Сосудистый бактериоз у фиалок: как лечить и спасать фиалки в жару

Содержание

Бактериоз у фиалок

Что я знаю про бактериоз. Антибактериозная проповедь.

Автор статьи Шевченко Татьяна

http://users.livejournal.com/nikol_/129547.html

 

Мне очень жаль людей, у которых сейчас погибают фиалки.
и сами фиалки тоже жалко, потому что им достались недостаточно информированные хозяева, которые не уберегли их от летнего бактериоза.

к сожалению, посреди лета, в разгар жары фиалкам помочь уже нельзя, но можно помочь фиалководам подготовиться к лету
поэтому я тут вот напишу все, что сама знаю про выживание фиалок в жару, потому что на следующий год этот кошмар все равно повторится, а предупрежден — значит вооружен.

почему я так нахально берусь советовать что-то про бактериоз и меры его предупреждения?

людей, выращивающих фиалки, можно очень условно и приблизительно разделить на две группы:

первая — те, у кого каждый год летом эта ненормальная жара далеко за 30, когда люди сами еле живы.

эти поставили себе кондиционер и летом без него жизни не представляют (и я их понимаю).

вторая — те, у которых летом не бывает экстрима, когда за окном 40, они живут, например, в Москве, где летом 23-28 (кажется), и фиалки у них летом растут и цветут.
а кондиционер вещь небесплатная, и поскольку необходимость в нем слишком эпизодическая, его и не ставят.

первые мало сталкиваются с бактериозом, потому что кондиционер, а вторые — потому что жары нет.

а меня нельзя отнести ни к тем, ни к другим — жара под 40 у меня есть (ежегодно), а кондиционера — нет.
поэтому я хорошо знакома с бактериозом, каждый год встречаю старого знакомого бурчанием «ну вот, опять приперся…» и накопила некоторый опыт борьбы.

что же такое бактериоз с точки зрения меня — зачитанного фиалочника, но ни разу не биолога?

для начала — использование фиалочниками термина «бактериоз» довольно условно — никто из нас толком не знает, что именно губит фиалки летом в жару, все читали форумы с предположениями и слышали это слово, симптомы совпадают с тем, что видим на своих растениях, вот и используем.

внешние признаки бактериоза:
на разных частях растения (на листовых пластинках, черешках, стволе) появляются полупрозрачные коричневатые пятна, листья (начиная с нижних) темнеют, превращаются в кисель и погибают.
процесс проходит быстро, иногда достаточно пары дней, иногда чуть дольше (месяц), тогда за это время жара может спасть и растение спасается.
начинается бактериоз при температуре примерно в 30 градусов, и чем выше температура, тем чаще появляется и быстрее протекает.

 

начинаться он может так:

 

 

а потом выглядит он примерно так:

 

 

или так:

 

 

бывает еще по-другому, но у меня других фотографий нет.

а теперь главное — бактериоз всегда вторичен.
это значит, что это процесс разложения бактериями уже поврежденных тканей растения — какой-то патологический процесс губит фиалки и стрепсы, и на их похороны пришли стервятники-бактерии и у них застолье по этому поводу.
насколько я знаю, обжигает сосуды аммиак, который в повышенных дозах накапливается в сосудах во время жары и не выводится из растения нормальным образом.

с бактериозом первый раз сталкиваются, вернувшись, скажем, с дачи, куда ездили «на недельку».
быстрее всего повреждаются растения, которые были, мягко говоря, не в идеальном состоянии — давно непересаженные, иногда пересыхающие, иногда залитые, иногда слегка пересвеченные на летнем подоконнике, в великоватых горшках, с недостаточных дренажом, со слишком маленьким отверстием в горшке для стока воды и аэрации (нужное подчеркнуть).
т.е. быстрее всего повреждаются растения с так называемыми ошибками агротехники.

в обычных условиях, при нормальной температуре (19-25) растению хватает защитных сил справиться с этим, но при температуре выше — уже нет.

при повышенной температуре воздуха (как и при других неблагоприятных обстоятельствах) растение находится в состоянии стресса: оно останавливается в развитии, перестраивает внутренние процессы и замирает до нормализации внешних условий.

(кстати, если ваше растение (безотносительно к бактериозу и жаре) остановилось в развитии и «что-то совсем не растет» — это явный признак того, что у него стресс и нужно срочно менять агротехнику: землю, воду, свет, температуру, влажность).

почему я вообще об этом сейчас говорю.
потому что за несколько лет выращивания фиалок, регулярных свиданий с бактериозом, выбрасывания и оплакивания любимых розеток, деток и посаженных листьев я поняла, что:

1) методов лечения бактериоза я не знаю, предлагаемые в сети способы умозрительны и результатов не дают, некоторые из них я даже проверить не могу;

2) те мои фиалки, у которых достаточно защитных сил, которые молодые, здоровые, посажены в свежую землю, за которую они успели хорошо ухватиться корнями, фиалки, которые я не пересушивала и не заливала, которые не болеют и их не едят вредители — у них максимально сильный иммунитет против того, что мы называем летним бактериозом.

3) если я не приму мер для предотвращения бактериоза, то на очередную осеннюю выставку я опять повезу еле очухавшиеся фиалки, за которые мне будет стыдно, и даже если начинающие посетители розеток не заметят и будут в восторге от цветов, то мне будет стыдно перед коллегами.

поэтому я начала принимать меры.
и несмотря на то, что звучат они как «мойте руки перед едой» или как набившее оскомину «болезнь легче предупредить, чем лечить», я их все-таки озвучу, может быть они принесут пользу на будущий год.

1. не держите в коллекции старые растения. от любимой розетки можно посадить лист, он даст деток и молодое растение станет взрослым раньше, чем вы вычухаете полуживую старую розетку, которая если и будет красивой и здоровой, то очень нескоро. у меня они приходили в норму аж через год. оно вам надо, возиться с полудохлым старым несчастьем, когда за это время можно вырастить молодое сильное новое растение?

2. загодя, примерно в мае-начале июня, пересадите все свои фиалки в свежий субстрат в оптимальные горшки (диаметр по отношению к диаметру кроны 1/3) с большим количеством отверстий в днище и в хорошим дренажом. до июльской жары они хорошо пойдут в рост и освоят земляной ком новыми корнями.

3. даже если вы не пользуетесь фитильным поливом, при посадке не поленитесь и заведите в горшок синтетический шнурок или пресловутый колготочный фитиль. когда вдруг в жару обнаружится необходимость срочниссимо уехать, а оставить фиалки хоть тресни не на кого, у вас уже будет готов план Б и останется только подобрать емкости, на которые вы установите фиалки.

4. сажая деток в пластиковые стаканчики, положите на дно дренаж и заведите в субстрат фитилек из толстой капроновой нитки типа как для прошивки обуви. мешать он никому не будет, поливайте себе сверху, как привыкли, но в экстремальной ситуации, когда детки достаточно большие, лакают воду как ненормальные и когда поливать их нужно два раза в день, этот фитилек сбережет вам много нервов и времени, потому что на время отъезда вы можете налить в поддоны побольше воды и накрыть деток пленкой — вода будет ниже уровня субстрата и по фитилю детки будут брать воду, пока вы не вернетесь.

5. отдельные сорта более чувствительны к высоким температурам, чем остальные и требуют более бережного отношения. лучше, чем эвакуировать эти розетки к подружке, у которой кондиционер, я ничего не придумала. к счастью, подружка сама коллекционер, а фиалки мои на фитиле — я за них не переживала и они прекрасно пережили у нее жару..

6. самые чувствительные к бактериозу — пестролистники.

я полагаю, потому, что пестролистность сама по себе, собственно говоря, заболевание для растения, недостаток хлорофилла, который мы считаем красивым. но с точки зрения растения это генетическое заболевание, которое снижает устойчивость к повреждающим факторам. пестролистники нужно защищить первыми. если есть возможность, их лучше перенести в другое помещение — в друзьям/соседям/родственникам, у которых есть кондиционер.

7. обработка Эпином и другими иммуномодуляторами тоже очень даже имеет смысл. Эпин — это физиологически активное вещество, стероид, который сдерживает рост и повышает защитные силы растения.
обрабатывать Эпином нужно перед ожидающимся стрессом — когда вот-вот будет жара или отъезд на дачу, во время которого земля может пересохнуть, корни, следовательно, отомрут, и эти погибшие корни начнут жевать бактерии, которые будут разноситься по сосудистой системе всего растения, что мы и обнаружим, как темные мокнущие пятна на листьях — наш «любимый» летний бактериоз.

8. заклеенные фольгой окна снижают температуру в помещении. включение ламп только на 5 часов и только по ночам тоже снижает.

9. после летней жары я считаю необходимой полную пересадку растения. продукты обмена выводятся как через листья, так и через почву, поэтому легко представить, что находится в субстрате после того, как растение страдало от бактериоза.

10. а, еще я поливала фиалки Триходермином.
один раз за время жары.
не знаю, было ли это нужно, но я рассуждала, что хуже он не сделает, оздоровление почвы произойдет, авось и на иммунитет это повлияет.
обрывание бутонов также имело место, хотя образовывалось их крайне мало, фиалки просто замерли.

в общем, в этом году я готовилась к летней жаре, как к неизбежной войне.
я в конце мая пересадила фиалки в хороший субстрат.
установила 10-часовое освещение (этого достаточно), а в самую жару — 5-часовое ночью. в августе половина фиалок стояла на полу, ходить было реально негде, но на полках под потолком температура на несколько градусов выше.

очень внимательно следила, чтобы ни в коем случае не пересыхал субстрат у деток, которые не на фитильных емкостях и чтобы не заканчивалась вода у взрослых розеток.

две розетки таки сдохли.
я сама виновата. одна была старая и чахлая, а я задвигала ее в угол стеллажа, махнув рукой, а, потом разберусь, все равно дубликат есть. пересушила 🙁 ну, вот она и сдохла.
вторая погибла оттого, что горшок провалился в емкость с водой, а я не заметила, что ком был погружен в воду неделю!
земля так воняла… фу.
да, я ворона, не увидела 🙁
фиалку жалко, она была молодая и красивая, и сорт любимый.
но детка осталась!

наверное, есть и какие-то другие способы предохранения от бактериоза — всем будет только польза, если ими поделятся те, кто проверил эти способы на практике.
я рекомендую то, что сама опробовала на своих фиалках.

сейчас на всех форумах стоит плач о погибших фиалках.
ничего не хочу заранее говорить, еще жары впереди столько, что дай Бог моим фиалкам ее пережить, сейчас на улице +40, могу сфотографировать градусник в тени.
а у меня бактериоза пока.
я ничего не говорю! я говорю только «у меня бактериоза пока».
ТТТ!!!
а то мало ли.

UPD
что можно сказать про бактериоз уже после спада жары.
профилактические меры до определенной степени себя оправдали.
но устойчивость фиалок против высоких температур имеет свои пределы. против лома нет приема — можно всякими способами защищать фиалку от перегрева, но если вынести ее на пляж и поставить в горячий песок под прямые лучи — она погибнет, включай на нее вентилятор или не включай, опрыскивай вокруг воздух или не делай ничего. это я, конечно, образно.

но почти целый месяц погоды +38…+42, когда в комнате на стеллаже +33, фиалки пережили. а вот к концу месяца они стали явно сдавать, запас прочности закончился. начали повреждаться даже самые «защищенные» хорошим уходом фиалки, они лишались нижних листьев.

пока ничего не могу сказать о подкормках летом. по моим наблюдениям, летние подкормки разведенным коровяком хорошо сказались на стандартах! я ожидала обратного. а вот на слабых, уже немного пострадавших растениях (в основном на полумини-трейлерах) подкормки сказались отрицательно, появились специфические повреждения на ярусах листьев.

общий вывод — качественная агротехника все-таки реально защищает растения и пренебрегать ею нельзя.

 

Автор статьи Шевченко Татьяна

http://users.livejournal.com/nikol_/129547.html

 

Сосудистый бактериоз у фиалок

Сосудистый бактериоз у фиалок активно начинает развиваться с наступлением жары, и в первую очередь поражает цветы, в той или иной степени страдающие от неправильной агротехники, поэтому, чтобы не допустить мгновенного развития сосудистого бактериоза, в помещении, где расположены фиалки, нельзя допускать температуру выше 300 С, плюс к этому, требуется соблюдение определенных мер по уходу за цветами.

  Причины, вызывающие самое коварное заболевание фиалок – сосудистый бактериоз

В основном, все начинается с корней фиалки, причина дальнейшего развития заболевания кроется именно там, а сосудистый бактериоз – это уже вторичное явление:

  •  при наступающей жаре в растении увеличивается отложение аммиака, его повышенные дозы обжигают сосуды фиалки;
  •  вывод лишнего аммиака через листья нормальным образом невозможен из-за ослабленных тканей листа, происходит их самоотравление;
  •  при переувлажненной почве аэрация нарушается, корневой системе нет возможности свободно дышать, вследствие чего она загнивает;
  •  на ослабленные ткани листьев нападают болезнетворные микроорганизмы, забивающие сосуды;
  •  выступающие на листьях капельки воды наряду с нехваткой фосфорных и калийных также способствуют развитию сосудистого бактериоза у фиалок.                                                                                                                            

На черешках фиалок, листовых пластинах или стволах начинают появляться  коричневые пятна, водянистые и полупрозрачные, очерченные кромкой желтоватого или светло-зеленого цвета, постепенно становящиеся черными. Листья постепенно темнеют, стекленеют, становятся осклизлыми и отмирают. Подобными пятнышками охватывается все растение, и оно неминуемо погибает.

  Какими методами можно бороться с сосудистым бактериозом фиалок

Понятно, что здоровому, правильно развивающемуся растению, легче перенести неблагоприятные условия. Значит, усилия цветовода должны быть направлены на создание микроклимата, благоприятствующего тому, чтобы растение перенесло жару и не погибло:

  1. В апреле-мае пересадить растения в легкий питательный субстрат, чтобы до наступления жары они успели хорошо укорениться. Горшок должен быть с несколькими дренажными отверстиями, его диаметр выбирается в соотношении 1/3 к диаметру кроны.                                                                                                                                                      
  2. Все фиалки осматривают, чтобы отыскать подозрительные и слабые, при необходимости их омолаживают, удаляя все поврежденные или отмершие корешки.   
  3. Во время пересадки стоит завести в горшок шнур для фитильного полива, он пригодится, когда в жаркое время года придется срочно уехать, а за цветами ухаживать некому.
  4. Не стоит увлекаться подкормками, избыток которых забивает сосуды корневой системы, этим нарушается циркуляция влаги в корнях.
  5. Нельзя допускать уплотнения грунта, в котором растут фиалки, слежавшийся субстрат плохо пропускает к корням воздух, они начинают закисать, что способствует развитию сосудистого бактериоза.
  6. Если в жару наблюдается потеря листьями тургора, не надо торопиться обильно поливать цветы, после такого «ухода» корневая система захлебывается от воды и отмирает. Следует также избегать полива фиалок холодной водой.  
  7. Чтобы не допускать накопления в грунте большого количества растительных остатков, через 6 месяцев цветы снова нужно пересадить в новый грунт.
  8. Неплохой положительный эффект оказывает обработка фиалок препаратами «Эпин», «Циркон», эти стимуляторы и регуляторы роста укрепляют растения, служат хорошим средством для профилактики гнилей.                                          

Если условия, приводящие к сосудистому бактериозу у фиалок, будут минимизированы, показатель пораженных растений значительно уменьшится.

Рекомендуем почитать следующие материалы:

Сосудистый бактериоз — fialok-mir.rufialok-mir.ru

Почти на всех форумах и в фиалочных группах соцсетей часто обсуждаются вопросы, что случилось с листьями фиалок. И в большинстве случаев речь идет о таком неприятном заболевании как сосудистый бактериоз. Сосудистый бактериоз – что же это такое? Давайте обсудим причины возникновения и меры борьбы с проблемой под названием сосудистый бактериоз.

Ответить точно, как возникает эта болезнь, не возьмусь, но могу предположить, что почти всегда она будет следствием проблем корневой системы. Самое плохое – сосудистый бактериоз развивается практически мгновенно. Точнее, мы замечаем неблагополучие слишком поздно, когда, зачастую, невозможно спасти даже несколько черенков для укоренения. И утешительный момент тут только один: болезнь не передается соседним растениям.

 

Внешние проявления заболевания заключаются в том, что на разных частях растения появляются полупрозрачные водянистые коричневые пятна, которые быстро охватывают всю фиалку, и она погибает. Обычно повреждение начинается с нижних листьев. Часто процесс длится всего пару дней.

Итак, причины возникновения сосудистого бактериоза, и все они, как увидим, связаны с состоянием корневой системы:

  1. Высокие температура и влажность. Немногие из нас после аномальной жары летом 2010 года обошлись без потерь. Мне тогда практически заново пришлось восстанавливать коллекцию. Хорошо еще, что не сталкиваясь раньше с этим заболеванием, я чисто инстинктивно стала переукоренять розетки (их тоже немало погибло – момент был не самый подходящий для такого стресса) и ставить на укоренение черенки.
  2. Охлаждение земляного кома. Характерно для цветов на подоконнике в зимний период или при поливе холодной водой.
  3. Слишком плотный грунт и накопление растительных остатков. При этом нарушается воздухообмен, развиваются процессы гниения.
  4. Чрезмерное увлечение удобрениями. Корневая система перестает справляться и не обеспечивает должный обмен веществ.

