-24-00007.
Конфликт интересов
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Ссылки
1. Камбра М., Капоте Н., Мирта А., Ллейсер Г. Вирус оспы сливы и предполагаемые затраты, связанные с болезнью акулы. ЕППО Бык. 2006; 36: 202–204. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.2006.01027.x. [CrossRef] [Google Scholar] 2. Гарсия Дж. А., Гласа М., Камбра М., Кандресс Т. Вирус оспы сливы и шарка: модельный потивирус и основное заболевание. Мол. Завод Патол. 2014; 15: 226–241. DOI: 10,1111 / mpp.12083. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 3.Рембо Л., Далло С., Готвальд Т., Декрок В., Жако Э., Субейран С., Тибо Г. Эпидемиология Шарки и стратегии управления во всем мире: извлечение уроков по оптимизации борьбы с болезнями многолетних растений. Анну. Rev. Phytopathol. 2015; 53: 357–378. DOI: 10.1146 / annurev-phyto-080614-120140. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 4. Джеймс Д., Варга А., Сандерсон Д. Генетическое разнообразие вируса оспы сливы : штаммы, болезни и связанные с ними проблемы для борьбы. Жестяная банка. J. Plant Pathol. 2013; 35: 431–441.DOI: 10.1080 / 07060661.2013.828100. [CrossRef] [Google Scholar] 5. Чирков С., Шевелева А., Иванов П., Закубанский А. Анализ генетического разнообразия изолятов вируса оспы сливы российской вишни свидетельствует о наличии нового штамма. Завод Дис. 2018; 102: 569–575. DOI: 10.1094 / PDIS-07-17-1104-RE. [CrossRef] [Google Scholar] 6. Сихельска Н., Гласа М., Шубр З. Предпочтение хозяев основных штаммов вируса оспы сливы — Мнения, основанные на региональных и мировых данных о последовательностях. J. Integr.Agric. 2017; 16: 510–515. DOI: 10.1016 / S2095-3119 (16) 61356-4. [CrossRef] [Google Scholar] 7. Чирков С., Иванов П., Шевелева А. Выявление и частичная молекулярная характеристика изолятов атипичного вируса оспы сливы из естественно инфицированной вишни. Arch. Virol. 2013; 158: 1383–1387. DOI: 10.1007 / s00705-013-1630-х. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 8. Гласа М., Приходько Ю., Предайна Л., Нагьева А., Шнейдер Ю., Живаева Т., Шубр З., Камбра М., Кандресс Т. Характеристика изолятов вишни вируса оспы сливы из бассейна Волги в России обнаружен новый штамм вируса вишни.Фитопатология. 2013; 103: 972–979. DOI: 10.1094 / PHYTO-11-12-0285-R. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 9. Калашян Я.А., Билкей Н.Д., Вердеревская Т.Д., Рубина Е.В. Вирус оспы сливы на вишне в Молдове. ЕППО Бык. 1994. 24: 645–649. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.1994.tb01078.x. [CrossRef] [Google Scholar] 10. Немчинов Л., Хадиди А. Характеристика кислого штамма вируса оспы сливы . Фитопатология. 1996. 86: 575–580. DOI: 10.1094 / Phyto-86-575. [CrossRef] [Google Scholar] 11.Немчинов Л., Хадиди А., Мейс Э., Камбра М., Кандресс Т., Дамстегт В. Штамм вишневого вируса оспы сливы (PPV): Молекулярные и серологические доказательства новой подгруппы штаммов PPV. Фитопатология. 1996; 86: 1215–1221. DOI: 10.1094 / Phyto-86-1215. [CrossRef] [Google Scholar] 12. Малиновский Т., Совик И., Салавей А. В., Кухарчик Н. В. Частичная характеристика биологических свойств изолятов PPV-C, обнаруженных в Беларуси, и создание in vitro культур инфицированных подвоев L2 и OWP-C; Материалы 22-й Международной конференции по вирусным и другим трансмиссивным болезням плодовых культур; Рим, Италия.3-8 июня 2012 г. [Google Scholar] 13. Приходько Ю., Шнейдер Ю., Живаева Т., Морозова О. ППВ в России: распространение и штаммы; Материалы 2-го Международного симпозиума по вирусу оспы сливы; Оломоуц, Чехия. 3–6 сентября 2013 г. [Google Scholar] 14. Чирков С., Кудрявцева А., Иванов П., Шевелева А., Мельникова Н. Молекулярный анализ российских изолятов вируса оспы сливы , естественным образом инфицирующих вишню; Материалы 2-го Международного симпозиума по вирусу оспы сливы; Оломоуц, Чехия.3–6 сентября 2013 г. [Google Scholar] 15. Глаза М., Шнейдер Ю., Предайня Л., Живаева Т., Приходько Ю. Характеристика российских изолятов вируса оспы сливы является дополнительным доказательством низкомолекулярной гетерогенности внутри штамма PPV-C. J. Plant Pathol. 2014; 96: 597–601. DOI: 10.4454 / JPP.V96I3.004. [CrossRef] [Google Scholar] 16. Чирков С., Приходько Ю., Иванов П., Шевелева А. Популяция вируса оспы сливы в европейской части России кажется самой разнообразной в мире; Материалы XVIII Международного конгресса по защите растений; Берлин, Германия.24–27 августа 2015 г. [Google Scholar] 17. Шнейдер Ю., Тихомирова М., Морозова О., Живаева Т., Приходько Ю. Первое обнаружение вируса оспы сливы в Западной Сибири; Материалы 24-й Международной конференции по вирусным и другим трансмиссивным болезням плодовых культур; Салоники, Греция. 