Меры борьбы с сосудистым бактериозом, в основном, профилактические. Прежде всего, необходимо соблюдение агротехники. Желательно раз в 6-8 месяцев пересаживать фиалки. При пересадке следует внимательно осматривать корни и удалять отмершие. Проводить профилактические обработки фунгицидом (например, фитоспорином), особенно в летний период. В стрессовых условиях (жара, ремонт да и просто пересадка) применять препарат эпин. И самое главное, при любом нетипичном виде розетки сразу же пересадить ее, отделив несколько черенков для размножения, или переукоренить, если при осмотре корни показались подозрительными. В большинстве случаев это поможет решить проблему.

Очень надеюсь, что в преддверии наступления лета моя статья поможет вам без потерь пережить даже самую страшную жару. Делитесь информацией с друзьями.

Еще больше информации:

обзор и методы лечения в домашних условиях

Комнатные фиалки – это красивые миниатюрны цветочки, которые выращивает большинство цветоводов. Однако и с этими прелестными цветами возникают проблемы, поскольку они подвержены различными заболеваниям и пагубному воздействию разнообразных вредителей. В этой статье мы расскажем про болезни фиалок и способы избавления от недугов.

Инфекционные болезни

Инфекционные заболевания фиалок – явление довольно распространенное, поскольку у этих цветочков низкая сопротивляемость к различного рода грибкам. Такими болезнями цветочки могут заболеть вследствие плохих условий содержания, поэтому покупая сенполию, нужно внимательно изучить все вопросы, связанные с уходом. Ведь лечение цветка при подобных болезнях – нелегкая задача. Итак, перечислим основные заболевания и методы их лечения.

Мучнистая роса

Пожалуй, одно из наиболее распространенных заболеваний, которым подвергается комнатное растение. Не обошло оно стороной и фиалочки. Характерным признаком наличия у вашей сенполии этого заболевания – белый налет на листьях. Может даже показаться, что листики цветка обсыпаны мукой. Мучнистая роса относится к грибковым заболеваниям, которое чаще всего поражает растения, ослабленные после пересадки.
Чтобы подобное заболевание не потревожило ваш цветник, обеспечьте растениям должный уход, а также внимательно следите за температурным режимом и количеством влаги. Если же заражение уже произошло, рекомендуют воспользоваться препаратами против грибка. В домашних условиях можно попытаться вылечить болезнь серой, припудрив ею листики, а после накрыв цветок полиэтиленовым пакетом.

Фузариоз

Является крайне опасным грибковым заболеванием, которое способно серьезно повредить корневую систему сенполий. Грибок проникает в молодые корешки и провоцирует их гниение. В результате корни и стебли растения могут полностью загнить, если фиалочка заболеет этой болезнью. Признаком, по которому можно распознать фузариоз, являются бурые пятнышки, которые начинают появляться на черенках вашего растения. После этого листья на фиалке опадают, а корневая система приобретает черный цвет.

В борьбе с этим недугом помогут фунгициды, которыми следует обработать болеющие цветочки. Все поврежденные части удаляют, им уже нельзя никак помочь. Если поражена была большая часть растения, в лечении также нет смысла, нужно немедленно от него избавиться.

Фитофтороз

Еще одно грибковое заболевание, возбудитель которого может проникнуть либо через корневую систему, либо через ранки, полученные вследствие механических повреждений. Характерным признаком болезни являются бурые пятна, в больших количествах появляющиеся на листьях цветка. Чаще всего болеют фитофторозом ослабленные сенполии.

К сожалению, лечения фитофтороза не существует. Максимум, что вы можете сделать – выкинуть пораженные растения и тщательно промыть горшки, чтобы препятствовать распространению болезни. А вот избежать недуга поможет должный уход, в котором особое внимание необходимо уделять проветриванию помещения.

Серая гниль

Относится к болезням фиалок, которые очень быстро распространяются и уничтожают растение. Следствием такого заболевания является серый налет на сенполии, который провоцирует быстрое гниение тканей. Когда процесс заходит слишком далеко, фиалку уже не спасти.

Если вы заметили, что цветочек болеет, на ранних стадиях можно попытаться принять меры борьбы с недугом и лечить цветок. Для того чтобы бороться с болезнью, необходимо обработать растение фунгицидами. Все зараженные части нужно незамедлительно удалить, а если вы избавляетесь и от самого растения, выбрасывайте его вместе с землей, в которой оно росло.

В уходе за комнатной фиалкой соблюдайте температурный режим и режим полива, чтобы избежать серой гнили. 

Ржавчина

Грибковая зараза, которая выглядит так, словно на листьях появились ржавые пятна. Иногда можно спутать эту болезнь с кальцитным ожогом. Когда фиалка больна ржавчиной, сверху листовую часть покрывают оранжевые пятна, а снизу можно увидеть выпуклости. Спустя некоторое время эти выпуклости-подушечки трескаются, и оттуда выходят споры гриба-возбудителя. Стоит заметить, что этой болезнью фиалки редко страдают, это скорее исключение, чем правило.

Лечение проводят на дому, используя фунгициды, бордоскую смесь или серную пыль.

Сосудистый бактериоз

Частый «гость» цветника в жаркий период. Заметить сосудистый бактериоз легко: на нижних листиках цветка появляется слизь, а спустя непродолжительное время они умирают.

Борьбу с заболеванием проводят с использованием фундазола, циркона и превикура. Чтобы избежать неприятной болячки, следует обеспечивать фиалке правильный уход и как следует вентилировать помещение.

Болезни из-за вредителей

Инфекционные болезни фиалок – не единственное, чему подвержены домашние растения. На комнатных фиалках также могут поселиться разнообразные вредители. Естественно, если растениям обеспечен должный уход, болезни фиалок не потревожат ваш цветник, однако если вы что-то упустили, велик риск обнаружить на фиалках каких-нибудь жучков. Итак, какие же существуют вредители фиалок, и в чем заключаются методы борьбы с ними?

Клещи

Различные виды этих вредителей (обычный и красный паутинные клещи, цикламеновый клещ) селятся на листьях цветка. Со временем листья скручиваются и опадают, поскольку вредитель высасывает все соки из несчастного цветка. Кроме этого, не раскрываются сформировавшиеся бутоны. Если на вашей любимице завелась целая колония этих паучков, можно увидеть тонкую паутинку, покрывающую всю поверхность растения.

Избавляются от паучков при помощи акарицидов. Можно обрабатывать сенполию комплексным препаратом, к примеру, «Актилликом» или «Фитовермом».

Щитовки и ложнощитовки

Обнаруживаются на листочках фиалочки, а также на розетках. Жуки довольно крупные – до 7 см в длину. На вид выглядят как щитки коричневого цвета. Опасность представляют липкие выделения, которые они оставляют. Если вы обнаружили их хотя бы на одном цветке, необходимо срочно принимать меры. Детенышей взрослые жуки носят под панцирем, так что «захватить» новые растения для них не составляет труда.

Для лечения применяют «Агравертин».

Трипс

Мелкие мошки, которые могут оккупировать ваш цветник. В основном их можно заметить на поверхности листа, который они поедают. Верным признаком этих насекомых станут как раз прогрызенные листы, хотя цветками они также не брезгуют.

Вылечить цветок можно при помощи препаратов «Актеллик» или «Актара». Кроме того, можно попробовать вручную собрать этих мошек (хотя это может быть проблематично ввиду их размеров).

Ногохвостки

Практически безобидные жучки, которые предпочитают жить в грунте, ближе к поверхности. Представляют опасность лишь в том случае, когда их популяция слишком разрастается – в этом случае они способны повредить корешки.

Чтобы избавиться от нежеланных гостей, обработайте землю раствором пиретрума и просушите грунт.

Нематоды

Червячки, которые селятся в почве. Высасывают полезные вещества из корешков фиалки, а также продуцируют чрезвычайно вредные вещества, называемые галлами. Их можно обнаружить либо при пересадке (осматривая корневую систему), либо, если паразитируют они довольно давно, по внешним признакам. Замедляется рост, фиалочки чахнут и слабеют, листики покрываются желтыми пятнами и деформируются.

Методов избавления от червячков не существует. Следует избавиться от пораженного цветка и от почвы, в которой он рос. Горшок вымыть и продезинфицировать.

Мучнистый червец

Первым сигналом к наличию этого паразита является неприятный грибной аромат, который источает почва. Сам жучок способствует деформации растения, листья покрываются красными пятнами. При желании можно рассмотреть и самого виновника – это мелкие червячки, покрытые белыми ворсинками.

Можно либо воспользоваться «Актелликом» и «Фитовермом», либо пересадить цветок в новый грунт, избавившись от старого.

Тля

Мелкие зеленые букашки, выпивающие все соки из фиалочки. Поражают бутончики и сами цветки. При большом количестве насекомых можно заметить белый липкий налет, который они образуют.

Бороться с мошками поможет «Актеллик».

Мокрицы

Белые ракообразные, которые угрожают корневой системе и листьям ваших сенполий. В условиях повышенной влажности могут очень быстро расплодиться.

Спасти цветок от нашествия мокриц можно при помощи акарицидов.

Комары и мушки

Взрослые особи опасности не представляют, а вот маленькие личинки способны серьезно навредить корневой системе цветочка. Кроме этого, они препятствуют доступу кислорода к корням. Главное условие для их появления – частое переувлажнение почвы.

Можно либо пролить на почву малое количество раствора карбофоса, либо смазать края горшочка мелком от тараканов. Если вредителей развелось слишком много, придется заменить почву, предварительно прокалив ее в духовке.

Белокрылка тепличная

Предпочитает селиться на обратной стороне листа. Ее испражнения провоцируют развитие сажистого грибка, который, в свою очередь, планомерно уничтожает ваших любимиц.

Для защиты используют акарициды и инсектициды.

Профилактические меры

Чтобы не пришлось лечить цветы от болезней и вредителей, необходимо соблюдать несколько правил, когда будете ухаживать за комнатными фиалочкам. Ведь именно от правильного ухода и профилактических мер зависит наличие или отсутствие заболеваний у вашей любимицы.

  1. При уходе за растениями следите за температурным режимом – они любят тепло, а резкие перепады температур сказываются на сенполиях особенно негативно.
  2. Соблюдайте режим полива. Почва не должна быть пересушена или переувлажнена.
  3. Следите за состоянием почвы.
  4. Обязателен карантин для экземпляров, которые вы только что приобрели.
  5. Если вам кажется, что приобретенное растение заражено, можно для профилактики обработать его «Фитовермом». При отсутствии проблемы вреда цветам этот препарат не нанесет никакого.
  6. Перед посадкой не забудьте про стерилизацию почвенной смеси.
  7. Лучше не заготавливайте грунт сами, а приобретайте в специализированных магазинах.
  8. Хорошо промывайте горшки.

Видео «Спасаем цветы от болезней»

Из этого видео вы узнаете о том, как спасти комнатные цветы от болезней и вредителей.

Болезни узамбарских фиалок — «Сад и огород» :: читать на сайте LePlants.ru

Содержание

Коллекция узамбарских фиалок, пусть даже небольшая, требует постоянного внимания. Необходимо ежедневно внимательно осматривать растения на предмет своевременного выявления заболевания и вредителей. Чем раньше вы заметите опасность, тем быстрее и с наименьшими потерями она будет ликвидирована. А для этого надо знать врага «в лицо».

Корневая гниль

Самое распространенное заболевание, с которым сталкиваются не только начинающие, но и опытные фиалководы — это корневая гниль. Поэтому о ней поподробнее.

Прежде всего, обратите внимание на общий вид розетки — в первую очередь, на тургор. Если нижние листья вялые, поникшие, а земляной ком при этом влажный — то это верный признак того, что что-то не в порядке с корневой системой. Необходимо немедленно вынуть растение из горшка, освободить корни от земли, тщательно их промыть и внимательно осмотреть. Если они коричневого (или даже черного) цвета, легко ломаются и отрываются — это корневая гниль.НА ФОТО: Узамбарская фиалка, пораженная корневой гнилью

Данное заболевание распространяется на фиалках крайне быстро, и практически всегда захватывает не только корни, но и стволик. Если не принять срочных мер, то спасти растение будет уже невозможно. В этом случае надо обрезать всю корневую вместе с частью ствола до здоровой ткани. Такая операция требует предельного внимания, аккуратности и дотошности — ведь необходимо удалить не только пораженные места, но и все подозрительные. Если гниль затронула черешки листьев, то их также нужно удалить, обломав больные листочки под самый стволик.НА ФОТО: Удаление пораженных корневой гнилью частей фиалки поможет спасти растение

Подготовленная таким образом фиалка ставится на укоренение в емкость с водой так, чтобы срез стволика касался воды примерно на 1 см. Когда отрастут новые корешки (это произойдет в течение двух недель), фиалка сажается в свежую земляную смесь и ставится в тепличку или под пакет для дальнейшего укоренения. Если в наличии имеется свежий (живой) мох сфагнум, то обрезанное и зачищенное растение вместо емкости с водой можно укоренить в нем.НА ФОТО: Укоренить фиалку после обрезки можно в обычном стакане с водой

Но даже при соблюдении всех «реанимационных» условий фиалку не всегда удается сохранить. Для страховки сохранения сорта надо взять с нее наиболее внешне здоровые листья и так же поставить их на укоренение.

Основные причины, которые способствуют корневой гнили:

Слишком большой горшок

По общепринятым в фиалководстве правилам диаметр горшка должен быть примерно в три раза меньше диаметра розетки. У фиалки поверхностная корневая система, т.е. корни не проникают далеко вглубь грунта, а располагаются в верхнем его слое. Стенки горшка не дают корням разрастаться вширь, и корешки стараются оплести земляной ком.

Если объем земляного кома велик, а корневая система растения еще недостаточно развита, то она неспособна поглотить всю влагу из земли. Грунт в скором времени (особенно при частых неумеренных поливах) закиснет, в нем нарушится воздухообмен. Корни в таком грунте начнут задыхаться, что и приведет к их загниванию.НА ФОТО: Слишком большой горшок для сенполии способствует закисанию грунта

Переохлаждение земляного кома

Пока коллекция фиалок невелика, зачастую ее помещают на подоконнике. А задумывались ли вы, какая в этом месте температура? В теплое время года этот фактор не критичен, а в осенне-весенний период, когда отопление еще не включено или уже отключено? Вам кажется, что в квартире вполне комфортно, и  комнатный термометр лишнее тому подтверждение. Не поленитесь, перенесите термометр на подоконник и оставьте там. Через некоторое время, взглянув на шкалу, вы будете удивлены разнице в его показаниях — на подоконнике окажется существенно холоднее. Да и зимой, когда с отоплением уже все в порядке, комнату вы, скорее всего, периодически проветриваете. Тем самым создаются все условия для переохлаждения земляного кома, чего корневая система фиалок не переносит. А если растения еще и политы с вечера… Испаряющаяся с поверхности влага еще больше охладит грунт, и тем самым будет запущен процесс загнивания.

Неотрегулированный полив

Часто от опытных фиалководов можно услышать такой совет: «Фиалку лучше перелить, чем не долить». Это утверждение скорее верно, чем нет. Давайте разберемся, почему.

Случайный перелив фиалкам не повредит, если:

  • ваши растения сидят в емкостях соответствующих размеров (диаметр горшка примерно в три раза меньше диаметра розетки) с дренажными отверстиями,
  • земляная смесь составлена правильно — она водо- и воздухопроницаема,
  • у фиалок хорошо развита корневая система.

 При таких условиях необходимая растениям влага будет ими усвоена, а лишняя уйдет через дренаж.НА ФОТО: Фиалка посажена в правильно подобранную емкость

Совсем другое дело — пересушка. Если по каким-либо причинам (не успели, забыли и т.д.) растения в течение некоторого времени остаются без полива, то земляной ком высыхает. Вместе с ним высыхают и отмирают корневые волоски и тонкие корешки, и корневая система теряет способность доставлять воду к листьям.  Растение теряет тургор, листья на нем поникают.  Неопытный цветовод, увидев такую картину, первым делом решит полить фиалку, как говорится, «от души». Этого ни в коем случае нельзя делать! Засохшие корешки уже мертвы, от обильного полива они загниют, а с них процесс гниения перекинется на оставшиеся в живых корни. И, если вовремя не принять мер, растение погибнет.

Что же делать в таком случае? Запомните правило: первый полив не должен быть обильным. Поскольку практически все цветочные грунты составлены на основе торфа, то при сильном пересыхании земляной ком становится непроницаем для воды. Она будет только стекать по стенам горшка, не смачивая грунт. Надо осторожно разрыхлить верхний слой земли, и предельно скупо, буквально «в час по чайной ложке», не торопясь, поливать растение. Когда впитается одна порция воды, можно добавить следующую — главное, аккуратно промочить земляной ком. После этой процедуры фиалку нужно поставить в тепличку или под прозрачный полиэтиленовый пакет до восстановления тургора.НА ФОТО: Своеобразная мини-тепличка из полиэтиленового пакета

На восстановление частично погибшей корневой системы обычно уходит от одной до двух недель. Тургор при повышенной влажности в тепличных условиях должен восстановиться раньше, в течение нескольких дней.

За пострадавшим растением необходимо наблюдать предельно внимательно. Если тургор не восстанавливается, или листья после снятия пакета или извлечения из теплички снова опускаются, то корневая система, скорее всего, погибла. В этом случае требуется переукоренить растение, как было описано выше.

С какими еще болезнями, кроме корневой гнили, может столкнуться фиалковод? Прежде всего, это различные грибковые заболевания с характерной симптоматикой.

Мучнистая роса

Белый налет на листьях, они выглядят, как будто бы  посыпаны мукой — это «мучнистая роса». Лучшее средство для борьбы с ней — фунгицидный препарат «Топаз». Как правило, хватает одной обработки. «Топаз» не оставляет несмываемых пятен и разводов на листьях, что немаловажно для эстетического вида растений.НА ФОТО: Листья сенполии, пораженные мучнистой росой

Серая гниль

Дымчато-серый пушистый налет на листьях, они буреют и загнивают — серая гниль. Распространяется очень быстро и плохо поддается лечению. Основная причина болезни — залив при пониженной температуре содержания. С пораженного растения необходимо удалить поврежденные части и обработать грунт фунгицидными препаратами («Фундазол», «Максим»).НА ФОТО: Цветок узамбарской фиалки, пораженный серой гнилью

Фитофтороз

Фиалка начинает сильно отставать в росте; листья на ней мельчают и тускнеют, края закручиваются вниз, теряют тургор при влажной почве — это симптомы фитофтороза. Вылечить такое растение можно только в начале заболевания. Фиалку необходимо пересадить в свежую землю, полить и опрыскать фунгицидом («Фундазол», «Скор», «Ордан»).

Все грибковые заболевания вызываются патогенными грибами, всегда присутствующими в почве. Но поражаются ими только ослабленные растения, страдающие от неправильного ухода!

Сосудистый бактериоз

Пожалуй, самое тяжелое заболевание у фиалок — сосудистый бактериоз. Характерные признаки: нижние листья стекленеют, коричневеют, делаются осклизлыми и отмирают. Болезнь возникает из-за содержания при повышенной температуре. Зачастую достаточно всего нескольких часов, чтобы еще вчера цветущее букетом растение погибло. Фиалку можно попытаться спасти только при выявлении самых первых признаков болезни, попытавшись укоренить самые здоровые на вид листовые черенки.НА ФОТО: При сосудистом бактериозе растение может погибнуть за считанные часы

Здесь вся надежда только на профилактику. Если жара вызвана сезонным фактором, то надо постараться обеспечить такие условия, чтобы максимально уменьшить нагрузку на растения: оборвать все бутоны, обработать (опрыскать) раствором «Эпина», и, главное, ни в коем случае не допускать переувлажнения грунта.

Симптомы неблагополучия растений

Начинающие фиалководы могут также столкнуться со следующими наиболее часто встречающимися признаками неправильного ухода:

Пятна на листьях могут появиться при попадании на них воды в случае недостаточно аккуратного полива. Если растения стоят на подоконнике, такое может случиться при попадании прямых солнечных лучей (ожог) или в прохладное время года при проветривании комнаты (сквозняк).НА ФОТО: Появление пятен на листьях может быть причиной солнечного ожога

Полупрозрачные пятна на нижней стороне листа появляются при переливе растения и исчезают при нормализации влажности земляного кома.НА ФОТО: При переливе на листьяхсенполии появляются характерные полупрозрачные участки

Концентрические круги на листьях указывают на недостаток тех или иных минеральных веществ в питании растения. Об этом же может сигнализировать изменение цвета листовой пластины, нехарактерного для данного сорта фиалки. Белые круги по краям листа могут появиться из-за попадания холодного воздуха с улицы — того же сквозняка.

Уплотненная макушка, загущение центра розетки, подвернутые и прижатые к горшку листья, как бы обнимающие его, в первую очередь говорят об избыточности освещения.

Вытянутые вверх листья с очень длинными черенками, форма розетки «руки вверх», наоборот, признаки недостатка освещения.

Ржавый налет на листовых черенках и почве случается при поливе растений жесткой водой.НА ФОТО: Полив жесткой водой может привести к «ржавчине» листьев

Молодые листики обесцвечиваются, бледнеют; их кончики становятся коричневого цвета признак щелочной почвы.

Есть такое крылатое выражение: «Предупрежден — значит, вооружен». Чтобы максимально оградить свои цветы от вышеперечисленных «страшилок», нужно выполнять нехитрые правила. Любую болезнь легче не допустить, чем вылечить.

Несколько советов напоследок

  1. Соблюдайте правила агротехники: правильно составленная земляная смесь, отрегулированный полив, достаточное освещение, необходимая температура.
  2. Ежедневно внимательно осматривайте растения.
  3. Обеспечьте фиалкам комфортное расположение — они должны стоять свободно, не затеняя друг друга.
  4. Содержите растения в соответствующих размеру розетки емкостях (размер горшка примерно в три  раза меньше диаметра розетки).
  5. Если фиалки стоят на окне, то поворачивайте их для равномерного освещения.
  6. Вовремя пересаживайте.
  7. Повышайте естественный иммунитет растений, периодически опрыскивая их раствором эпина или циркона.
  8. Проводите профилактические обработки — и никакие болезни вашим цветам будут не страшны.

Болезни фиалок — Причины и способы устранения

Причины и способы устранения

Фиалки очень нежные растения, которые требуют ухода и много внимания. В домашних условиях им требуется хорошее освещение, умеренный полив и правильное питание. Но даже при соблюдении всех указанных условий эти комнатные цветы могут поражать различные болезни.

ИНФЕКЦИОННЫЕ И НЕИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

Существуют инфекционные и неинфекционные болезни фиалок. Признаки того, что у фиалок неинфекционные болезни, следующие: деформация листьев с пятнами красного цвета, пожелтение и быстрое увядание листьев, неполноценное цветение, красные точки на старых листьях и жёлтые на молодых. К ним же можно отнести поражения клещами и другими вредителями. И чтобы ваши зелёные любимцы не получали всех этих повреждений, необходимо всего лишь обеспечить оптимальные условия для их роста. Инфекционные болезни могут вызываться вирусами, бактериями и грибками. Признаки инфекционных болезней следующие: белый налёт на листьях и цветоносах, гниение корневой шейки, пятна бурого цвета на листьях и стеблях, серо-коричневый пушистый налёт по всему растению. Самыми опасными и распространёнными болезнями фиалок являются следующие: фузариоз, мучнистая роса, фитофтороз, серая гниль, ржавчина, сосудистый бактериоз.

Фузариоз представляет большую опасность для этих цветов. Его возбудителем является гриб фузариум. Споры вредоносного гриба через микротрещины проникают в молодые корни и вызывают их загнивание. При извлечении растений из грунта обнаруживаются размягчённые коричневатые корни. Потом по сосудам инфекция распространяется на стебель, черешки и листовые пластинки. Листья увядают, а затем опадают, на черешках появляются бурые пятна. Быстрой гибели растения способствует его ослабление после цветения, недостаток питания и температура воздуха ниже 160С. Чтобы избежать этой болезни, нужно делать профилактический полив почвы раствором Фитоспорина-М Цветы каждые 10 дней. Если болезнь поразила ваших питомцев, рекомендуем сделать пересадку фиалок в другой горшок в грунт Земля-Матушка Фиалка-Герань с удалением загнивших частей растений и последующим поливом РеаниматоРом один раз в 10-14 дней 3-кратно. При сильном поражении больное растение лучше уничтожить вместе с грунтом, а горшок обеззаразить раствором медного купороса 0,2% (2 г на 1 л воды).

Мучнистая роса — одно из самых распространённых заболеваний, вызывается несовершенными грибками порядка мучнисторосяных и напоминает рассыпанный по листовым пластинкам белый пыльный налёт, а заражение фиалок происходит с помощью спор грибка, находящихся в почве. Наиболее подвержены заболеванию фиалки, ослабленные пересадкой, цветением, молодые или наоборот старые растения. Недостаточное освещение, низкий температурный режим и высокая влажность воздуха — идеальные условия для развития этой болезни. Переизбыток азотных и недостаток фосфорно-калийных удобрений тоже могут стать причиной развития болезни. Профилактические меры, чтобы избежать этой болезни, следующие: оберегать фиалки от колебаний температуры, правильно поливать и подкармливать Богатым Дом или мягкими удобрениями Гуми-Оми. В зимнее время досвечивать растения светильниками ОЖЗ. Цветочные листья протирать изредка влажной салфеткой. При появлении пятен опрыснуть листочки мыльно-содовым раствором: 30 г зелёного калийного мыла «На Дачу» + 5 г соды на 1л воды. При сильном поражении опрыскивание фунгицидами.

Фитофтороз — очень опасная болезнь фиалок. Возбудителем является грибок, который проникает через микротрещины в листья и корневую систему. На растениях проявляется в виде бурых подсыхающих пятен на листьях и гниение корневой шейки растения. По мере развития они распространяются, а поражённая ткань подвергается некрозу, розетка вянет и не восстанавливается даже после полива. Лечение фитофтороза практически невозможно, поэтому, если верхушечная часть розетки не повреждена, её можно срезать и попробовать укоренить, обработав предварительно Фитоспорином-М и удалив все затронутые болезнью ткани. Здоровый срез имеет светло-зелёный оттенок. Можно брать для укоренения и здоровые листья. Оставшуюся часть розетки уничтожают. Для профилактики болезни можно использовать подкормки Гуми-Оми Фосфор и Калий, и проветривание помещений, где они растут. Если эта болезнь проявилась только на одном растении, то остальные надо обязательно обработать РеаниматоРом с целью нераспространения эпидемии.

Серая гниль проявляется в виде светло-коричневого налёта, который покрывает всю наземную часть, в результате чего ткани загнивают. Если своевременно не принять меры, то цветок может погибнуть за короткое время. Возбудителем является грибок ботритис, который попадает вместе с почвой. Повреждённые серой гнилью листья и цветки нужно сразу удалять. Больные растения обрабатывать Реаниматором или фунгицидами, а сильно поражённые уничтожать вместе с землёй. Умеренный системный полив и стабильный температурный режим — главные условия, которые необходимо соблюдать, чтобы уберечь растения от серой гнили.

Ржавчина вызывается ржавчинными грибами. Проявляется в виде оранжевых бугорков на верхней стороне листьев и бурых подушек на нижней стороне листовой пластинки. При растрескивании из них высыпаются споры, которые могут снова заражать новые листья. Идеальные условия для размножения грибка — это высокая влажность воздуха и температура +15…+200С. При сильном развитии болезни листья отмирают и опадают. При появлении болезни рекомендуется опрыскивание листочков бордосской жидкостью 1% или опудривание серной пылью, или обработка раствором РеаниматоРа.

Сосудистый бактериоз поражает фиалки в основном летом в жару. У пораженных растений наблюдается остекленение листьев и их дальнейшее отмирание. Лечение производится препаратами Фитоспорин РеаниматоР, Циркон, или хим. фунгицидом Превикур.

Чтобы риск заражения вашего растения оказался минимальным, нужно соблюдать следующие рекомендации: после покупки растения в магазине устроить ему карантин, т.е. выдержать в отдельном месте в течение месяца, обязательно еженедельно проводить профилактические поливы Фитоспорин-М, землю для посадки или пересадки растений брать сбалансированную по питанию именно для фиалок — Землю-Матушку Фиалка, Герань, соблюдать оптимальные условия для роста: достаточное освещение светильниками ОЖЗ и своевременные подкормки мягкими удобрениями Гуми-Оми Фиалки (1 ст. ложка на 1 л воды), а также своевременные поливы и поддержание температуры не ниже +20 и не выше +250С. При хорошем уходе риск появления болезней будет практически равен нулю, и тогда ваши питомцы отблагодарят вас обильным и продолжительным цветением.

И.Л. Ермолаева, специалист по защите растений от болезней и вредителей

Болезни фиалок и их лечение

Казалось, сделали все, чтобы комнатное растение чувствовало себя комфортно и радовало цветением, а оно чахнет, желтеет и всем своим видом демонстрирует недуг. В подборку болезни фиалок с фотографиями и их лечение мы включили наиболее распространенные инфекции сенполий. Только поняв причины их появления, можно подобрать действенные способы оздоровления.

Здоровая фиалка радует сочной листвой и цветением 8–10 месяцев в году

Компоненты ухода, отвечающие за здоровье фиалки

У опытных цветоводов есть старое правило – хочешь, чтобы растение развивалось и чувствовало себя как дома, создавай условия, приближенные к родине произрастания. Для фиалок сенполий – это тропики восточной Африки с теплым и влажным климатом. Нарушения температурного, светового, воздушного и водного режима угнетают растение, снижают сопротивляемость воздействию патогенной микрофлоры.

Новички в цветоводстве, задавая вопрос, почему у фиалок желтеют листья, сразу же предполагают худшее – инфекции, но этот симптом чаще всего связан с неэффективным уходом. Не следует забывать и о естественном старении и отмирании нижних листьев розетки.

Теперь подробнее об уходе.

  1. Фиалки любят свет, но не яркий, ослепительный, а мягкий, рассеянный, его еще часто называют дневным. От недостатка освещения растение перестает цвести, от избытка – листья желтеют, покрываются пятнами, теряют упругость.
  2. Оптимальный температурный режим варьируется в диапазоне 20–25⁰ С, без резких перепадов и сквозняков. В холоде сенполии приостанавливаются в росте. Сочетание низких температур с избыточным поливом приводит к гниению корней и стебля. Угнетающе действует на растение и жара свыше 30⁰ С – это одна из причин появления грибковых и бактериальных заболеваний.
  3. Фиалка капризна в отношении влаги. Будучи представителем тропической флоры, она предпочитает, чтобы почва была увлажненная, но не мокрая. Не переносит холодной воды и опрыскивания. Нужной влажности воздуха достигают микрораспылением или устанавливают горшки в поддоны со смоченным керамзитом, сфагнумом, гравием. Избыток влаги ведет к появлению гнилостных инфекций, недостаток – к утрате тургора, усыханию.
  4. Немаловажный компонент здоровья фиалок – правильная почва. Она должна быть легкой, рыхлой, в меру питательной, пропускать воздух и обеспечивать отток лишней влаги. Корневая система сенполий хрупкая, поверхностная, в тяжелых смесях на основе садовой земли подвержена переувлажнению и загниванию. К пожелтению листового покрова приводит нехватка питания и микроэлементов, особенно азота, калия, фосфора. Через почву чаще всего происходит заражение извне вредителями и болезнями. Чтобы обезопасить растения, грунт перед посадкой желательно промораживать в течение 7–10 дней.

Важно! Если почва кислая (pH ниже 5–6), фосфаты в ней не растворяются, листья по краям желтеют, розетка загущается. Для полива используйте доломитовый раствор – 1 ст. ложка муки на 5 л воды. В щелочной почве (pH выше 7) фиалка бледнеет, отстает в росте. В этом случае нужен подкисленный полив – 1 ст. ложка уксуса на 2,5 л воды.

Инфекционные болезни фиалок

К сожалению, даже при оптимальном уходе нельзя исключить появление болезней фиалок и поражение их микроскопичными вредителями. К лечению заболевших растений следует подходить комплексно: применять химические препараты, оптимизировать уход, практиковать омоложение. Иногда, чтобы спасти коллекцию, приходится прибегать к кардинальным мерам – уничтожению поврежденных экземпляров.

Фитофтороз

Фитофтора – опасный гриб-паразит, поселяющийся в тканях растения и питающийся его соками. Чаще инфицирование происходит через почву, содержащей споры возбудителя. Активизируется в условиях высокой температуры (свыше 30⁰ С) и влажности воздуха – через микротрещины проникает в корни и стебли. Выделяя токсины, гриб быстро разрушает сенполию на клеточном уровне.

Первый тревожный звоночек, который может быть предвестником фитофтороза – увядание листьев фиалки «без причины», при нормальной влажности и регулярном поливе. На начальном этапе страдают корни, затем идет поражение стебля и листьев – на тканях появляются четко выраженные гнилостные пятна бурого цвета.

Это заболевание легче предупредить, чем вылечить. С пораженным экземпляром придется расстаться. Посадочные горшки обдайте кипятком, новый субстрат проморозьте при температуре не менее -20⁰ С. Для профилактики земляной ком пролейте раствором фитоспорина-М. Возобновить сорт можно укоренением молодых листочков, не затронутых инфекцией.

Фузариоз (трахеомикоз)

Еще одна инфекция, имеющая грибковую природу. Благоприятные условия для развития спор – плотная, холодная, переувлажненная почва. Болезнь начинается с загнивания корневой системы, затем перебрасывается на стебель (корневая шейка истончается), нижний ярус листьев, розетку. Мицелий гриба, размножаясь, закупоривает сосуды растения, поэтому один из признаков фузариоза – «сосудистое увядание».

Пораженную фиалку, во избежание распространения заразы, лучше выбросить вместе с землей, горшок продезинфицировать. Чтобы не случилось повторной инвазии, новый субстрат проливают раствором фитоспорина-М или другого фунгицида. В качестве защитной меры, раз в месяц раствором этого же препарата рекомендуют проливать все сенполии (1 мл на литр воды).

Мучнистая роса

Когда на листьях фиалки появляются пятна белесого налета, похожего на въевшуюся пыль, речь, вероятнее всего, идет о мучнистой росе – заболевании грибковой этиологии. Споры попадают в цветочный горшок с необеззараженной почвой, поливом, воздушным путем вместе с грязью. Оптимальные условия для старта инфекции – холодный подоконник, мокрый субстрат, недостаток света в помещении, несбалансированное питание с избытком азота и дефицитом калия.

Заболевшие сенполии следует изолировать от остальных цветов и обработать любым системным фунгицидом, например, фундазолом. Можно опрыскать или полить – по сосудам токсины попадут в растительную ткань и уничтожат грибок. Хватает двухразовой обработки с интервалом в 10 дней. Профилактика мучнистой росы:

  • оптимизация ухода;
  • сбалансированное питание;
  • соблюдение чистоты цветочной коллекции.

Серая гниль

Среди болезней фиалок серая гниль или ботридиоз считается довольно распространенной. Возбудитель инфекции – гриб ботритис. Он сохраняется в растительных компонентах почвы, а в условиях повышенной влажности начинает размножаться. Признак заражения – появление на всех частях фиалки бурых пятен, покрытых дымчато-серым пушистым налетом. Болезнь быстро переходит в стадию загнивания тканей.