5–9 июня 2017 г. [Google Scholar] 18. Крещенци А., д’Акино Л., Комес С., Нуццачи М., Пьяццолла П., Боша Д., Хадиди А. Характеристика изолята черешни потивируса оспы сливы.Завод Дис. 1997. 81: 711–714. DOI: 10.1094 / PDIS.1997.81.7.711. [CrossRef] [Google Scholar] 19. Zagrai L., Zagrai I., Levy L., Mavrodieva V., Festila A., Baias I. Предварительное обследование вируса оспы сливы на вишне в Румынии. Бык. UASMV Hortic. 2011; 68: 517. [Google Scholar] 20. Немчинов Л., Хадиди А., Колбер М., Немет М. Молекулярные доказательства присутствия вируса оспы сливы — подгруппа вишни в Венгрии. Acta Hortic. 2008; 472: 503–510. DOI: 10.17660 / ActaHortic.1998.472.63. [CrossRef] [Google Scholar] 21.Каич В., Черни С., Шкорич Д. Вирус оспы сливы на вишне в Хорватии; Материалы 22-й Международной конференции по вирусным и другим трансмиссивным болезням плодовых культур; Рим, Италия. 3-8 июня 2012 г. [Google Scholar] 22. Джелкманн В., Сандерсон Д., Берварт К., Джеймс Д. Первое обнаружение и полная характеристика генома изолята штамма Cherry (C) вируса оспы сливы из кислой вишни ( Prunus cerasus ) в Германии. J. Plant Dis. Prot. 2018; 125: 267–272.DOI: 10.1007 / s41348-018-0155-7. [CrossRef] [Google Scholar] 23. Fanigliulo A., Comes S., Maiss E., Piazzolla P., Crescenzi A. Полная нуклеотидная последовательность изолятов вируса оспы сливы из сладкой (PPV-SwC) и кислой (PPV-SoC) вишни и их таксономические отношения в пределах виды. Arch. Virol. 2003. 148: 2137–2153. DOI: 10.1007 / s00705-003-0175-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 24. Буйдосо Г., Гротко К. Производство вишни. В: Quero-Garcia J., Iezzoni A., Pulawska J., Lang G., редакторы. Вишня: ботаника, производство и использование. CABI; Бостон, Массачусетс, США: 2017. С. 1–13. [Google Scholar] 25. Немчинов Л., Крещенци А., Хадиди А., Пьяццолла П., Вердеревская Т. Современное состояние новой подгруппы вишни вируса оспы сливы (PPV-C) В: Хадиди А., Хетарпал Р.К., Когазенава Х., редакторы. Борьба с вирусными заболеваниями растений. APS Press; Сент-Пол, Миннесота, США: 1998. С. 629–638. [Google Scholar] 26. Бодин М., Гласа М., Вергер Д., Костес Э., Досба Ф. Распространение изолята вишни вируса оспы сливы в инфицированных подвоях Prunus .J. Phytopathol. 2003. 151: 625–630. DOI: 10.1046 / j.0931-1785.2003.00777.x. [CrossRef] [Google Scholar] 27. Беглин М., Куио Дж. Б., Лабонн Г. Оценка риска заражения вишневых деревьев вирусом оспы сливы во Франции. Acta Hortic. 2004; 657: 221–224. DOI: 10.17660 / ActaHortic.2004.657.32. [CrossRef] [Google Scholar] 28. Cambra M., Asensio M., Gorris MT, Perez E., Camarasa E., Garcia JA, Moya JJ, Lopez-Abella D., Vela C., Sanz A. Обнаружение потивируса оспы сливы с использованием моноклональных антител к структурным и не -структурные белки.ЕППО Бык. 1994; 24: 569–577. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.1994.tb01070.x. [CrossRef] [Google Scholar] 29. Candresse T., Saenz P., Garcia J.A., Boscia D., Navratil M., Gorris M.T., Cambra M. Анализ эпитопной структуры белка оболочки вируса оспы сливы . Фитопатология. 2011; 101: 611–619. DOI: 10.1094 / PHYTO-10-10-0274. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 30. Чирков С., Иванов П., Шевелева А., Закубанский А., Осипов Г. Новый сильно дивергентный изолят вируса оспы сливы , поражающий вишню в России.Вирусология. 2017; 502: 56–62. DOI: 10.1016 / j.virol.2016.12.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 31. Ветцель Т., Кандресс Т., Макквайр Г., Равелонандро М., Дунес Дж. Высокочувствительный метод полимеразной цепной реакции иммунного захвата для обнаружения потивируса оспы сливы. J. Virol. Методы. 1992; 39: 27–37. DOI: 10.1016 / 0166-0934 (92)-T. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 32. Ветцель Т., Кандресс Т., Равелонандро М., Дунез Дж. Анализ полимеразной цепной реакции, адаптированный для обнаружения потивируса оспы сливы. Дж.Virol. Методы. 1991; 33: 355–365. DOI: 10.1016 / 0166-0934 (91)-X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 33. Немчинов Л., Хадиди А. Специфические олигонуклеотидные праймеры для прямого выявления подгруппы потивируса оспы сливы — вишни. J. Virol. Методы. 1998. 