В начале заболевания достаточно удалить побуревшие части фиалки, пересадить растение в чистый субстрат и полить раствором фунгицида. На более поздних этапах сенполию вместе с грунтом нужно уничтожить. Не допустить появление серой гнили можно с помощью профилактических мер. К ним относится:

  • обеззараживание грунта вымораживанием;
  • полив вновь пересаженных растений раствором марганца или любого противогрибкового препарата;
  • соблюдение умеренного водного режима, особенно в зимний период.

Заболевания как следствие неправильного ухода

Некоторые болезни фиалок не относятся к заразным, но погубить растение они способны не хуже инфекции.

Сосудистый бактериоз

Многоликое и коварное заболевание настигает фиалку в разгар лета и цветения. Как только жара переваливает через отметку 30⁰ С, у растения начинаются проблемы с обменом веществ и влаги, происходит «закупорка сосудов». На отмерших же частицах ткани усиленно размножаются бактерии. Симптомы у бактериоза разные – на внутренней стороне листвой пластины появляются полупрозрачные коричневые пятна, черешки и стебли стекленеют и превращаются в «кисель», розетка гниет и быстро отмирает.

Так как сосудистый бактериоз появляется вследствие жары, эффективный способ борьбы с ним – понижение температуры воздуха и вентиляция, но не сквозняк! Самый надежный метод – установка кондиционера. Если такой возможности нет, уберите фиалки с подоконников в более затененное место, на поддоны с влажным дренажом. Заболевшее растение рекомендуют обработать раствором триходермина или трихопола. Его же используют и для профилактики.

Бактериоз поражает в первую очередь ослабленные сенполии, поэтому направьте усилия на повышение иммунитета цветов. А его укрепляет:

  • своевременное омолаживание;
  • весенняя (в мае) пересадка в свежий субстрат;
  • обработка перед стрессовыми ситуациями (жара – это стресс!) иммуномодуляторами, например, Эпином.

Корневая гниль

К загниванию корней может привести не только грибок, но и элементарный перелив, использование слишком холодной воды. Влага застаивается в слишком плотной почве, если закупорились сливные отверстия в горшке. Причин много, следствие одно – растение слабеет, теряет тургор, сбрасывает нижний ярус розетки, стремясь сохранить молодые листочки.

Единственный способ спасти фиалку – пересадить в свежую почву, предварительно убрав подгнившие части. Если целых корней не осталось, укорените розетку, тем самым омолодив растение.

г. Москва, Россия, на сайте с 11.01.2017

Успешное лечение инфицированного нового сосудистого трансплантата

Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2013 Янв; 16 (1): 79–80.

Сусуму Исикава

a Отделение торакальной и сердечно-сосудистой хирургии, Токийская столичная больница Бокуто, Токио, Япония

Ясуси Катаяма

a Отделение торакальной и сердечно-сосудистой хирургии, Токио Больница

, Токийская столичная хирургия, Токио, Япония. Хидеки Мисима

a Отделение торакальной и сердечно-сосудистой хирургии, Токийская столичная больница Бокуто, Токио, Япония

Кендзи Охниши

b Отделение инфекционных заболеваний, Токийская столичная больница Бокуто, Токио, Япония

a торакальной и сердечно-сосудистой хирургии, Токийская столичная больница Бокуто, Токио, Япония

b Отделение инфекционных заболеваний, Токийская столичная больница Бокуто, Токио, Япония

* Автор, отвечающий за переписку.Отделение торакальной и сердечно-сосудистой хирургии, Токийская столичная больница Бокуто, 4-23-15 Котобаши, Сумида-ку, Токио 130-8575, Япония. Тел: + 81-3-36336151; факс: + 81-3-36336173; электронная почта: pj.oc.liamtoh@awakihsiumusus (С. Исикава).

Поступило 11 мая 2012 г .; Пересмотрено 16 июля 2012 г .; Принято 24 июля 2012 г.

Авторские права © Автор, 2012 г. Опубликовано Oxford University Press от имени Европейской ассоциации кардио-торакальной хирургии. Все права защищены.Эта статья цитировалась в других статьях в PMC.

Abstract

У мужчины 71 года, перенесшего полную замену дуги аорты с использованием недавно разработанного сосудистого протеза без покрытия (Triplex®), развился послеоперационный медиастинит из-за инфекции, вызванной метициллин-устойчивым стафилококком Staphylococcus . Сосудистый протез Triplex® имеет уникальную трехслойную структуру с непористым эластомерным материалом среднего слоя и имеет ряд преимуществ по сравнению с более традиционными протезами, а именно: хорошую управляемость, хорошую проходимость, сопротивление расширению и низкую воспалительную реакцию тканей.Это первый зарегистрированный случай послеоперационной инфекции протеза, который был успешно вылечен путем обертывания сальника и закрытого орошения трифенилметановым красителем. Бактериальные культуры образцов крови были отрицательными на протяжении всего курса лечения и через 8 месяцев после первой операции. Компьютерные томографы не выявили признаков инфекции или псевдоаневризмы анастомоза. В заключение, сочетание обертывания сальника и закрытой процедуры орошения с использованием трифенилметанового красителя можно рассматривать как эффективное лечение инфекции трансплантата Triplex®.

Ключевые слова: Инфекция трансплантата, триплекс, обертывание сальника, трифенилметановый краситель

ВВЕДЕНИЕ

Инфекция протезного протеза связана с серьезной заболеваемостью и высокой смертностью [1]. Triplex® (Терумо, Токио, Япония) — это недавно разработанный трансплантат большого диаметра, который герметизирован небиоразлагаемым материалом покрытия. Мы сообщаем о первом успешно вылеченном случае послеоперационной инфекции этого протеза, вызванной метициллин-резистентными видами стафилококка (MRS) (MRS), и обсуждаем комбинацию лечения имплантации лоскута сальника и лечения закрытой ирригацией трифенилметановым (генцианвиолет) красителем.

CASE REPORT

71-летний мужчина с аневризмой дуги аорты с диаметром малой оси 79 мм перенес полную замену дуги аорты с использованием нового четырехветвевого протеза Triplex® без покрытия в августе 2011 года. Во время экстракорпорального кровообращения гипотермическая остановка кровообращения использовались селективные методы церебральной перфузии. Самая низкая температура мочевого пузыря составила 26 ° C, время пережатия аорты — 279 минут, время избирательной церебральной перфузии — 152 минуты.

Количество лейкоцитов вернулось к нормальному диапазону на четвертый послеоперационный день (POD), однако уровень С-реактивного белка (CRP) в сыворотке оставался высоким между 13 и 14 мг / дл.На 11-й POD из раны грудины просачивалась коричневая жидкость. На 14-м ПОЛ была проведена повторная исследовательская операция, у пациента был диагностирован послеоперационный медиастинит. После удаления фибринового сгустка и тканевых масс, прикрепленных как к средостению, так и к сосудистому трансплантату, операционное поле орошали физиологическим раствором. После местной обработки раны 0,1% раствор генцианвиолета наносили на анастомозы аорты, сосудов дуги и основной части сосудистого трансплантата.Сальник помещали вокруг трансплантата и в мертвое пространство средостения. Сальник прикрывал проксимальные три четверти протезного протеза, однако не доходил до дистального анастомоза. Промывная трубка помещалась между сальником и сосудистыми протезами. Одна дренажная трубка (BLAKE® Silicon Drains, Ethicon, Inc., США) помещалась на тыльную сторону сосудов дуги дистальнее анастомоза. Еще одна дренажная трубка была вставлена ​​в левую плевральную полость, и рана грудины зашита.Бактериальная культура выявила MRS из культи четвертой ветви протеза, который не использовался для анастомоза, а также из поверхности протеза и жидкости, собранной из средостения.

Непрерывное закрытое орошение 0,02% раствором генцианвиолета (2000 мл / день) продолжалось в течение 3 дней с последующим периодическим орошением тем же раствором (500 мл × 2 / день) еще в течение 5 дней. Последующее прерывистое орошение физиологическим раствором (500 мл × 2 / день) проводилось в течение следующих 5 дней с регулярным бактериальным посевом из дренированной жидкости.Перерезка грудины произошла на 10-е сутки после второй операции, произведена повторная фиксация грудины. Эта третья операция не выявила инфекции средостения, а бактериальные культуры, взятые из операционного поля, были отрицательными. Ванкомицин вводили в течение 28 дней, а затем линезолид в течение следующих 35 дней. Все культуры крови были отрицательными на протяжении всего курса лечения. Уровень СРБ в сыворотке вернулся к норме на 30-е сутки после третьей операции (рис.).

Госпитальный курс.Уровень С-реактивного белка (СРБ) в сыворотке оставался высоким после операции, однако он снизился после дренажной операции с использованием орошения генцианвиолетом. OP1: полная замена дуги; OP2: дренаж с обертыванием сальника; OP3: повторная фиксация грудины; WBC: количество лейкоцитов.

Через восемь месяцев после первой операции компьютерная томография (КТ) не выявила признаков повторного инфицирования (рис.), А значения CRP остались нормальными. Периодическое обследование с использованием компьютерной томографии и анализа крови планируется не реже двух раз в год.

Послеоперационная компьютерная томография не выявила признаков инфекции или псевдоаневризмы. ( A ) Полная замена арки. На проксимальном участке ( B ) или дистальном участке ( C ) анастомозов нет признаков аномального скопления жидкости или псевдоаневризмы.

КОММЕНТАРИЙ

Triplex®, выпущенный в декабре 2008 года, имеет уникальную трехслойную структуру. Внешний и внутренний слои сосудистого трансплантата изготовлены из пористого трикотажного дакрона, который разработан для легкого проникновения в окружающие клетки и ткани после имплантации.Средний слой — это высокоэластичный непористый эластомер (эластичный пластик). Многоцентровые клинические испытания [2] в Японии показали хорошую управляемость, хорошую проходимость, чрезмерное сопротивление расширению и слабую воспалительную реакцию. Основная характеристика этого нового трансплантата — это не поддающийся биологическому разложению материал покрытия среднего слоя. Табата и др. [3] сообщил о сокращении продолжительности дренажа средостения после хирургического вмешательства на грудной аорте и о способствовании раннему выделению.

Обычно послеоперационная инфекция трансплантата требует удаления инфицированного трансплантата [1].Однако сообщалось о нескольких случаях трансплантата, когда его не нужно было извлекать [4]. В случае инфекции трансплантата дакрона сообщалось об эффективности рифампицина, повидон-йода или генцианвиолета. В данном случае раствор генцианвиолета использовался во время операции и в послеоперационном периоде. Генцианвиолет известен как сильнодействующее антибактериальное средство против грамположительных бактерий, включая MRS и метициллин-устойчивый Pseudomonas aeruginosa [5]. Преимущества этого средства по сравнению с повидон-йодом включают отсутствие местного раздражающего действия, отложение на некротизированной ткани и отсутствие ослабления стерилизующего эффекта даже в присутствии сыворотки.При инфицировании трансплантата Triplex® рифампицин не эффективен, и дезинфицирующие средства на спиртовой основе не используются из-за возможности повреждения эластомерного слоя.

Недостатком раствора генцианвиолета является высокая вязкость даже при низких концентрациях. Раствор генцианвиолета иногда приводил к закупорке дренажных трубок при периодическом орошении. Кроме того, собранная жидкость не подходила для бактериального культивирования из-за присутствия генцианвиолета. В этом случае дренажная трубка была очищена физиологическим раствором, а бактериальный посев проводился с использованием орошаемого физиологического раствора.

При повторной разведке мы применили как непрерывную ирригационную обработку, так и обертывание сальника. Непрерывное орошение может помешать сальнику спровоцировать правильную миграцию новой васкуляризированной ткани в трансплантат. Мы направили стерилизацию вокруг трансплантата сразу после операции. По окончании непрерывного орошения мы ожидали неоангиогенеза за счет сальника.

В заключение, комбинация обертывания сальника и процедуры закрытого орошения с использованием генцианвиолета считается эффективным лечением инфекции трансплантата Triplex®.

Конфликт интересов: Не объявлен.

ССЫЛКИ

1. Coselli JS, Köksoy C, LeMaire SA. Лечение инфекций трансплантата грудной аорты. Ann Thorac Surg. 1999; 67: 1990–3. [PubMed] [Google Scholar] 2. Такамото С., Ясуда Ю., Табаяси К., Кио С., Мията Т., Казуи Т. и др. Клинический опыт применения трансплантата большого диаметра Terumo (Triplex) — результаты многоцентрового клинического исследования. Jpn J Cardiovasc Surg. 2007; 36: 253–60. (на японском языке с аннотацией на английском языке) [Google Scholar] 3.Табата М., Симокава Т., Фукуи Т., Манабе С., Сато Й., Таканаши С. Новый сосудистый протез без покрытия снижает дренаж трубки средостения после операции на грудной аорте. Ann Thorac Surg. 2011; 91: 899–902. [PubMed] [Google Scholar] 4. Mathes DW, Яремчук MJ, Isselbacher EM, Madsen JC. Успешное лечение инфицированного трансплантата восходящей аорты in situ. Ann Thorac Surg. 2000; 70: 1410–2. [PubMed] [Google Scholar] 5. Саджи М., Тагучи С., Учияма К., Осоно Е., Хаяма Н., Окуни Х. Эффективность генцианвиолета в уничтожении метициллин-резистентных Staphylococcus aureus из кожных поражений.J Hosp Infect. 1995; 31: 225–8. [PubMed] [Google Scholar]

Патогенная бактерия сосудистых растений R alstonia solanacearum продуцирует биопленки, необходимые для его вирулентности, на поверхности клеток томата, прилегающих к межклеточному пространству.

Mol Plant Pathol. 2016 Aug; 17 (6): 890–902.

, 1 , 2 , 3 , 3 , 1 , 4 , 1 и 1

Юка Мори

1 Лаборатория патологии растений и биотехнологии, Кочинский университет, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

Канако Иноуэ

2 Исследовательский центр электронной микроскопии сверхвысокого напряжения, Университет Осаки, Михогаока, Ибараки, Осака 567‐0047, Япония,

Кеничи Икеда

3 Высшая школа сельскохозяйственных наук, Университет Кобе, 1-1 Роккодаи, Нада-ку, Коби, Хиого 657-8501, Япония,

Хитоши Накаяшики

3 Высшая школа сельскохозяйственных наук, Университет Кобе, 1-1 Роккодаи, Нада-ку, Коби, Хиого 657-8501, Япония,

Чикаки Хигасимото

1 Лаборатория патологии растений и биотехнологии, Кочинский университет, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

Коухеи Охниши

4 Научно-исследовательский институт молекулярной генетики Университета Коччи, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

Акинори Киба

1 Лаборатория патологии растений и биотехнологии, Кочинский университет, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

Ясуфуми Хикичи

1 Лаборатория патологии растений и биотехнологии, Кочинский университет, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

1 Лаборатория патологии растений и биотехнологии, Кочинский университет, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

2 Исследовательский центр электронной микроскопии сверхвысокого напряжения, Университет Осаки, Михогаока, Ибараки, Осака 567‐0047, Япония,

3 Высшая школа сельскохозяйственных наук, Университет Кобе, 1-1 Роккодаи, Нада-ку, Коби, Хиого 657-8501, Япония,

4 Научно-исследовательский институт молекулярной генетики Университета Коччи, Нанкоку, Кочи 783-8502, Япония,

Автор, ответственный за переписку.

Поступило 30 июня 2015 г .; Пересмотрено 8 октября 2015 г .; Принято 13 октября 2015 г.

Авторские права © 2015 BSPP AND JOHN WILEY & SONS LTD Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Резюме

Механизм колонизации межклеточных пространств почвенной и патогенной бактерией сосудистых растений Ralstonia solanacearum штамм OE1-1 после инвазии в растения-хозяева остается неясным. Чтобы проанализировать поведение клеток OE1-1 в межклеточных пространствах, листья томатов с нижними слоями эпидермиса, вырезанными после инфильтрации OE1-1, наблюдали под сканирующим электронным микроскопом.Клетки OE1-1 образовывали микроколонии на поверхностях клеток томата, прилегающих к межклеточному пространству, а затем агрегировались, окруженные внеклеточным матриксом, образуя зрелые структуры биопленок. Более того, клетки OE1-1 продуцируют биопленки грибного типа при инкубации в жидкостях апопластов, включая межклеточные пространства, но не в ксилемных жидкостях растений томата. Это первое сообщение об образовании биопленок R. solanacearum на клетках растений-хозяев после инвазии в межклеточные пространства и биопленок грибного типа, продуцируемых R.solanacearum in vitro . Применение сахара привело к усиленному образованию биопленок OE1-1. Мутация lecM , кодирующего лектин RS-IIL, который, как сообщается, проявляет сродство к этим сахарам, привела к значительному снижению образования биопленок. Колонизация в межклеточных пространствах была значительно снижена у мутанта lecM , что привело к потере вирулентности для растений томата. Комплементация мутанта lecM с нативным lecM привела к восстановлению биопленок грибного типа и вирулентности на растениях томатов.В совокупности наши результаты показывают, что OE1-1 продуцирует зрелые биопленки на поверхности клеток томата после вторжения в межклеточные пространства. RS-IIL может способствовать образованию биопленок с помощью OE1-1, что необходимо для вирулентности OE1-1.

Ключевые слова: биопленка, межклеточные пространства, лектин, Ralstonia solanacearum , почвенная патогенная бактерия сосудистых растений, вирулентность

Введение

Бактерии прикрепляются и растут практически на любой поверхности, образуя архитектурно сложные сообщества, называемые биопленками. (Бранда и др. ., 2005; Холл-Стодли и Стодли, 2009). Сообщается, что фитопатогенные бактерии образуют биопленочные скопления в сосудах ксилемы растений-хозяев, а также на поверхности корней и листьев, но не в межклеточных пространствах (Danhorn and Fuqua, 2007; Mansfield et al ., 2012). Развитие биопленок способствует вирулентности фитопатогенных бактерий посредством различных механизмов, включая закупорку сосудов ксилемы, повышение устойчивости к антимикробным соединениям растений и / или усиление заселения определенных мест обитания.

Формирование биопленок грамотрицательными протеобактериями — это временной процесс, включающий переходы через различные стадии многоклеточной организации. Эти этапы были оперативно идентифицированы как планктон, прикрепление к поверхности, образование микроколоний, образование и распространение биопленок (Monds and O’Toole, 2009). Образование микроколоний может происходить либо за счет клонального роста прикрепленных клеток, либо за счет активной транслокации клеток по поверхности. Микроколонии увеличиваются в размерах и сливаются, образуя биопленки.После образования микроколоний производство сигналов, воспринимающих кворум, необходимо для формирования зрелых биопленок (Bogino et al ., 2013; Rinaudi and Giordano, 2010). Биопленки могут растворяться, высвобождая клетки из биопленки. Биопленки представляют собой совокупность микроорганизмов, встроенных в матрицу внеклеточных полимеров, которые прикрепляются друг к другу и к поверхности, тем самым обеспечивая социальную адаптацию к меняющимся условиям окружающей среды (Davey and O’Toole, 2000; Morris and Monier, 2003).Конфигурации биопленок варьируются по сложности от плоских относительно безликих пленок до плотно сгруппированных агрегатов и до сложных гетерогенных клеточных структур, таких как башни и косы (Parsek and Fuqua, 2004; Ramey et al. ., 2004; Webb et al. ., 2003). ).

Бактериальное увядание, вызываемое Ralstonia solanacearum (Yabuuchi et al ., 1995), является одним из самых разрушительных бактериальных заболеваний растений в тропиках, субтропиках и регионах с жарким климатом во всем мире (Hayward, 1991). Ralstonia solanacearum — это почвенная бактерия, которая обычно проникает в корни растений из почвы через раны или естественные отверстия, где появляются вторичные корни (Araud-Razou et al. ., 1998), колонизирует межклеточные пространства коркового вещества корня и паренхимы сосудов. , и в конечном итоге попадает в сосуды ксилемы и распространяется вверх в стебли и выходит через ксилему (Vasse et al ., 1995). Его высокий уровень размножения приводит к симптомам увядания в результате снижения сокодвижения, вызванного присутствием большого количества бактериальных клеток и экзополисахаридной (EPS) слизи, продуцируемой бактериями в некоторых сосудах ксилемы (Genin and Denny, 2012).Таким образом, мы можем предположить, что клеток R. solanacearum продуцируют биопленочные скопления на поверхности сосудов ксилемы. Также сообщалось, что R. solanacearum образует биопленочные скопления на корнях проростков томатов (Kang et al ., 2002; Yao and Allen, 2006). Однако структуры и механизмы биопленки, продуцируемой R. solanacearum , не анализировались. Более того, участие образования биопленок в его вирулентности не выяснено.

Экспрессия факторов патогенности в R. solanacearum контролируется сложной регуляторной сетью, которая реагирует на условия окружающей среды, присутствие клеток-хозяев и плотность бактерий (Schell, 2000). В центре этой сети находится регулятор транскрипции семейства LysR, PhcA (Brumbley et al ., 1993), который напрямую или через промежуточные регуляторные гены координирует экспрессию нескольких факторов вирулентности (Huang et al ., 1995). ).В частности, функция PhcA регулируется в ответ на плотность клеток с помощью механизма определения кворума (Flavier et al ., 1997).

Ralstonia solanacearum обладает hrp, (гиперчувствительный ответ и патогенность) генами, кодирующими структурные компоненты системы секреции типа III (T3SS), которая перемещает эффекторные белки из клетки (Van Gijsegem et al ., 1995). Эта активация ощущается рецептором внешней мембраны PrhA, который передает сигналы через двухкомпонентный и сложный регуляторный каскад PrhI и PrhR, интегрированный регуляторами PrhJ, HrpG и HrpB (Aldon et al ., 2000; Брито и др. , 1999, 2002; Валлс и др. ., 2006). Интересно, что функциональный PhcA подавляет экспрессию оперона prhIR , что приводит к подавлению экспрессии гена hrp (Genin et al ., 2005; Yoshimochi et al ., 2009).

Когда R. solanacearum вторгается в межклеточные пространства, растения табака сначала индуцируют Sec14P-опосредованную передачу сигналов фосфолипидов и продуцируют фосфатидную кислоту в хлоропластных мембранах, что приводит к индукции опосредованной жасмоновой кислотой и реактивной защиты, опосредованной кислородом (Kiba et al ., 2014, 2012). Растения табака, пораженные вирулентным штаммом OE1-1 из R. solanacearum , индуцируют экспрессию гена фосфатазы фосфатидной кислоты, дефосфорилируя фосфатидную кислоту в диацилглицерин (Nakano et al ., 2013). Это приводит к подавлению защиты, опосредованной жасмоновой кислотой и реактивным кислородом. Затем OE1-1 может колонизировать межклеточные пространства. Экспрессия гена фосфатазы фосфатидной кислоты не индуцируется инфекцией мутантами с дефицитом T3SS.Более того, мутанты с дефицитом T3SS не могут колонизировать межклеточные пространства и терять свою вирулентность (Kanda et al ., 2003a). Следовательно, для R требуется колонизация межклеточного пространства. solanacearum вирулентность. Однако механизм, с помощью которого R. solanacearum колонизирует межклеточные пространства, остается неизвестным.

Способ синхронной инвазии R. solanacearum в межклеточные пространства корней не разработан.Чтобы исследовать точную кинетику экспрессии бактериальных генов в растениях, мы использовали листья растений, инфильтрованные бактериями (Kanda et al., 2003a, 2003b, 2008, 2009; Shinohara et al ., 2005). Мутанты генов, связанных с вирулентностью, росли аналогичным образом в листьях, инокулированных инфильтрацией листьев, и корнях, инокулированных путем окунания корней. Кроме того, мутанты показали такую ​​же вирулентность на растениях-хозяевах, инокулированных инфильтрацией листьев, как и те, которые были инокулированы путем окунания корней. В этом исследовании, чтобы точно проанализировать механизм, с помощью которого R.solanacearum штамм OE1‐1 колонизирует межклеточные пространства, поведение клеток OE1‐1 наблюдали в межклеточных пространствах листьев томата, инфильтрированных OE1‐1. Наблюдение под сканирующим электронным микроскопом (СЭМ) показало, что клетки OE1‐1 образуют структуры биопленок на клетках томатов, прилегающих к межклеточным пространствам. Мы также обнаружили биопленки грибного типа, продуцируемые клетками OE1-1, инкубируемыми в жидкостях апопластов, включая межклеточные пространства, но не в ксилемных жидкостях растений томата. Интересно, что применение сахара привело к усиленному образованию биопленок OE1-1.Используя систему образования биопленок OE1-1, было проанализировано участие lecM , который кодирует лектин RS-IIL, в образовании биопленок.

Результаты

Клетки

R. solanacearum штамма OE1-1 после инвазии в межклеточные пространства листьев томатов продуцируют биопленочные структуры

Мы впервые создали зеленый флуоресцентный белок (GFP) с меткой OE1-1: gOE1‐1. gOE1-1 был трансформантом OE1-1, содержащим открытую рамку считывания GFP из pCmGFP (Srikhanta et al ., 2009), слитый с конститутивно активным промотором RSc0297 из OE1-1, интегрированным в бактериальную хромосому через транспозон Tn 7 (Y. Mori and Y. Hikichi, неопубликованные данные). Листья 5-недельных растений томата инфильтрировали суспензией gOE1-1 в объеме 20 мкл при оптической плотности 0,1 при 600 нм (OD 600 ) с помощью одноразового шприца объемом 1 мл. Флуоресценцию, происходящую от gOE1-1, наблюдали под флуоресцентным фазово-контрастным микроскопом. Флуоресценция, происходящая от gOE1-1, была рассредоточена по межклеточному пространству и агрегировалась через 18 часов после инфильтрации (рис.).

Колонизация межклеточных пространств листьев томатов штаммом Ralstonia solanacearum OE1-1. Под флуоресцентным фазово-контрастным микроскопом наблюдали флуоресценцию зеленого флуоресцентного белка (GFP) R. solanacearum , штамм OE1-1 (gOE1-1) в межклеточных пространствах листьев томата через 18 часов после инфильтрации.

Чтобы оценить, участвует ли агрегация клеток OE1-1 в межклеточных пространствах в производстве биопленок клетками OE1-1, листья томатов с иссеченными нижними слоями эпидермиса через 18 и 24 часа после инфильтрации OE1-1 наблюдали под SEM.Клетки OE1‐1 образовывали микроколонии на поверхности клеток томата, прилегающих к межклеточному пространству через 18 часов после инфильтрации (рис. А), а затем агрегировались, окруженные внеклеточным матриксом, и образовывали биопленочные структуры через 24 часа после инфильтрации (рис. . б). Кроме того, планктонные клетки, которые, как считается, высвобождаются из растворяющейся биопленки, также наблюдались через 24 часа после инфильтрации (рис. B). В межклеточных пространствах неинокулированных листьев томатов бактерий не наблюдалось (рис. C).

Формирование микроколонии (а) и биопленки (б), продуцируемых штаммом Ralstonia solanacearum OE1-1 на поверхностях клеток томата, прилегающих к межклеточному пространству. Листья томатов с нижними слоями эпидермиса, удаленными через 18 ч (а) и 24 ч (б) после инфильтрации OE1-1, и неинокулированный лист с иссеченными нижними слоями эпидермиса через 24 ч (в), наблюдались под растровый электронный микроскоп. Стрелками показаны планктонные клетки OE1-1, высвобожденные из структуры биопленки. Шкала 5 мкм.

Клетки

R. solanacearum штамма OE1-1, инкубированные в апопластных жидкостях растений томата, производят биопленки грибного типа

Для оценки образования биопленок клеток OE1-1 in vitro мы проанализировали клетки OE1-1, инкубированные в апопластные жидкости (Shinohara et al ., 2005; de Wit and Spikman, 1982; Zuluaga et al ., 2013) и жидкости ксилемы (Shinohara et al ., 2005; Zuluaga et al ., 2013) из томатов. OE1-1 инкубировали в апопластных жидкостях и ксилемных жидкостях в лунках микротитровального планшета из поливинилхлорида (ПВХ) в течение 24 часов, и плотность бактерий достигла OD 600 = 0.8. В этих условиях клетки OE1-1, инкубированные в жидкостях апопласта, продуцировали значительно больше биопленок, чем клетки, инкубированные в жидкостях ксилемы (рис. A).

Образование биопленок Ralstonia solanacearum штаммов in vitro . (а) Образование биопленки штаммом R. solanacearum OE1-1, инкубированным в апопластных жидкостях и ксилемных жидкостях растений томата, а также в среде ¼ × M63 в лунках планшета из ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым. (b) Образование биопленки штаммами OE1-1, OE1-1- lecM :: EZ Tn 5 (мутант lecM ) и мутант lecM , дополненный нативным lecM ( lecM -comp ) инкубировали в среде ¼ × M63 в лунках планшета из ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым.Звездочки указывают на значительное отличие от клеток дикого типа, растущих в жидкостях апопласта ( P <0,05, t ‐test).

Исследования живых бактериальных биопленок с помощью современной микроскопии показали, что эти сидячие сообщества часто состоят из сложных многоклеточных структур грибовидной формы (Klausen et al ., 2003). Чтобы проанализировать конфигурацию структур биопленок, OE1-1 инкубировали на наноперколяторах в течение 24 часов, когда плотность бактерий достигла OD 600 = 0.6. Конфигурации биопленок, производимых OE1-1, наблюдались с помощью SEM. Мы наблюдали плотно сгруппированные агрегаты клеток OE1-1, инкубированных в жидкостях апопласта (рис. А) и зрелых биопленочных структурах грибовидного типа (рис. Б). Кроме того, также наблюдались планктонные клетки, которые, как считается, высвобождаются из растворяющейся биопленки грибного типа (рис. C). Биопленки клеток OE1-1, инкубированных в ксилемной жидкости, были значительно менее развиты, чем в апопластных жидкостях (рис. D). Мы наблюдали сгруппированные агрегаты клеток OE1-1, но не наблюдали какой-либо зрелой биопленки грибного типа, продуцируемой OE1-1 (рис.д).

Наблюдение конфигураций биопленок, продуцируемых штаммами Ralstonia solanacearum , под растровым электронным микроскопом. OE1-1 инкубировали в апопластных жидкостях (a – c) и ксилемных жидкостях (d, e) растений томата на наноперколяторах. OE1‐1‐ lecM :: EZ‐ Tn 5 (мутант lecM ) (f, g) и мутант lecM , дополненный нативным lecM ( lecM ‐comp) (h), инкубировали. в апопластных жидкостях томатов на нано-перколяторах.Стрелками показаны планктонные клетки OE1-1, высвобождаемые из структур биопленок. Шкала 5 мкм.

Сахара влияют на формирование биопленок клетками

R. solanacearum , штамм OE1-1

Zuluaga et al . (2013) сообщили, что апопласт томатов значительно богаче сахарами, такими как сахароза, фруктоза, глюкоза, галактоза и манноза, чем ксилема, а R. solanacearum , вероятно, катаболизирует обильные сахара апопласта. Чтобы выяснить, почему клетки OE1-1 продуцируют значительно больше биопленок в жидкостях апопласта, чем в жидкостях ксилемы, мы проанализировали образование биопленок клетками OE1-1 в среде × M63, включая 1.0% арабинозы, фруктозы, фукозы, галактозы или маннозы в лунках планшета из ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым. OE1-1, инкубированный в среде × M63, продуцировал значительно меньше биопленок, чем OE1-1, инкубированный в жидкостях апопласта (рис. А). OE1-1, инкубированный в среде × M63, включая сахара в следующем порядке: арабиноза> манноза> фруктоза, продуцировал значительно больше биопленок, чем OE1-1, инкубированный в среде × M63 (рис. A).

Формирование биопленок штаммами OE1-1 (a) и OE1-1- lecM :: EZ Tn 5 ( мутант lecM , b), инкубированных в среде ¼ × M63, содержащей 1.0% арабинозы (Ara), фруктозы (Fru), фукозы (Fuc), галактозы (Gal) или маннозы (Man) в лунках планшета из ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым. Звездочки указывают на значительное отличие от клеток дикого типа, растущих в жидкостях апопласта ( P <0,05, t ‐test).

lecM участвует в колонизации межклеточных пространств штаммом R. solanacearum OE1-1 и его вирулентности на растениях томатов

Ralstonia solanacearum продуцирует лектин RS-IIL, кодируемый lecM , с высоким сходством последовательности с лектином PA-IIL Pseudomonas aeruginosa (Sudakevitz et al ., 2002, 2004). Расчетная аминокислотная последовательность показала, что RS-IIL имеет сигнальные пептиды на своем N-конце (Sudakevitz et al ., 2002, 2004). Неферментные белки в матриксе, такие как белки, связанные с клеточной поверхностью, и белки, связывающие внеклеточные углеводы, лектины, участвуют в формировании и стабилизации полисахаридной матричной сети и составляют связь между бактериальной поверхностью и EPS, образуя биопленки ( Флемминг и Вингендер, 2010). RS-IIL проявляет сродство к маннозе, фруктозе, фукозе, галактозе и арабинозе (Sudakevitz et al ., 2004).

Чтобы оценить участие lecM в колонизации межклеточных пространств OE1-1, листья 5-недельных растений томатов были инфильтрированы штаммами R. solanacearum в объеме 20 мкл при OD 600 = 0,1. Популяция мутанта lecM (OE1‐1‐ lecM :: EZ‐ Tn 5) в инфильтрированных листьях была значительно меньше, чем популяция OE1‐1 и мутанта lecM , трансформированного нативным lecM ( Инжир.a, lecM ‐comp). Все растения томатов увяли через 10 дней после инокуляции штаммами OE1‐1 и lecM ‐comp (рис. А). Напротив, мутант lecM утратил вирулентность на растениях томата (рис. А).

Динамика популяций Ralstonia solanacearum штаммов OE1‐1, OE1‐1‐ lecM :: EZ‐ Tn 5 (мутант lecM ) и мутанта lecM , дополненного нативным lecM ( lecM ‐comp) в листьях (a) и корнях (b) растений томата, инокулированных путем инфильтрации листьев и окунания корней, соответственно.Звездочки указывают на значительное отличие от дикого типа ( P <0,05, t ‐test). КОЕ, колониеобразующая единица.

Вирулентность штаммов Ralstonia solanacearum на растениях томатов. Бактериальное увядание на 8-недельных растениях томатов, инокулированных инфильтрацией листьев (а) и окунанием корней (б) штаммами R. solanacearum OE1-1, OE1-1- lecM :: EZ- Tn 5 ( мутант lecM ) и мутант lecM , дополненный нативным lecM ( lecM ‐comp).Растения оценивали по следующей шкале индекса болезни: 0 — увядание отсутствует; Увядание 1,1–25%; 2, 26–50% увядание; 3, увядание 51–75%; 4, увядание 76–99%; 5, мертвый.

При инокулировании путем окунания корней популяция мутанта lecM в корнях была значительно ниже, чем у OE1-1 и lecM -comp (рис. B), а мутант lecM потерял свою вирулентность (рис. . б). lecM ‐comp восстановила свою вирулентность на растениях томатов, аналогичную OE1‐1.