70: 231–234. DOI: 10.1016 / S0166-0934 (97) 00194-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 34. Семес М., Кальман М., Мирта А., Боша Д., Немет М., Колбер М., Доргай Л. Интегрированная ОТ-ПЦР / вложенная ПЦР-диагностика для дифференциации подгруппы вируса оспы сливы.J. Virol. Методы. 2001. 92: 165–175. DOI: 10.1016 / S0166-0934 (00) 00284-6. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Олмос А., Камбра М., Даси М.А., Кандресс Т., Эстебан О., Горрис М.Т., Асенсио М. Одновременное обнаружение и типирование изолятов потивируса оспы сливы (PPV) с помощью полувложенных ПЦР и ПЦР-ELISA. J. Virol. Методы. 1997. 68: 127–137. DOI: 10.1016 / S0166-0934 (97) 00120-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 36. Глаза М., Малиновски Т., Предайня Л., Пупола Н., Декена Д., Михальчук Л., Кандресс Т. Вариабельность последовательностей, анализ рекомбинации и специфическое обнаружение штамма W вируса оспы сливы.Фитопатология. 2011; 101: 980–985. DOI: 10.1094 / PHYTO-12-10-0334. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 37. Шевелева А., Иванов П., Приходько Ю., Джеймс Д., Чирков С. Распространенность и генетическое разнообразие Winona-like изолятов вируса оспы сливы в России. Завод Дис. 2012; 96: 1135–1142. DOI: 10.1094 / PDIS-12-11-1045-RE. [CrossRef] [Google Scholar] 38. Чирков С., Иванов П., Шевелева А., Кудрявцева А., Приходько Ю., Митрофанова И. Возникновение и характеристика изолятов штамма D вируса оспы сливы из Европейской России и Крыма.Arch. Virol. 2016; 161: 425–430. DOI: 10.1007 / s00705-015-2658-х. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 39. Matic S., Elmaghraby I., Law V., Varga A., Reed C., Myrta A., James D. Серологическая и молекулярная характеристика изолятов штамма вируса оспы сливы El Amar для лучшего понимания его разнообразия, эволюции и уникального географического положения. распределение. J. Plant Pathol. 2011; 93: 303–310. DOI: 10.4454 / jpp.v93i2.1184. [CrossRef] [Google Scholar] 40. Шевелева А., Кудрявцева А., Сперанская А., Беленикин М., Мельникова Н., Чирков С. Полная последовательность генома нового изолята штамма W вируса оспы сливы , определенная с помощью пиросеквенирования 454. Гены вирусов. 2013; 47: 385–388. DOI: 10.1007 / s11262-013-0946-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 41. Банкевич А., Нурк С., Антипов А., Гуревич А.А., Дворкин М., Куликов А.С., Лесин В.М., Николенко С.И., Фам С., Пржибельский А.Д. и др. SPAdes: новый алгоритм сборки генома и его приложения для секвенирования отдельных клеток. J. Comput. Биол. 2012; 19: 455–477. DOI: 10.1089 / куб.2012.0021. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 42. Холл Т.А. BioEdit: удобный редактор выравнивания биологических последовательностей и программа анализа для Windows 95/98 / NT. Nucleic Acids Symp. Сер. 1999; 41: 95–98. [Google Scholar] 43. Гуиндон С., Дюфаярд Дж. Ф., Лефорт В., Анисимова М., Хордейк В., Гаскуэль О. Новые алгоритмы и методы для оценки филогении максимального правдоподобия: оценка производительности PhyML 3.0. Syst. Биол. 2010. 59: 307–321. DOI: 10.1093 / sysbio / syq010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 44.Кумар С., Стечер Г., Тамура К. MEGA7: молекулярно-эволюционный генетический анализ версии 7.0 для больших наборов данных. Мол. Биол. Evol. 2016; 33: 1870–1874. DOI: 10.1093 / molbev / msw054. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 45. Мартин Д.П., Мюррелл Б., Голден М., Хосал А., Мухир Б. RDP4: Обнаружение и анализ паттернов рекомбинации в геномах вирусов. Virus Evol. 2015; 1 DOI: 10.1093 / ve / vev003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 46. Коллерова Е., Гласа М., Субр З.W. Вестерн-блоттинг-анализ капсидного белка вируса оспы сливы . J. Plant Pathol. 2008; 90: 19–22. DOI: 10.4454 / jpp.v90i1sup.610. [CrossRef] [Google Scholar] 47. Фернандес-Фернандес М.Р., Камафьета Э., Бонай П., Мендес Э., Альбар Дж. П., Гарсия Х.А. Капсидный белок вируса с одноцепочечной РНК модифицирован O -связанным N -ацетилглюкозамином. J. Biol. Chem. 2002. 277: 135–140. DOI: 10.1074 / jbc.M106883200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 48. Перес Дж. Дж., Удеши Н.Д., Шабановиц Дж., Джордия С., Хуарес С., Скотт К.Л., Ольшевски Н.Э., Хант Д.Ф., Гарсия Дж. А. Модификация O-ClcNAc белка оболочки потивируса Вируса оспы сливы усиливает вирусную инфекцию. Вирусология. 2013; 442: 122–131. DOI: 10.1016 / j.virol.2013.03.029. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 49. Лопес-Мойя Дж. Дж., Канто Т., Лопес-Абелла Д., Диас-Руис Дж. Р. Дифференциация изолятов вируса оспы средиземноморской сливы с помощью анализа белков оболочки. Завод Патол. 1994; 43: 161–171.DOI: 10.1111 / j.1365-3059.1994.tb00566.x. [CrossRef] [Google Scholar] 50. Chung B.Y.M., Miller W.A., Atkins J.F., Firth A.E. перекрывающийся важный ген в Potyviridae . Proc. Natl. Акад. Sci. СОЕДИНЕННЫЕ ШТАТЫ АМЕРИКИ. 2008; 105: 5897–5902. DOI: 10.1073 / pnas.0800468105. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 51. Сандерсон Д., Фу Дж., Джеймс Д. Идентификация возможных путей эволюции вируса оспы сливы и прогнозирование аминокислотных остатков, важных для адаптации хозяина.Acta Hortic. 2017; 1163: 107–116. DOI: 10.17660 / ActaHortic.2017.1163.16. [CrossRef] [Google Scholar] 52. Джеймс Д., Сандерсон Д., Варга А., Шевелева А., Чирков С. Анализ полных геномных последовательностей новых изолятов генетически разнообразного штамма Winona вируса оспы сливы (PPV W) и первое окончательное свидетельство события внутриштаммовой рекомбинации. Фитопатология. 2016; 106: 407–416. DOI: 10.1094 / PHYTO-09-15-0211-R. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 53. Дамстегт В.Д., Уотеруорт Х.Э., Минк Г.И., Хауэлл У. Prunus tomentosa в качестве диагностического хозяина для обнаружения вируса оспы сливы и других вирусов Prunus . Завод Дис. 1997. 81: 329–332. DOI: 10.1094 / PDIS.1997.81.4.329. [CrossRef] [Google Scholar] 54. Карасев А.В., Ху X., Браун К.Дж., Керлан К., Николаева О., Кросслин Д.М., Грей С.М. Генетическое разнообразие обычного штамма вируса картофеля Y (PVY) и происхождение рекомбинантных штаммов PVY. Фитопатология. 2011; 101: 778–785. DOI: 10.1094 / PHYTO-10-10-0284.[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 55. Глаза М., Хриковский И., Кудела О. Доказательства отсутствия передачи вируса оспы сливы семенами инфицированной сливы и миробалана. Биол. Братисль. 1999; 54: 481–484. [Google Scholar] 56. Pasquini G., Simeone A.M., Conte L., Barba M. Доказательства отсутствия передачи через семена штамма D вируса оспы сливы и M.J. Plant Pathol. 2000. 82: 221–226. DOI: 10.4454 / jpp.v82i3.1173. [CrossRef] [Google Scholar] 57. Паскини Г., Барба М. Вопрос о передаче вируса оспы сливы через семена .ЕППО Бык. 2006; 36: 287–292. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.2006.00989.x. [CrossRef] [Google Scholar] 58. Милушева С., Герчева П., Божкова В., Каменова И. Эксперименты по передаче вируса оспы сливы через семена Prunus . J. Plant Pathol. 2008; 90: 23–26. DOI: 10.4454 / jpp.v90i1sup.611. [CrossRef] [Google Scholar] 59. Каменова И. Непереносимость вируса оспы сливы через семена миробалана и абрикоса. Bulg. J. Agric. Sci. 2016; 22: 267–271. [Google Scholar] 60. Закубанский А.В., Шевелева А.А., Чирков С.Н. Молекулярно-биологические свойства новых изолятов вируса оспы сливы штамм Winona. Моск. Univ. Биол. Sci. Бык. 2016; 71: 71–75. DOI: 10.3103 / S00963020103. [CrossRef] [Google Scholar] 61. Лабонн Г., Ивон М., Киот Дж. Б., Авинент Л., Лласер Г. Тли как потенциальные переносчики вируса оспы сливы: сравнение методов тестирования и эпидемиологических последствий. Acta Hortic. 1995; 386: 207–218. DOI: 10.17660 / ActaHortic.1995.386.27. [CrossRef] [Google Scholar]
Помидоры черной сливы семейной реликвии Информация, рецепты и факты
3170 товаров
Яблоко
Абрикосы
Артишоки
Азиатский
Спаржа
Авокадо
Бананы
Фасоль
Свекла
Болгарский перец
Ягоды
Горькая дыня
Бок Чой
Брокколи
Брюссельская капуста
Капуста
Кактус
Морковь
Цветная капуста
Сельдерей
Chard Swiss
Вишня
Каштаны
Цикорий
Цитрон
Цитрус
CM
Кокосовый орех
Кукуруза
Огурцы
Даты
Драконий фрукт
дуриан
Баклажаны
Яйца
Эндив
Папоротники
Инжир
Цветы
FM
Собирали
Fresh Origins
Чеснок
Имбирь
Грейпфрут
Виноград
Зелень
Groc
Гуавас
Травы
Джамбу
мармелад
Кале
Киви
Кумкватов
Листья
Лук-порей
Лимоны
Салат-латук
Лимау
Лаймы
Луло
Мамей
Мандарин
Манго
Мангустин
Дыня
Micro Greens
Грибы
Нектарины
Гайки
Окра
Репчатый лук
Апельсины
Org
Орнамент
Папайя
Маракуйя
Горох
Персики
Груши
Горох
Пепинос
Перец Чили
Перец сушеный
Перец
Хурма
Ананас
Сливы
Плуоты
Помело
Картофель
Тыквы
Айва
Редис
Рамбутан
Красный
Ret
Корень
Салак
Сапоте
Лук-шалот
Шпинат
Ростки
Кабачок
Стоунфрут
Танжелос
Мандарины
Помидоры
Tomatillos
Помидоры
Тропики
Трюфель
Клубни
Репа
Кресс-салат
Дикий
Дерево
Специальность по фруктам
Овощи прочие
Разное
Цельные и нарезанные помидоры Russian Plum Lemon (Принт № 9548649).Карточки
Принт в рамке из цельных и нарезанных ломтиков русской сливы с лимоном
Мы рады предложить этот отпечаток в сотрудничестве с Universal Images Group (UIG)