Мутация

lecM приводит к снижению способности прикрепления

Ralstonia solanacearum образует биопленки как на абиотических, так и на биотических поверхностях (Kang et al ., 2002; Менг и др. , 2011; Яо и Аллен, 2006; Чжан и др. ., 2014). Во время образования биопленки клетки штамма OE1-1 сначала прикрепляются к поверхности, а затем образуют плоские микроколонии, а затем — биопленки грибовидного типа. Мы наблюдали прикрепляющуюся способность штаммов, инкубированных в жидкостях апопласта, под фазово-контрастным микроскопом. Клетки OE1‐1 прикрепляются к целлюлозным мембранам (рис. А), аналогично предметным стеклам (рис. Б). Присоединение мутанта lecM к предметным стеклам (рис.c) был значительно меньше, чем у OE1‐1 (рис. b) и lecM ‐comp (рис. d).

Присоединяемость и образование микроколоний штаммов Ralstonia solanacearum . Нитроцеллюлозные мембраны (2 × 2 см 2 ), приготовленные из целлюлозных пробирок Visking (а) и предметных стекол (б – г), пропитывали суспензиями штаммов R. solanacearum OE1-1 (a, b), OE1-1 — lecM :: EZ- Tn 5 (мутант lecM , c) и мутант lecM , дополненный нативным lecM ( lecM -comp, d).

Мутация

lecM приводит к уменьшению образования биопленок

Затем мы проанализировали образование биопленок штаммами R. solanacearum в апопластных жидкостях в лунках планшета ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым. Штаммы инкубировали в апопластных жидкостях в лунках микротитровального планшета из ПВХ в течение 24 ч (бактериальная плотность при OD 600 = 0,8). В этих условиях мутант lecM продуцировал значительно меньше биопленок, чем OE1-1 и lecM -comp (рис.б).

Для анализа конфигурации биопленок, продуцируемых штаммами, их инкубировали в жидкостях апопласта на наноперколяторах в течение 24 часов (плотность бактерий при OD 600 = 0,6). Конфигурации биопленок, продуцируемых штаммами в этих условиях, наблюдали с помощью SEM. Мутантные клетки lecM агрегировали значительно меньше, чем OE1-1 (рис. F), и давали незрелые биопленки (рис. G). Наблюдались биопленочные структуры грибовидного типа, продуцируемые lecM ‐comp (рис.час).

RS-IIL показывает сродство к сахарам в порядке d-манноза> d-фруктоза> l-фукоза> l-галактоза> d-арабиноза (Sudakevitz et al ., 2004). Кроме того, применение d-арабинозы, d-маннозы и d-фруктозы усиливало образование биопленок клетками OE1-1 (рис. A). Мы проанализировали образование биопленок lecM мутантных клеток в среде ¼ × M63, включая каждый из этих сахаров в концентрации 1,0%, в лунках планшета ПВХ, окрашенных кристаллическим фиолетовым. Никакое применение сахара не влияло на формирование биопленки мутантными клетками lecM (рис.б).

Экспрессия

lecM зависит как от HrpG, так и от PhcA

Сообщалось, что экспрессия lecM положительно регулируется HrpG (Valls et al ., 2006). Однако формирование биопленки R. solanacearum зависит от функциональной PhcA, активируемой посредством определения кворума (Genin and Denny, 2012), а функциональная PhcA репрессирует экспрессию регулона hrp (Genin et al ., 2005; Yoshimochi ). et al ., 2009).Мы предположили, что, если lecM участвует в формировании биопленок, экспрессия lecM может зависеть не только от HrpG, но и от PhcA. Мы исследовали экспрессию lecM в штамме OE1-1, мутанте hrpG и удаленном мутанте phcA , выращенных в среде ¼ × M63 при OD 600 = 0,01 и OD 600 = 0,3 с использованием реальных количественные анализы обратной транскрипции-полимеразной цепной реакции (qRT-PCR). Экспрессия lecM в OE1-1 при OD 600 = 0.01 был значительно ниже, чем при OD 600 = 0,3 (рис.). Как при OD 600 = 0,01, так и при OD 600 = 0,3, экспрессия lecM в мутанте hrpG была значительно ниже, чем в OE1-1. Кроме того, экспрессия lecM в мутанте, удаленном phcA , была также значительно ниже, чем в OE1-1, как при OD 600 = 0,01, так и OD 600 = 0,3. Эти результаты показывают, что OE1-1 при OD 600 = 0.3 экспрессирует lecM сильнее, чем при OD 600 = 0,01, а экспрессия lecM зависит от HrpG и PhcA.

Экспрессия lecM в штамме Ralstonia solanacearum OE1-1, культивированном в апопластных жидкостях растений томатов, собранных при оптической плотности 0,01 и 0,3 при 600 нм (OD 600 ) и использованных для экстракции РНК, как описано в экспериментальных процедурах. Ген rpoD использовали в качестве внутреннего контроля для количественной полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР).Уровни РНК анализируемых генов выражены относительно уровня экспрессии rpoD . Эксперимент проводился как минимум дважды с использованием независимых партий образцов с аналогичными результатами. Показаны результаты для единственной репрезентативной выборки. Показаны средние значения ± стандартное отклонение (SD) (планки ошибок) трех определений кДНК из одного репрезентативного образца. КОЕ, колониеобразующие единицы.

Мутация

lecM приводит к снижению продуктивности EPS I.

Компоненты поверхности бактерий и внеклеточные соединения, такие как EPS, а также в первую очередь жгутики и липополисахариды имеют решающее значение для аутоагрегации и развития биопленок у большинства видов бактерий (Bogino et al. al ., 2013). Таким образом, мы количественно оценили общий основной EPS, EPS I, продуцируемый сопоставимыми числами (1,0 × 10 7 колониеобразующих единиц (КОЕ), ОП 600 = 0,01) клеток R. solanacearum , растущих на ¼ × M63. планшеты с использованием иммуноферментного анализа (ELISA). Мутант lecM продуцировал значительно меньше EPS I, чем OE1-1 и lecM -comp (рис.).

Иммунологический количественный анализ экзополисахарида I (EPS I) в супернатантах с использованием иммуноферментного анализа (ELISA) с анти- R.solanacearum EPS I антитела [оптическая плотность при 650 нм (OD 650 )]. Звездочки указывают на значительные различия в значениях OD 650 для клеток дикого типа ( P <0,05, t -test).

Обсуждение

Мы сосредоточились на колонизации межклеточных пространств штаммом OE1-1, который необходим для его вирулентности (Hikichi et al ., 2007). Микроскопические наблюдения в этом исследовании показали агрегацию клеток R. solanacearum в межклеточных пространствах растений томата (рис. И а) и образование биопленок на поверхностях клеток томатов, прилегающих к межклеточным пространствам (рис.б). Более того, клетки OE1-1 продуцируют зрелые биопленки грибного типа при инкубации в апопластных жидкостях растений томатов (Fig. A – c). Эти результаты демонстрируют, что клетки OE1-1 прикрепляются к клеткам томатов и образуют зрелые биопленки, что приводит к колонизации межклеточных пространств. Насколько нам известно, это первое сообщение об образовании биопленок с помощью R. solanacearum на клетках растений-хозяев после инвазии в межклеточные пространства и о биопленках грибного типа, продуцируемых R. solanacearum in vitro .

Некоторые белки в матрице биопленки выполняют структурные функции. Примеры таких внеклеточных белков включают PA-IL и PA-IIL в Pseudomonas aeruginosa (Diggle et al ., 2006; Tielker et al ., 2005). Было показано, что эти два лектина тесно связаны с вирулентностью бактерии, способствуя ее агрегации, продуцирующей биопленки (Gilboa-Garber, 1986), специфичности хозяина (Gilboa-Garber, 1996) и вирулентности (Gilboa-Garber and Garber, 1989).Лектин, RS-IIL, кодируемый lecM , демонстрирует высокое сходство последовательностей с PA-IIL (Sudakevitz et al ., 2004). Мутация lecM привела к значительному снижению образования биопленок (рис. B). Мутант lecM не продуцировал биопленок грибного типа при инкубации в апопластных жидкостях растений томата (рис. G). Кроме того, мутант продемонстрировал значительно меньшую колонизацию межклеточных пространств, чем штамм дикого типа OE1-1 (рис.), Теряя свою вирулентность на растениях томатов, инокулированных не только методом листовой инфильтрации (рис.а), но и метод погружения корня (рис. б). Следовательно, RS-IIL, кодируемый lecM , участвует в формировании биопленок патогенной бактерией сосудистых растений R. solanacearum штамм OE1-1 на поверхности клеток томатов, прилегающих к межклеточным пространствам. Это образование биопленки клетками OE1-1 после инвазии в межклеточные пространства корней может потребоваться для ее вирулентности.

Белковые придатки, пили и жгутики являются факторами вирулентности бактерий, которые приводят к патогенезу у растений, животных и человека-хозяев и играют ключевую роль на этапах колонизации (Bogino et al ., 2013). Начальная стадия образования биопленки зависит от подвижности бактерий, опосредованной полярным жгутиком и множественными пилами IV типа, которые позволяют фенотипу свободного плавания достичь подходящей поверхности, а фенотипу поверхностной подвижности — прикрепляться к поверхности и перемещаться по ней (Конрад , 2012). Таким образом, эти придатки играют двойную роль в качестве подвижных машин, которые позволяют перемещаться между поверхностями и адгезивов, которые прикрепляют бактерии к поверхностям (Petrova and Sauer, 2012). Считается, что недостаток подвижности увеличивает образование биопленок у R.solanacearum (Meng et al ., 2011; Yang et al ., 2013; Yao and Allen, 2006; Zhang et al ., 2014). Штамм AW1 R. solanacearum использует пили типа IV для поверхностной адгезии и подергивания подвижности (Kang et al ., 2002). Полярная адгезия к растительным клеткам опосредуется PilA. Мутант pilA менее вирулентен и не может образовывать трехмерные агрегаты. Интересно, что прикрепляющаяся способность мутанта lecM была значительно меньше, чем у OE1‐1 (рис.в). Положительная регуляция как HrpG, так и PhcA привела к экспрессии lecM во время образования биопленки с помощью OE1-1 (рис.). Таким образом, на начальной стадии формирования биопленок RS-IIL может участвовать в прикреплении OE1-1 к поверхностям во взаимодействии со жгутиками и пилями IV типа.

Судакевиц и др. . (2004) сообщили, что экстракты штамма R. solanacearum GMI1000 обладают гемагглютинирующей активностью, специфичной для фукозы и фруктозы / маннозы, которую можно отнести к двум лектинам, RSL и RS-IIL, соответственно.RS-IIL проявляет сродство к маннозе, фруктозе, фукозе, галактозе и арабинозе. RS-IIL демонстрирует высокое сходство последовательностей с PA-IIL, который является белком внешней мембраны P. aeruginosa . Поскольку манноза, фукоза, фруктоза и арабиноза широко распространены в стенках растительных клеток, Sudakevitz et al . (2004) предположили, что RS-IIL может прилипать к этим соединениям клеточной стенки растений и вносить вклад в бактериальную вирулентность. Однако клетки OE1‐1, прикрепленные к стеклу, скользят аналогично целлюлозным мембранам (рис.а, б). Кроме того, мутация lecM привела к уменьшению прикрепления бактерий к предметным стеклам (рис. C). Эти результаты предполагают, что адгезия RS-IIL к этим соединениям клеточной стенки растений может не принимать непосредственного участия в прикреплении клеток OE1-1 к поверхностям растительных клеток.

Было показано, что производство PA-IIL регулируется сигналами кворума (Winzer et al ., 2000). Транскриптомный анализ штамма R. solanacearum GMI1000 и его мутантов hrp показал положительную регуляцию экспрессии lecM с помощью HrpG (Valls et al., 2006). Кроме того, экспрессия lecM зависела не только от HrpG, но и от PhcA (рис.). Активация PhcA регулируется в ответ на плотность клеток с помощью механизма определения кворума (Flavier et al ., 1997). При плотности бактериальных клеток более 10 7 КОЕ / мл функциональный PhcA, активированный посредством определения кворума, подавляет экспрессию оперона prhIR , что приводит к подавлению экспрессии гена hrp (Genin et al ., 2005; Yoshimochi et al ., 2009). Таким образом, мы предполагаем, что положительная регуляция экспрессии lecM как HrpG, так и PhcA может обеспечивать экспрессию lecM при любой плотности бактериальных клеток (рис.). Кроме того, экспрессия lecM в OE1-1 при OD 600 = 0,3 была значительно выше, чем при OD 600 = 0,01. Лектины связывают бактериальные клетки с полимерным матриксом (Diggle et al ., 2006; Tielker et al ., 2005). Применение арабинозы, фруктозы и маннозы, к которым RS-IIL, как сообщается, проявляет сродство, привело к усиленному образованию биопленок клетками OE1-1 (рис. A). Однако применение этих сахаров не усиливало образование биопленок у мутанта lecM (рис. B). Кроме того, мутация lecM привела к снижению продукции EPS I бактериями (фиг.) И незрелой биопленке, образованной бактериями (фиг. G). Следовательно, сродство RS-IIL к сахарам может способствовать определенным стадиям образования биопленок с помощью OE1-1, таким как образование и стабилизация полисахаридной матричной сети и связь между бактериальной поверхностью и EPS.

Зулуага и др. . (2013) сообщили, что апопласт томатов значительно богаче сахарами, такими как сахароза, фруктоза, глюкоза, галактоза и манноза, чем ксилема, а R. solanacearum , вероятно, катаболизирует все содержащиеся в апопласте сахара. Клетки OE1-1, инкубированные в жидкостях апопласта, продуцировали значительно больше биопленок, чем клетки, инкубированные в жидкостях ксилемы (рис.). Кроме того, мы не наблюдали биопленки грибовидного типа из клеток OE1-1, инкубированных в ксилемной жидкости (рис.д). Эти результаты предполагают, что апопласты, такие как межклеточные пространства, могут обеспечивать благоприятные условия для образования биопленок клетками OE1-1, поскольку они богаты сахарами. Из-за низкого содержания сахара клетки OE1‐1 агрегируются в ксилемной жидкости, но образуют более низкую биопленку.

Наши настоящие результаты показали, что жидкости апопласта предпочтительнее для образования биопленок OE1-1, чем жидкости ксилемы. Следовательно, мы постулируем, что после вторжения в корни клетки OE1-1, вторгающиеся в межклеточные пространства, сначала прикрепляются к поверхностям клеток-хозяев, прилегающих к межклеточным пространствам.RS-IIL может участвовать в прикреплении клеток OE1-1. Первым этапом формирования биопленки является фаза прикрепления, в которой клетки обратимо прикрепляются к поверхностям и в конечном итоге становятся необратимо прикрепленными (Monds and O’Toole, 2009). Переход от обратимого прикрепления к необратимому имеет решающее значение для образования биопленок. После прикрепления к растительным клеткам клетки OE1-1 экспрессируют гены hrp для конструирования T3SS и секретирования эффекторов. Это приводит к подавлению врожденного иммунитета растений-хозяев (Kiba et al ., 2014, 2012; Nakano et al ., 2013), позволяя бактериям расти и создавать микроколонии. Существенный рост бактерий вызывает индукцию кворума, что приводит к образованию биопленки. RS-IIL также может участвовать не только в прикреплении клеток OE1-1 к клеткам растений, но также в формировании и стабилизации полисахаридной матричной сети и связи между бактериальной поверхностью и EPS, участвующими в формировании биопленки OE1-1. . Таким образом, образование биопленок клетками OE1‐1 на поверхности клеток томата после инвазии в межклеточные пространства необходимо для его вирулентности.

Экспериментальные процедуры

Бактериальные штаммы, плазмиды и условия роста

Бактериальные штаммы и плазмиды, использованные в этом исследовании, перечислены в таблице. Штаммы Ralstonia solanacearum обычно выращивали в среде ¼ × M63 (Cohen and Rickenberg, 1956) при 30 ° C, а штаммов Escherichia coli выращивали в среде Лурия-Бертани (LB) (Hanahan, 1983) при 37 ° C. В селективных средах использовали следующие антибиотики в указанных количествах (мкг / мл): ампициллин 75; хлорамфеникол, 50; гентамицин, 50; канамицин, 50.

Таблица 1

Штаммы и плазмиды, использованные в этом исследовании.

Oh38 90g03 08 1
Соответствующие характеристики Источник
Плазмиды, используемые для клонирования
pMD20 Производное pUC19, Amp41
производное pMD20, несущее фрагмент размером 1,6 кб, содержащий GFP под контролем промотора Rsc0297, Amp r Это исследование
pUC18 ‐ mini‐ Tn 7T ‐ Gm Gm r Choi et al.(2005)
pTNS2 Хелперная плазмида, несущая ген транспозазы Т7 Choi et al. (2005)
pHSG398 cml r Takara (Ohtsu, Japan)
pUCD800 pSa ori , pBR322 ori 4, 99008 и другие. (1985)
pHSG398lecM производное pHSG398, несущее фрагмент длиной 3,8 т.п.н., содержащий lecM и sacB из pUCD800, cml r Это исследование
pUCDФрагмент размером 3 т.п.н., содержащий lecM Это исследование
Конечные векторы, введенные в Ralstonia solanacearum путем естественной трансформации
pgOE1-1 pUC18 ‐ mini‐ Tn 7T ‐ Gm производное, несущее G000FP, конъюгированный с Rsc0297 9 Это исследование
pHHSG398lecM :: EZ ‐ Tn5 Производное pHSG398lecM, вставленное с Tn EZ :: TN Это исследование
pUC18 ‐ mini‐ 900 ‐ M Tnm 900 pUC18 ‐ mini‐ Tn 7T ‐ Gm производная с номером 1.Фрагмент размером 3 т.п.н., содержащий lecM Это исследование
Escherichia coli штамм
DH5α recA1 endA1 gyrA96 thi ‐ 1 hsdR17supE44 Δ ( lac ) U169 80lac ΔM15) Takara (Оцу, Япония)
R. solanacearum штаммы
OE1-1 Штамм дикого типа, филотип I, раса 1, биовар 4 Liu et al.(2009)
gOE1‐1 Трансформант OE1‐1 с pgOE1‐1, Gm r Это исследование
OE1‐1‐ lecM :: EZ ‐ 908 lecM :: Tn EZ :: TN мутант, Km r Настоящее исследование
lecM ‐comp Трансформант OE1‐1‐ lecM :: EZ ‐ Tn5 с pUC18 ‐ mini‐ Tn 7T ‐ Gm ‐ lecM, км r , Gm r Настоящее исследование

Общие манипуляции с ДНК

Выделение геномной ДНК, манипуляции с плазмидной ДНК и ПЦР проводили с использованием стандартных методик (Sambrook et al ., 1989). Ralstonia solanacearum трансформировали электропорацией, как описано ранее (Allen et al ., 1991). Матрицы для секвенирования двухцепочечной ДНК готовили с помощью наборов минипрепаратов Fast Gene ™ Plasmid (NIPPON Genetics, Токио, Япония), и последовательности определяли с использованием автоматического секвенатора ДНК, модель 373 (Applied Biosystems, Фостер-Сити, Калифорния, США). Данные последовательности ДНК анализировали с помощью программного обеспечения DNASYS ‐ Mac (Hitachi Software Engineering, Йокогама, Япония). Ферменты, включая эндонуклеазы рестрикции (Takara, Ohtsu, Japan), использовали в соответствии с инструкциями производителя.

Создание GFP-меченного OE1-1, gOE1-1

Фрагмент длиной 910 п.н. амплифицировали с помощью ПЦР из геномной ДНК OE1-1 со следующими праймерами: 5′-TGCTCGATGCGCTGTCGATC-3 ‘(названный cPfliC-1F) и 5’-TTTACTCATGGTGCACCTCCGGGCGGAAAC-3 ‘(297GFP-1R). Фрагмент длиной 727 п.н. амплифицировали с помощью ПЦР из pCmGFP со следующими праймерами: 5’-GAGGTGCACCATGAGTAAAGGAGAAGAAC-3 ‘(297GFP-2F) и 5′-TTATTTGTATAGTTCATCCATGCC-3’ (GFP-2R). Фрагмент размером 1,6 т.п.н. амплифицировали с помощью ПЦР с использованием этих двух фрагментов в качестве матриц и cPfliC-1F и GFP-2R в качестве праймеров.Фрагмент ПЦР вставляли в pMD20 (Takara), создавая pMD20gOE1-1. 1,6-kbp Bam HI- и Hind III-переваренный фрагмент pMD20gOE1-1 был лигирован в сайты Bam HI и Hind III pUC18-mini- Tn 7T-Gm (Choi et al. al ., 2005), создавая pgOE1-1. Эту плазмиду электропорировали в клетки OE1-1 с вектором экспрессии транспозазы T7 pTNS2 (Choi et al ., 2005), и был выбран устойчивый к гентамицину трансформант gOE1-1.Секвенирование ДНК ПЦР-амплифицированных фрагментов ДНК с использованием cPfliC-1F и GFP-2R в качестве праймеров было выполнено для проверки того, что вставленный ген GFP слит с конститутивно активным промотором RSc0297 в OE1-1 (данные не показаны).

Создание мутанта

lecM и конструкции комплементации

Фрагмент длиной 3,8 т.п.н. амплифицировали с помощью ПЦР из геномной ДНК OE1-1 со следующими праймерами (добавленные сайты Bam HI показаны курсивом): 5 ‘ ‐CG GGATCC ATGTCTCCGGTCTTGCCCAGG ‐ 3 ‘(Bam ‐ lecM ‐ FW) и 5’‐ CG GGATCC ATGGGACCAGGCTTCCAGGACG ‐ 3′ (Bam ‐ lecM ‐ RV).Расщепленный фрагмент Bam HI и 2,6 т.п.н. Bam HI- и Pst I-переваренный фрагмент ДНК, содержащий sacB из pUCD800 (Gay et al ., 1985), лигировали в Bam . HI и Pst, I сайтов pHSG398 (Takara) для создания pHHSG398lecM. Также использовалась система вставки, опосредованная транспозомами EZ: TN (Epicenter, Madison, WI, США). Транспозон EZ :: TN был вставлен в pHHSG398lecM в соответствии с инструкциями производителя.Транспозиционные клоны отбирали путем посева на среду PY (Kanda et al ., 2003a), содержащую канамицин и хлорамфеникол, создавая pHHSG398lecM :: EZ- Tn 5. Секвенирование ДНК фрагментов ДНК, амплифицированных ПЦР, с использованием 5′-CTTTCGGAGATTCACTCGC-3 ′ (LecM ‐ pSQFW) и 5′ ‐ AAGCAGTGGGAACCGATCAG ‐ 3 ′ (lecM ‐ pSQRV) в качестве праймеров выполняли для проверки правильности вставки EZ :: TN в lecM (данные не показаны), показывая, что транспозон был вставлен между 40-м и 41-м нуклеотидами lecM .Эту плазмиду электропорировали в клетки OE1-1, и был выбран канамицин-устойчивый, хлорамфеникол-чувствительный и устойчивый к сахарозе рекомбинант, OE1-1- lecM :: EZ- Tn 5 (мутант lecM ). Для проверки правильности замены мутировавшего lecM в ОЭ1‐1 (данные не показаны).

Фрагмент размером 1,3 т.п.н. амплифицировали с помощью ПЦР из геномной ДНК OE1-1 со следующими праймерами: 5′-ACTACGAGGCCTACCTGTAC-3 ′ (lecM ‐ souho ‐ FW) и 5′ ‐ AGCGTGGAAAGACAAACGGC ‐ 3 ′ (lecM ‐ souho‐ Р.В.).Фрагмент ПЦР вставляли в pMD20, создавая pMD20lecM. 1,3-kbp Bam HI- и Hind III-переваренный фрагмент pMD20lecM был лигирован в сайты Bam HI и Hind III pUC18-mini- Tn 7T-Gm, создавая pUC18-mini- Tn 7T ‐ Gm ‐ lecM. Эту плазмиду электропорировали в мутант lecM с вектором экспрессии транспозазы Т7 pTNS2, и был выбран устойчивый к канамицину и гентамицину трансформант lecM -comp.Секвенирование ДНК амплифицированных ПЦР фрагментов ДНК с использованием lecM-souho-FW и lecM-souho-RV в качестве праймеров было выполнено для проверки вставки lecM в мутант lecM (данные не показаны).

Количественная ПЦР в реальном времени

lecM

Суммарная РНК была выделена из штаммов R. solanacearum при OD 600 = 0,01 и OD 600 = 0,3 с использованием набора High Pure RNA Isolation Kit (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany) в соответствии с инструкциями производителя.Обратную транскрипцию проводили с 500 нг тотальной РНК с использованием набора реагентов PrimeScript RT (Takara) в соответствии с инструкциями производителя. qRT-PCR выполняли в 20 мкл реакционной смеси, содержащей 1 мкл исходной кДНК и 10 мкМ соответствующих праймеров, с использованием системы реагентов для qPCR SYBR GreenER (Invitrogen, Tokyo, Japan) с системой Applied Biosystems 7300 для ПЦР в реальном времени. . Параметры циклов были одинаковыми для всех праймеров: начальная 95 ° C в течение 30 с, затем 40 циклов при 95 ° C в течение 5 с и 60 ° C в течение 31 с.В конце каждой ПЦР выполняли прогоны кривой плавления для проверки специфичности праймеров по присутствию единственного продукта. Фрагменты ДНК lecM и rpoD были синтезированы с использованием 5′-TCAGCCCAGCGGCCAGTTCAG-3 ‘(лектин-FW) и 5′-AGATGGGAGTCGTCGTCGTCGTG-3′ (rpoD-RV) соответственно. Затем была проведена ПЦР с использованием 5’-GGCTCAGCAAGGTGTATTCACGC-3 ‘(лектин-ORF-FW1) и лектина-FW для амплификации фрагмента ДНК длиной 343 п.н., специфичного для lecM , и 5′-ATCGTCGAGCGCAACATCCC-3′ (rpoD ) и rpoD-RV для амплификации фрагмента ДНК длиной 331 п.н., специфичного для rpoD .Специфичность праймеров в этих условиях ПЦР сначала проверяли электрофорезом в агарозном геле, который давал единственный продукт ожидаемого размера молекулы. Мы также проверили последовательности амплифицированных фрагментов ДНК путем прямого секвенирования с прямым праймером каждого соответствующего гена. Относительная количественная оценка экспрессии генов проводилась в соответствии с инструкциями для системы ПЦР в реальном времени Applied Biosystems 7300 с использованием метода сравнительного порога цикла (Ct) для расчета количественного значения.Все значения были нормализованы к значению экспрессии гена rpoD в качестве внутреннего стандарта в каждой исходной кДНК. Анализы экспрессии проводили по крайней мере с двумя биологическими повторениями, чтобы гарантировать воспроизводимость паттернов экспрессии. Характерные данные представлены на рисунках. Стандартные отклонения и различия между коэффициентами экспрессии необработанного контроля и других образцов были проверены на статистическую значимость с использованием t -test.

Наблюдение флуоресценции, происходящей от gOE1-1, в межклеточных пространствах листьев томатов под флуоресцентным фазово-контрастным микроскопом

Листья 5-недельных растений томатов ( Solanum lycopersicum cv.Ohgata-Fukuju) были инфильтрированы меченным GFP штаммом OE1-1 R. solanacearum (gOE1-1) в 50 мкл бактериальной суспензии при 1,0 × 10 8 КОЕ / мл с использованием одноразового шприца объемом 1 мл ( SS ‐ 01T, Терумо, Токио, Япония). После инкубации в течение 18 часов при 25 ° C флуоресценцию, полученную от gOE1-1, наблюдали через 18 часов после инфильтрации под флуоресцентным фазово-контрастным микроскопом (FSX-100, Olympus, Токио, Япония).

Наблюдение

клеток R. solanacearum в межклеточных пространствах листьев томатов под SEM

Листья 5-недельных растений томатов инфильтрировали штаммом OE1-1 в 50 мкл бактериальной суспензии при 1.0 × 10 8 КОЕ / мл с использованием одноразового шприца емкостью 1 мл. После инкубации в течение 18 и 24 часов при 25 ° C листья томатов фиксировали 2,5% глутаральдегидом в 0,1 м фосфатно-солевом буфере (PBS, pH 7,4) при комнатной температуре в течение 2 часов в условиях вакуума. После двукратной промывки листьев PBS и сушки при комнатной температуре нижние слои эпидермиса отделяли пинцетом. Листья с удаленным эпидермисом были подвергнуты вакуумному осаждению платиной с использованием устройства для нанесения ионного распыления (NeoCoater MP ‐ 19020NCTR, JEOL, Tokyo, Japan) в соответствии с инструкциями производителя.Образец на фильтре был установлен непосредственно на держателе образца и исследован с помощью сканирующего электронного микроскопа JSM ‐ 6010LV (JEOL).

Наблюдение за

клеток R. solanacearum , инкубированных на наноперколяторах под SEM

Ночные культуры штаммов R. solanacearum , скорректированные до OD 600 = 0,005 (10 мкл), использовали для инокуляции 190 мкл среды на наноперколяторы фильтруют (JEOL) и инкубируют без встряхивания в течение 24 часов при 30 ° C. После удаления супернатанта 100 мкл ледяного 4% параформальдегида в PBS было добавлено к бактериям на фильтрах наноперколяторов.Фиксацию продолжали при комнатной температуре в течение 1 ч. Фиксированные бактерии дважды промывали деионизированной водой и затем сушили при комнатной температуре. Бактерии на нано-перколяторных фильтрах были осаждены в вакууме с золотом с использованием устройства для нанесения ионного напыления (Hitachi E-1010, Hitachi High-Technologies Corporation, Токио, Япония) в соответствии с инструкциями производителя. Образец на фильтре был установлен непосредственно на держателе образца и исследован с использованием SEM Miniscope® TM ‐ 3000 (Hitachi High ‐ Technologies Corporation) и JSM ‐ 6010LV SEM.

Анализы биопленок

Производство биопленок штаммами R. solanacearum было измерено in vitro с использованием незначительной модификации анализа микротитровального планшета с ПВХ (O’Toole and Kolter, 1998). Вкратце, 5 мкл ночных культур R. solanacearum , доведенных до OD 600 = 0,005, использовали для инокуляции 95 мкл среды в лунки микротитровального планшета из ПВХ (NUNC MICRO WELL PLATE, Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, Массачусетс, США) и инкубировали без встряхивания в течение 24 ч при 30 ° C.Для количественной оценки развития биопленок в лунки добавляли 25 мкл 1,0% раствора кристаллического фиолетового. После 15 мин инкубации несвязавшееся кристаллическое фиолетовое пятно осторожно удалили пипеткой, а лунки промыли по очереди дистиллированной водой, 70% этанолом и дистиллированной водой. Кристаллический фиолетовый в каждой лунке солюбилизировали добавлением 100 мкл 100% этанола и количественно определяли по поглощению при 550 нм. Величину образования биопленки нормализовали по количеству клеток. Эта величина была названа относительным образованием биопленки (OD 550 / OD 600 ).

Прикрепляющая способность и образование микроколоний

Нитроцеллюлозные мембраны (2 × 2 см 2 ), полученные из целлюлозных трубок Visking, и предметные стекла были пропитаны суспензиями штаммов R. solanacearum при 1,0 × 10 8 КОЕ / мл в чашках Петри (диаметр 9 см). После инкубации в течение 24 ч при 30 ° C нитроцеллюлозные мембраны и предметные стекла наблюдали под фазово-контрастным микроскопом (FSX-100, Olympus).

Производительность EPS I

Количественный анализ продукции EPS I был проведен с использованием ELISA.Ночную культуру штаммов R. solanacearum промывали и разбавляли до плотности клеток 1,0 × 10 3 КОЕ / мл. Аликвоту 100 мкл этой клеточной суспензии разливали на чашки с агаровой средой ¼ × M63 и инкубировали в течение 2 дней при 30 ° C. Затем клетки ресуспендировали до 1,0 × 10 5 КОЕ / мл. Плотность клеток подтверждали посевом для разведения. EPS I был количественно определен с использованием антител против R. solanacearum EPS I с помощью ELISA (Agdia Inc., Элкхарт, Индиана, США) в соответствии с инструкциями производителя на объем 100 мкл (1.0 × 10 4 КОЕ) суспензии клеток (было оценено три технических повтора). Продуктивность EPS I количественно определяли по поглощению при 650 нм.

Анализы вирулентности

Растения томатов выращивали в горшках, содержащих смесь вермикулита и торфяного мха (3: 1), в камере для выращивания при 25 ° C и менее 10 000 лк в течение 16 часов в день; их поливали раствором Хогланда, разбавленным в пять раз (Hikichi et al ., 1999). Восьминедельные растения томатов инокулировали бактериями двумя способами.Для инфильтрации листьев в листья томатов (Roberts et al ., 1988) 50 мкл бактериальной суспензии с концентрацией 1,0 × 10 8 КОЕ / мл вводили в листья томатов с помощью одноразового шприца объемом 1 мл. Для инокуляции корней погружением (Hikichi et al ., 1999) корни томатов замачивали в бактериальной суспензии при 1,0 × 10 8 КОЕ / мл в течение 30 минут, а затем промывали проточной водой. Растения, инокулированные методом окунания корней, выращивали в горшках для водных культур (Yamato Water Culture Pot No.1, Yamato Plastic Co. Ltd., Яматотакада, Япония) с пятикратным разведением раствора Хогланда. Для всех анализов концентрации посевного материала определяли спектрофотометрически и подтверждали посевом для разведения. Все инокулированные растения выращивали в помещении для выращивания при 25 ° C и менее 10 000 лк в течение 16 часов в день. В каждом испытании обрабатывали 12 растений каждого штамма, получая 60 растений на штамм. Растения кодировали и проверяли на наличие симптомов увядания ежедневно после инокуляции. Растения оценивали по шкале индекса болезни следующим образом: 0 — отсутствие увядания; Увядание 1,1–25%; 2, 26–50% увядание; 3, увядание 51–75%; 4,76–99%; 5, мертвый.Каждый анализ повторяли в пяти последовательных испытаниях.

Популяции бактерий в растениях томатов

Инфицированная бактериями область (0,5 см 2 ) в листьях томата вырезали из пяти растений каждого набора ежедневно после инфильтрации. Корни вырезали через 0, 1, 2 и 3 дня после инокуляции с пяти растений каждого набора, которые были инокулированы бактериями через корни. Каждый образец растирали в 1 мл дистиллированной воды с помощью ступки и пестика. 0,1 мл образца исходной суспензии или 10-кратного серийного разведения наносили на три чашки со средой Хара-Оно (Hara and Ono, 1983).Для мутанта lecM и lecM -comp среда содержала 50 мкг / мл канамицина и 50 мкг / мл гентамицина соответственно. Колонии подсчитывали через 2 дня инкубации при 30 ° C.