Universal Images Group (UIG) управляет распространением для многих ведущих специализированных агентств по всему миру
© Дорлинг Киндерсли / UIG
Идентификатор носителя 9548649
Слива лимон
вырезать Еда и напитки Свежесть По горизонтали Нет людей Спелый Русская еда Кусочек Студия выстрел Помидор Два объекта Овощной Белый фон Весь Желтый
14 «x 12» (38 x 32 см) Современная рама
Наши современные репродукции в рамке профессионально сделаны и готовы повесить на вашу стену
проверить
Pixel Perfect Guaranteeпроверить
Сделано из высококачественных материаловпроверить
Изображение без кадра 24.4 x 16,2 см (прибл.)check
Профессиональное качество отделкиклетка
Размер продукта 37,6 x 32,5 см (прибл.)Водяной знак не появляется на готовой продукции
Рамка под дерево с принтом 10×8 в держателе для карт. Фотобумага архивного качества. Габаритные внешние размеры 14×12 дюймов (363×325 мм). Задняя стенка из ДВП скреплена скобами и покрыта прочным стирольным пластиком, что обеспечивает практически небьющееся покрытие, напоминающее стекло.Легко чистится влажной тканью. Молдинг шириной 40 мм и толщиной 15 мм. Обратите внимание, что для предотвращения падения бумаги через окошко крепления и предотвращения обрезания оригинального изображения видимый отпечаток может быть немного меньше, чтобы бумага надежно крепилась к оправе без видимой белой окантовки и соответствовала формату. соотношение оригинального произведения искусства.
Код товара dmcs_9548649_80876_736
Фотографическая печать Плакат Печать Пазл Печать в рамке Поздравительные открытки Печать на холсте Фото кружка Художественная печать Коврик для мыши Стеклянная подставка Печать в рамке Установленное фото Премиум обрамление Подушка Сумка Металлический принт Стеклянная рамка Акриловый блок Стеклянные коврики
Категории
> Животные
> Млекопитающие
> Домашняя кошка
> Русский Белый
> Universal Images Group (UIG)
> Еда и напитки
> Вырезать
Полный диапазон художественной печати
Наши стандартные фотоотпечатки (идеально подходят для кадрирования) отправляются в тот же или на следующий рабочий день, а большинство других товаров отправляется на несколько дней позже.
Фотопечать (7,28–145,94 долл. США)
Наши фотопринты напечатаны на прочной бумаге архивного качества для яркого воспроизведения и идеально подходят для кадрирования.
Печать плакатов (16,04–87,56 долларов)
Бумага для плакатов архивного качества, идеально подходит для печати больших изображений
Пазл (40,85–55,45 долларов)
Пазлы — идеальный подарок на любой случай
Печать в рамке (65,66–335,67 долларов США)
Наши современные репродукции в рамке профессионально сделаны и готовы повесить на вашу стену
Поздравительные открытки (8 долларов.71 — 17,50 долл. США)
Поздравительные открытки для дней рождения, свадеб, юбилеев, выпускных, благодарностей и многого другого
Печать на холсте (43,77 — 364,86 долларов)
Профессионально сделанные, готовые к развешиванию Печать на холсте — отличный способ добавить цвет, глубину и текстуру в любое пространство.
Фотокружка (14,58 $)
Наслаждайтесь любимым напитком из кружки, украшенной любимым изображением. Сентиментальные и практичные персонализированные фотокружки станут идеальным подарком для близких, друзей или коллег по работе
Fine Art Print (43 доллара.77 — 583,79 долл. США)
Наши репродукции репродукций изобразительного искусства соответствуют стандартам самых критичных музейных хранителей. Это лучшее, что можно было бы сделать после оригинальных произведений искусства с мягкой текстурированной естественной поверхностью.
Коврик для мыши (20,42 доллара США)
Фотопечать архивного качества на прочном коврике для мыши с нескользящей подложкой. Работает со всеми компьютерными мышками.
Glass Coaster (11,66 долларов США)
Индивидуальная стеклянная подставка под столешницу. Элегантное полированное безопасное закаленное стекло и подходящие термостойкие коврики также доступны
Печать в рамке (65 долларов.66 — 364,86 долл. США)
Наш оригинальный ассортимент британских принтов в рамке со скошенным краем
Фото (18,96–189,72 долларов)
Фотопринты поставляются в держателе для карт с индивидуальным вырезом, готовом к обрамлению
Premium Framing (131,34 — 423,24 доллара)
Наши превосходные фоторамки премиум-класса профессионально изготовлены и готовы повесить на вашу стену
Подушка (36,47 — 65,66 долларов)
Украсьте свое пространство декоративными мягкими подушками
Большая сумка (43 доллара.71)
Наши сумки-тоут изготовлены из мягкой прочной ткани и оснащены ремнем для удобной переноски.
Metal Print (86,11 — 582,34 доллара)
Изготовленные из прочного металла и роскошной техники печати, металлические принты оживляют изображения и добавляют современный вид любому помещению.
Glass Frame (33,55 — 100,71 долларов)
Крепления из закаленного стекла
идеально подходят для настенного дисплея, а меньшие размеры также можно использовать отдельно с помощью встроенной подставки.
Acrylic Blox (43 долл.77 — 72,96 долл. США)
Обтекаемая, современная односторонняя привлекательная настольная печать
Стеклянные коврики (72,96 $)
Набор из 4 стеклянных ковриков. Элегантное полированное безопасное стекло и термостойкое. Также доступны подходящие подстаканники
Келси Плам выиграла золотую медаль в баскетболе 3×3
ТОКИО —Келси Плам продолжала тянуться и касаться золотой медали на шее, растирая ее между пальцами, просто проверяя, что она все еще на месте.
Иногда она переворачивала его в руке и смотрела то на одну сторону, то на другую.
Да, это было реально. Да, это происходило.
Слива мечтала однажды выиграть золотую медаль в баскетболе для Соединенных Штатов. Этого просто не было в новом олимпийском спорте 3-на-3 или 3×3, как его официально называют, и это не было большой мечтой в июне прошлого года после того, как она получила травму ахиллова сухожилия, которая обычно занимает год или год. больше, чтобы полностью вылечить.
Но она была там в четверг, помогая команде с США на груди одержать 18-15 победы над Россией в финале 3×3 на открытом корте под брезентовой крышей в парке Aomi Urban Sports Park и завоевав первую золотую медаль этих Игр. спортсмен со связями в Сан-Диего.
«Я думал, что это не для меня, когда я порвал свой ахиллес», — сказал Плам. «Я просто очень благодарен и счастлив за возможность. Баскетбол США не остановился на мне. Они могли взять кого-нибудь еще, но они этого не сделали. Я просто супер благодарен.
«На данный момент это, вероятно, занимает первое место в моем списке (карьерных достижений)».
И это, кстати, целый список. Слива, которая выросла в Поуэе, выиграла несколько титулов в секциях и штатах на Дне страны Ла-Холья.Она стала лидером по количеству набранных очков NCAA в Вашингтоне и набирала в среднем 31,7 балла в качестве старшей команды. Она была выбрана №1 в драфте WNBA в 2017 году. Она выиграла чемпионат мира с командой США по традиционному баскетболу в 2018 году.
Но золотая медаль, как правило, оказывает такое влияние на людей, даже если это новый вид спорта, который сторонники баскетбола еще не полностью приняли, с его 12-секундным таймером для бросков, синим и желтым мячом, постоянно играющей музыкой и непрерывным действием, которое Мировой руководящий орган спорта признает, что призван привлечь внимание молодого поколения к тому, что он «легко перекусит».
Товарищ по команде Аллиша Грей, которая выиграла титул NCAA в Южной Каролине и стала новичком года WNBA, выразилась так: «Золотая медаль — это как высший уровень в моей карьере. Я думаю, что единственное, что может превзойти это, — это выиграть еще одну золотую медаль. Не думаю, что какое-либо другое достижение в моей карьере превзошло бы эту золотую медаль. Золотая медаль находится на самом верху ».
Слива начала восстанавливаться сразу после операции и смогла посетить предолимпийский лагерь в Южной Каролине в феврале, несмотря на то, что ее не допустили к полной активности.Она не была полностью допущена к игре, но Кара Лоусон, женский тренер герцога, курирующая программу USA Basketball 3×3, увидела достаточно.
«Она собиралась приложить немало усилий, чтобы вернуться, но это было возможно с точки зрения графика», — сказал Лоусон. «С каждым последующим лагерем она становилась все лучше и лучше. Она очень конкурентоспособна, и у нее высокий уровень дисциплины в своем стремлении к совершенству, от питания до тренировок, изучения игры и всего, что с ней связано.
«Она тоже очень умелая.Это нам очень помогло. Но больше всего на свете она просто конкурентка ».
Плам и три ее товарища по команде (вы получаете одну замену) проиграли только один раз в девяти играх, 20–18 против принимающей страны Японии в финальной игре в пул после того, как уже попали в полуфинал. В полуфинале они обыграли Францию 18-16, а через четыре часа в финале — Россию. Плам набрал 11 очков между двумя играми и показал восемь «лучших моментов» в команде, причудливый показатель, который сохраняется 3×3.
Одно из отличий от игры 5 на 5 — это свистки или их отсутствие.Идея состоит в том, чтобы действие продолжалось, а судьи склонны не обращать внимания на вещи. Типа, много всего.
Но если вас все-таки назовут за фолы, накопление может привести к штрафным санкциям, как выяснила Россия. Внутри дуги периметра есть одноочковые корзины, а за ее пределами — двухочковые корзины, а командам предоставляется два штрафных броска, когда их противник получает семь общих фолов. Это эквивалентно назначению четырех штрафных бросков при игре 5 на 5.
После 10 командных фолов вы получаете два штрафных броска и мяч.У России было семь очков в середине игры и закончилось 10.
«Россия — это физическая команда», — сказала американский центровой ростом 6 футов 5 дюймов Стефани Долсон. «Мы знали, что они будут физическими, и просто пытались использовать это против них».
Результат: американцы исполнили 11 штрафных бросков и реализовали восемь. Россия — 0 из 0.
Ольгу Фролкину спросили, получила ли ее команда плохой свисток.
«Нет, все было в порядке», — сказала она в переводе с русского. «Судьи, они тоже люди.Если они чего-то не увидели, это не трагедия. Мы потерялись.»
Плам, Долсон, Грей и Кэти Лу Самуэльсон играли вместе почти два года, чтобы изучить нюансы 3х3 и пройти квалификацию в Токио, чего не могла сделать гораздо менее титулованная американская мужская команда. Затем на прошлой неделе Самуэльсон дал положительный результат на COVID-19, несмотря на то, что она сказала, что была полностью вакцинирована, а остальные трое уехали в Японию без нее.
Джеки Янг, напарник Сливы по команде «Лас-Вегас Эйсес» WNBA, две субботы назад отдыхал во Флориде.
«Я просто расслаблялся», — сказал Янг. «Мне позвонили наугад в 22:30. и я подумал: «Позвольте мне ответить на этот вопрос». Они были такими: «Вы готовы сыграть 3 на 3?» Это безумие, чтобы об этом думать. Десять дней назад я был в отпуске. Моя жизнь так изменилась. Теперь я золотой медалист ».
РАУНДАП ОЛИМПИАДЫ: Россия — командный зачет | Американцы переезжают на
МУЖСКАЯ ГИМНАСТИКА
Россия — командный зачет
Долгое восхождение России к вершинам мужской олимпийской гимнастики завершено.Команда, представляющая Олимпийский комитет России, продемонстрировала замечательные выступления Артура Далалояна и Никиты Нагорного, обогнав Японию и Китай в финале мужской сборной команды. Победа стала первым олимпийским титулом для россиян с 1996 года в Атланте. Общий результат сборной России 262 500, достигнутое благодаря твердому рулю Нагорного, установленному с победой на кону, было как раз достаточно, чтобы удержать две другие суперспособности в этом виде спорта. Япония использовала блестящую программу Дайки Хасимото на высоких перекладинах в последнем ротации, обогнав Китай и заняв второе место с результатом 262.397. Китайцы были недовольны падением Линь Чаопаня во время вольного упражнения во время первого вращения. Им пришлось весь вечер играть в догонялки. Спустившись более чем на 3,3 балла в середине матча, им удалось оторваться от россиян, прежде чем пара брейков формы на высокой перекладине в финальной ротации стоила им броска на вершину пьедестала почета. Три команды провели последние пять лет в перетягивании каната на вершине спорта. Японец выиграл золото на Олимпиаде 2016 года в Бразилии. Китайцы обошли Россию на чемпионате мира 2018 года, а россияне вернули ей пользу в 2019 году.Великобритания заняла четвертое место. Похоже, что США были готовы занять четвертое место перед грязными вольными упражнениями в финальной ротации, единственной реальной ошибкой в итоговой встрече трехкратного олимпийского спортсмена Сэма Микулака перед уходом из турнира.
ЖЕНСКИЙ ТРИАТЛОН
Первое золото для Бермудских островов
Флора Даффи выиграла олимпийский триатлон среди женщин, завоевав первую золотую олимпийскую медаль Бермудских островов и первую медаль любого вида с 1976 года.Даффи — двукратный бывший чемпион мира по триатлону. Она участвует в своих четвертых Олимпийских играх и является одной из двух спортсменок, представляющих Бермудские острова в Токио. Старт гонки был отложен на 15 минут из-за шторма в районе Токийского залива. Даффи закинула руки над головой, завершив курс плавания, езды на велосипеде и бега за 1 час 55:36 минут. 33-летняя Даффи ни разу не финишировала выше восьмой в своих трех предыдущих олимпийских триатлонах. Бермудские острова не получали медалей на Олимпийских играх с тех пор, как боксер Кларенс Хилл завоевал бронзу в тяжелом весе в Монреале.Британка Джорджия Тейлор-Браун завоевала серебряную медаль, а американка Кэти Заферес — бронзу.
ВОЛЕЙБОЛ ЖЕНСКИЙ ПЛЯЖНЫЙ
Американцы переезжают на
Американская «A-Team» Эйприл Росс и Аликс Клайнман гарантировали себе как минимум еще один матч по пляжному волейболу на Олимпийских играх в Токио. Американские женщины обыграли Испанию 21-13, 21-16, вторую победу подряд. С оставшейся еще одной игрой в предварительных матчах они могут сыграть не хуже, чем трехсторонняя ничья для первой, которая была бы нарушена во время матча «удачливый проигравший» после кругового турнира.Росс, трехкратный олимпиец, уже завоевавший серебро и бронзу, и новичок Клайнман сыграют в пятницу с голландской командой Санне Кейзер и Мадлен Меппелинк.
[ОЛИМПИАДА: Будьте в курсе последних расписаний, результатов + медали »arkansasonline.com/21olympics/]
СЕРФИНГ
Женщины США в полуфинале
бразильских мужчин и американок возглавляют заключительный день соревнований по серфингу, которые дебютируют на Олимпийских играх.После четвертьфинала бразильцы Габриэль Медина и Итало Феррейра встретятся с героем родного города Каноа Игараси из Японии и австралийцем Оуэном Райтом соответственно. В женской игре чемпионка США Карисса Мур и японка Амуро Цузуки встретятся в полуфинале. Молодой американский феномен Кэролайн Маркс выступит против Бьянки Буйтендаг из Южной Африки. Мур, кажется, наконец-то нашла опору после первых двух дней борьбы за то, чтобы найти импульс в скромном пляжном отдыхе, в отличие от больших волн дома на Гавайях.Финал состоится сегодня, если позволит погода.
БАСКЕТБОЛ ЖЕНСКИЙ 3×3
Plum Hit победитель игры
Американские женщины выиграли все шесть игр за первые три дня дебюта баскетбола 3 на 3 на Олимпийских играх. Келси Плам, которая в прошлом сезоне работала ассистентом выпускника женской баскетбольной команды Университета Арканзаса, оказалась за дугой благодаря двухочковой победе над Китаем со счетом 21–19. Американцы.США будут лидером в полуфиналах и играх за медали в среду. Сербия — единственная непобежденная команда среди мужчин. Удары изнутри дуги приносят одно очко, а выстрелы из-за пределов дуги — два в игре 3 на 3. В этом случае победа достается команде, идущей впереди. Американцы не прошли квалификацию на турнир из восьми команд.
ТЯЖЕЛАЯ АТЛЕТИКА
Ожидается воссоединение семьи
От бамбукового шеста до олимпийского золота — тяжелая подготовка тяжелоатлетки Хидилин Диас к Играм в Токио завершилась на верхней ступеньке пьедестала почета.Диас выиграла первую золотую медаль для Филиппин, что является триумфальным результатом для страны, которая участвовала на всех летних Олимпийских играх, кроме одной с 1924 года. Диас, которая расстроила рекордсменку мира Ляо Цююнь из Китая своим заключительным упражнением, тренировалась в Малайзии, когда Разразилась пандемия коронавируса, и она довольно долго была разлучена со своей семьей. «Я с нетерпением жду возможности вернуться домой на Филиппины и побыть со своей семьей, потому что я очень скучаю по ним», — сказал Диас. «Я с нетерпением жду возможности наслаждаться жизнью, потому что я нахожусь в Малайзии почти три года, поэтому я действительно благодарен за то, что теперь могу пойти домой и отпраздновать это с семьей.«Диас — четырехкратная олимпийская чемпионка, несшая флаг своей страны на церемонии открытия Игр в Лондоне в 2012 году и выигравшая серебряную медаль на Играх в Рио-де-Жанейро в 2016 году.« Это сбывшаяся мечта », — сказал Диас. говорят, что мы, филиппинцы, сильные. Мы, филиппинцы, можем соревноваться здесь, на Олимпийских играх. Мы можем сделать это. Всем молодому поколению на Филиппинах, пожалуйста, мечтайте о высоком. Вот как я начал. Я мечтал о высоком, и, наконец, я смог это сделать ». Диас, имеющий звание сержанта ВВС Филиппин, салютовал на трибуне.Она также сказала, что ее вера сыграла большую роль в победе, которую она назвала «чудом».
Никита Нагорный из Олимпийского комитета России празднует победу, завоевав золотую медаль в финале мужских команд среди артистов на летних Олимпийских играх 2020 года, в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио. (AP Photo / Эшли Лэндис)
ФАЙЛ — Никита Нагорный из России выступает на кольцах в финале мужского многоборья на чемпионате мира по гимнастике в Штутгарте, Германия, в эту пятницу, октябрь.11 января 2019 г., фото из архива. Россия, Китай и потенциально принимающая Япония претендуют на то, чтобы сразиться за вершину пьедестала почета в командном зачете на Играх в Токио. Нагорный, абсолютный чемпион мира 2019 года, лидирует в мужском многоборье. (AP Photo / Matthias Schrader, файл)
Представитель Олимпийского комитета России Артур Далалоян выступает на перекладине во время финала мужских командных артистов на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио. (AP Photo / Эшли Лэндис)
Представитель Олимпийского комитета России Артур Далалоян выступает на брусьях в финале мужских команд по спортивной гимнастике на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио, Япония.(AP Photo / Джефф Роберсон)
Дайки Хасимото из Японии празднует свое выступление на перекладине во время финала мужской команды артистов на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио. (AP Photo / Наташа Писаренко)
Дайки Хасимото из Японии празднует свое выступление на перекладине во время финала мужской команды артистов на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио. (AP Photo / Наташа Писаренко)
Сунь Вэй из Китая выступает на брусьях в финале мужских команд артистов на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио.(AP Photo / Наташа Писаренко)
Мужская сборная Китая по спортивной гимнастике Линь Чаопань, Сунь Вэй, Сяо Руотэн и Цзоу Цзинюань празднуют победу в бронзовой медали на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио. (AP Photo / Наташа Писаренко)
Самуэль Микулак из США выступает на брусьях во время финала мужских командных артистов на летних Олимпийских играх 2020 года в понедельник, 26 июля 2021 года, в Токио.