Экстракция апопласта и ксилемы

Жидкость апопласта из листьев была экструдирована модифицированными методами de Wit и Spikman (1982), Shinohara et al . (2005) и Зулуага и др. . (2013). Вкратце, третий лист верхушки 5-недельного растения томата был разрезан, промыт дистиллированной водой и высушен бумажным полотенцем.Затем в шприц емкостью 1 мл вводили от одного до трех листьев с 15 мл дистиллированной воды и применяли циклы давление-вакуум до тех пор, пока листья полностью не пропитались. После инфильтрации листья осторожно вынимали из шприца и промокали бумажным полотенцем. Затем каждый лист вводили в шприц объемом 5 мл, помещенный в коническую пробирку объемом 50 мл, содержащую пробирку для сбора 1,5 мл. Экстракт апопласта собирали центрифугированием пробирок при 4 000 g в течение 5 мин при комнатной температуре.Фракцию, собранную в пробирке объемом 1,5 мл, снова центрифугировали в течение 5 мин при 4000 g при комнатной температуре. Супернатант фильтровали через мембранный фильтр (размер пор 0,2 мкм) (Minisart CE; Sartorius, Gottingen, Germany) и хранили при -20 ° C до использования.

Ксилемную жидкость из стеблей экструдировали модифицированными методами Shinohara et al . (2005) и Зулуага и др. . (2013). Вкратце, 5-недельные растения томатов срезали бритвенным лезвием у стеблей примерно на 10 см над землей.Срезанный стебель промывали 2 мл дистиллированной воды и сушили бумажным полотенцем для удаления содержимого срезанных клеток и первого выделившегося сока. Стебли срезали бритвенным лезвием, а затем вводили в шприц объемом 5 мл, помещенный в коническую пробирку объемом 50 мл, содержащую пробирку для забора крови объемом 1,5 мл. Экстракт ксилемы собирали центрифугированием пробирок при 4000 g в течение 10 мин при комнатной температуре. Фракцию, собранную в пробирке объемом 1,5 мл, снова центрифугировали в течение 5 мин при 4000 g при комнатной температуре.Супернатант фильтровали через мембранный фильтр 0,2 мкм и хранили при -20 ° C до использования.

Благодарности

Мы благодарим сотрудников нашей лаборатории доктора Аями Канда и г-жу Шихо Исикава за анализ биопленок. Эта работа была поддержана грантами на научные исследования Министерства образования, культуры, спорта, науки и технологий Японии (№№ 24580066, 252

, 26660036), исследовательским грантом Кластера междисциплинарных наук, жизни и окружающей среды. Отделение медицинских наук Университета Кочи и исследовательский грант от Sumitomo Chemical Co.Ltd.

Список литературы

  • Алдон, Д. , Брито, Б. , Буше, К. а также Генин, С. (2000) Бактериальный сенсор контакта с растительной клеткой контролирует индукцию транскрипции генов патогенности Ralstonia solanacearum . EMBO J. 19, 2304–2314. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Аллен, К. , Хуанг, Ю. а также Секейра, Л. (1991) Клонирование генов, влияющих на продукцию полигалактуроназы в Pseudomonas solanacearum . Мол. Взаимодействие растений и микробов.4, 147–154. [Google Scholar]
  • Аро-Разу, И. , Вассе, Дж. , Монтрозье, Х. , Etchebar, C. а также Тригалет, А. (1998) Обнаружение и визуализация главного кислого экзополисахарида Ralstonia solanacearum и его роли в инфицировании корней томатов и колонизации сосудов. Евро. J. Plant Pathol. 104, 795–809. [Google Scholar]
  • Богино, П. , Олива, М. , Сорроче, Ф. а также Джордано, В. (2013) Роль бактериальных биопленок и поверхностных компонентов в растительно-бактериальных ассоциациях.Int. J. Mol. Sci. 14, 15 838–15 859. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Бранда, С. , Вик, С. , Фридман, Л. а также Колтер, Р. (2005) Биопленки: новый взгляд на матрицу. Trends Microbiol. 13, 20–26. [PubMed] [Google Scholar]
  • Брито, Б. , Маренда, М. , Барберис, П. , Буше, К. а также Генин, С. (1999) prhJ и hrp G, два новых компонента сигнально-зависимого регуляторного каскада, контролируемого PrhA в Ralstonia solanacearum .Мол. Microbiol. 31, 237–251. [PubMed] [Google Scholar]
  • Брито, Б. , Алдон, Д. , Барберис, П. , Буше, К. а также Генин, С. (2002) Система передачи сигнала через три компартмента трансдуцирует контакт-зависимый сигнал растительной клетки, контролирующий гены Ralstonia solanacearum hrp . Мол. Взаимодействие растений и микробов. 15, 109–119. [PubMed] [Google Scholar]
  • Брамбли, С. , Карни, Б.Ф. а также Денни, Т. (1993) Преобразование фенотипа в Pseudomonas solanacearum из-за спонтанной инактивации PhcA, предполагаемого регулятора транскрипции LysR.J. Bacteriol. 175, 5477–5487. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Чой, К. , Гейнор, Дж. Б. , Уайт, К. , Лопес, К. , Босио, К. , Каркофф-Швейцер, Р. а также Швейцер, Х. (2005) Система клонирования и экспрессии бактерий широкого диапазона на основе Tn 7. Nat. Методы, 2, 443–448. [PubMed] [Google Scholar]
  • Коэн, Г. а также Рикенберг, Х. (1956) La galactoside-perméase d ’ Escherichia coli . Анна. Inst. Пастер (Париж), 91, 693–720.[PubMed] [Google Scholar]
  • Конрад, Дж. (2012) Физика приповерхностной подвижности бактерий с использованием жгутиков и пилей IV типа: значение для образования биопленок. Res. Microbiol. 163, 619–629. [PubMed] [Google Scholar]
  • Данхорн, Т. а также Фукуа, К. (2007) Формирование биопленки бактериями, ассоциированными с растениями. Анну. Rev. Microbiol. 61, 401–422. [PubMed] [Google Scholar]
  • Дэйви, М. а также О’Тул, Г.А. (2000) Микробные биопленки: от экологии к молекулярной генетике.Microbiol. Мол. Биол. Ред. 64, 847–867. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Диггл, С. , Стейси, Р. , Додд, К. , Камара, М. , Уильямс, П. а также Винзер, К. (2006) Галактофильный лектин, LecA, способствует развитию биопленок у Pseudomonas aeruginosa . Environ. Microbiol. 8, 1095–1104. [PubMed] [Google Scholar]
  • Флавье, А. , Клаф, С.Дж. , Шелл, М.А. а также Денни, Т. (1997) Идентификация метилового эфира 3-гидроксипальмитиновой кислоты как нового ауторегулятора, контролирующего вирулентность в Ralstonia solanacearum .Мол. Microbiol. 26, 251–259. [PubMed] [Google Scholar]
  • Флемминг, Х. а также Вингендер, Дж. (2010) Матрица биопленки. Nat. Rev. Microbiol. 8, 623–633. [PubMed] [Google Scholar]
  • Гей, П. , Ле Кок, Д. , Штейнмец, М. , Беркельман, Т. а также Кадо, К. (1985) Процедура положительного отбора для включения элементов инсерционной последовательности в грамотрицательные бактерии. J. Bacteriol. 164, 918–921. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Генин, С. а также Денни, Т.П. (2012) Патогеномика комплекса видов Ralstonia solanacearum . Анну. Rev. Phytopathol. 50, 67–89. [PubMed] [Google Scholar]
  • Генин, С. , Брито, Б. , Денни, Т. а также Буше, К. (2005) Контроль генов системы секреции типа III (Hrp) Ralstonia solanacearum с помощью глобального регулятора вирулентности PhcA. FEBS Lett. 579, 2077–2081. [PubMed] [Google Scholar]
  • Гильбоа-Гарбер, Н. (1986) Лектины Pseudomonas aeruginosa : свойства, биологические эффекты и применение В: Микробные лектины и агглютинины: свойства и биологическая активность (Мирельман Д., ред.), с. 255–269. Нью-Йорк: Джон Уайли и сыновья. [Google Scholar]
  • Гильбоа-Гарбер, Н. (1996) К адгезионной терапии против Pseudomonas aeruginosa . Adv. Exp. Med. Биол. 408, 39–50. [PubMed] [Google Scholar]
  • Гильбоа-Гарбер, Н. а также Гарбер, Н. (1989) Совместное действие микробных лектинов с литической активностью как модель общей основной роли лектина. FEMS Microbiol. Ред. 5, 211–321. [PubMed] [Google Scholar]
  • Холл-Стодли, Л. . а также Стоодли, П.(2009) Развивающиеся концепции инфекций биопленок. Cell Microbiol. 11, 1034–1043. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ханахан, Д. (1983) Исследования трансформации Escherichia coli плазмидами. J. Mol. Биол. 166, 557–580. [PubMed] [Google Scholar]
  • Хара, Х. а также Оно, К. (1983) Экологические исследования бактериального увядания табака, вызываемого Pseudomonas solanacearum E. F. Smith. I. Селективная среда для выделения и обнаружения P .solanacearum. Бык. Окаяма Тоб. Exp. Стн. 42, 127–138. [Google Scholar]
  • Хейворд, Х. (1991) Биология и эпидемиология бактериального увядания, вызываемого Pseudomonas solanacearum . Анну. Rev. Phytopathol. 29, 65–87. [PubMed] [Google Scholar]
  • Хикичи, Ю. , Накадзава-Насу, Ю. , Китаносоно, С. , Судзуки, К. а также Окуно, Т. (1999) Поведение генетически люкс -маркированного Ralstonia solanacearum в привитых сортах томатов, устойчивых или чувствительных к бактериальному увяданию.Анна. Фитопатол. Soc. Jpn. 65, 597–603. [Google Scholar]
  • Хикичи, Ю. , Йошимочи, Т. , Цудзимото, С. , Шинохара, Р. , Накахо, К. , Канда, А. , Киба, А. а также Охниши, К. (2007) Глобальная регуляция механизма патогенности Ralstonia solanacearum . Plant Biotechnol. 24, 149–154. [Google Scholar]
  • Хуанг, Дж. , Карни, Б.Ф. , Денни, Т. , Вайсингер, А. а также Шелл, М.А. (1995) Сложная сеть регулирует экспрессию eps и других генов вирулентности Pseudomonas solanacearum . .J. Bacteriol. 177, 1259–1267. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Канда, А. , Охниши, С. , Томияма, Х. , Хасегава, Х. , Ясукочи, М. , Киба, А. , Охниши, К. , Окуно, Т. а также Хикичи, Ю. (2003a) Мутанты Ralstonia solanacearum с дефицитом механизма секреции типа III теряют способность колонизировать, что приводит к потере патогенности. J. Gen. Plant Pathol. 69, 250–257. [Google Scholar]
  • Канда, А. , Ясукочи, М. , Охниши, К., Киба, А. , Окуно, Т. а также Хикичи, Ю. (2003b) Эктопическая экспрессия эффекторного белка Ralstonia solanacearum PopA на ранней стадии инвазии приводит к потере вирулентности. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 16, 447–455. [PubMed] [Google Scholar]
  • Канда, А. , Цунейши, К. , Мори, А. , Охниши, К. , Киба, А. а также Хикичи, Ю. (2008) Аминокислотная замена в положении 740 в σ70 штамма OE1-1 Ralstonia solanacearum влияет на его рост in planta .Прил. Environ. Microbiol. 74, 5841–5844. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Канда, А. , Охниши, К. , Киба, А. а также Хикичи, Ю. (2009) Влияние С-концевой мутации PopA штамма Ralstonia solanacearum OE1-1 на развитие бактериального увядания. Завод Патол. 58, 159–169. [Google Scholar]
  • Канг, Ю. , Лю, Х. , Генин, С. , Шелл, М.А. а также Денни, Т. (2002) Ralstonia solanacearum требует, чтобы пили типа 4 прилипали к нескольким поверхностям, а также для естественного преобразования и вирулентности.Мол. Microbiol. 46, 427–437. [PubMed] [Google Scholar]
  • Киба, А. , Галис, И. , Ходжо, Ю. , Охниши, К. , Йошиока, Х. а также Хикичи, Ю. (2014) Белок-переносчик фосфолипидов SEC14 участвует в иммунных ответах растений, опосредованных передачей липидов, у Nicotiana benthamiana . PLoS One, 9, e98150. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Киба, А. , Накано, М. , Винсент-Поуп, П. , Такахаши, Х. , Савасаки, Т. , Эндо, Ю. , Охниши, К. , Йошиока, Х.а также Хикичи, Ю. (2012) Новый белок-переносчик фосфолипидов Sec14 из Nicotiana benthamiana активируется в ответ на инфекцию Ralstonia solanacearum , патоген-ассоциированные молекулярные структуры и эффекторные молекулы и участвует в иммунитете растений. J. Plant Physiol. 169, 1017–1022. [PubMed] [Google Scholar]
  • Клаузен, М. , Ааес ‐ Йогенен, А. , Молин, С. а также Толкер-Нильсен, Т. (2003) Участие миграции бактерий в развитии сложных многоклеточных структур в биопленках Pseudomonas aeruginosa .Мол. Microbiol. 50, 61–68. [PubMed] [Google Scholar]
  • Лю, Ю. , Канда, А. , Киба, А. , Хикичи, Ю. , Айно, М. , Кавагути, А. , Мидзогучи, С. , Накахо, К. , Шиоми, Х. , Такикава, Ю. а также Охниши, К. (2009) Молекулярное типирование японских штаммов Ralstonia solanacearum и связь со способностью вызывать гиперчувствительную реакцию у табака. Дж . Gen. Plant Pathol. 75, 369–380. [Google Scholar]
  • Мэнсфилд, Дж., Генин, С. , Магори, С. , Цитовский, В. , Шриариян, М. , Рональд, П. , Доу, М. , Вердье, В. , Пиво, С. ; Мачадо, М.А. , Тот, И. , Салмонд, Г. а также Фостер, Г. (2012) Топ-10 патогенных бактерий растений в молекулярной патологии растений. Мол. Завод Патол. 13, 614–629. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Мэн, Ф. , Бабуджи, Л. , Джейкобс, Дж. а также Аллен, К. (2015) Сравнительный анализ транскриптома выявляет холодные факторы вирулентности Ralstonia solanacearum race 3 биовара 2.PLOS ONE 10, e0139090. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Мэн, Ф. , Яо, Дж. а также Аллен, К. (2011) Мутант MotN Ralstonia solanacearum является гипермобильным и обладает пониженной вирулентностью. J. Bacteriol. 193, 2477–2486. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Мондс, Р. а также О’Тул, Г.А. (2009) Модель развития микробных биопленок: десять лет парадигмы для обзора. Trends Microbiol. 17, 73–87. [PubMed] [Google Scholar]
  • Моррис, К.Э. а также Монье, Дж. (2003) Экологическое значение образования биопленок бактериями, ассоциированными с растениями. Анну. Rev. Phytopathol. 41, 429–453. [PubMed] [Google Scholar]
  • Накано, М. , Нишихара, М. , Йошиока, Х. , Такахаши, Х. , Савасаки, Т. , Охниши, К. , Хикичи, Ю. а также Киба, А. (2013) Подавление фосфатазы фосфатидной кислоты DS1 подтверждает устойчивость к Ralstonia solanacearum в Nicotiana benthamiana . PLoS One, 8, e75124. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • О’Тул, Дж.А . а также Колтер, Р. (1998) Жгутиковые и судорожные движения необходимы для развития биопленки Pseudomonas aeruginosa. Мол. Microbiol. 30, 295–304. [PubMed] [Google Scholar]
  • Парсек, М. а также Фукуа, К. (2004) Biofilms 2003: новые темы и проблемы в исследованиях микробной жизни, связанной с поверхностью. J. Bacteriol. 186, 4427–4440. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Петрова, О. а также Зауэр, К. (2012) Сложные ситуации: ключевые компоненты, контролирующие прикрепление бактерий к поверхности.J. Bacteriol. 194, 2413–2425. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Рэми, Б. , Кутсудис, М. , фон Бодман, С. а также Фукуа, К. (2004) Формирование биопленок в растительно-микробных ассоциациях. Curr. Opin. Microbiol. 7, 602–609. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ринауди, Л. а также Джордано, В. (2010) Комплексный взгляд на образование биопленок у ризобий. FEMS Microbiol. Lett. 304, 1–11. [PubMed] [Google Scholar]
  • Робертс, П. , Денни, Т. а также Шелл, М.А. (1988) Клонирование гена egl из Pseudomonas solanacearum и анализ его роли в фитопатогенности. J. Bacteriol. 170, 1445–1451. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Сэмбрук, Дж. , Фрич, Э.Ф. а также Маниатис, Т. (1989) Молекулярное клонирование: лабораторное руководство, 2-е изд. Колд-Спринг-Харбор, Нью-Йорк: Лаборатория Колд-Спринг-Харбор. [Google Scholar]
  • Шелл, М.А. (2000) Контроль генов вирулентности и патогенности Ralstonia solanacearum с помощью сложной сенсорной сети.Анну. Rev. Phytopathol. 38, 263–292. [PubMed] [Google Scholar]
  • Шинохара, Р. , Канда, А. , Охниши, К. , Киба, А. а также Хикичи, Ю. (2005) Вклад биосинтеза фолиевой кислоты в пролиферацию Ralstonia solanacearum в межклеточных пространствах. Прил. Environ. Microbiol. 71, 417–422. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Шриханта, Ю. , Dowideit, S.J. , Эдвардс, Дж. , Фальсетта, М. , Ву, Х.Дж. , Харрисон, О. , Фокс, К. , Сейб, К.Л. , Магуайр, Т. , Ван, А. , Дева, M.C. , Гриммонд, С. , Апичелла, М.А. а также Дженнингс, М. (2009) Фазварионы опосредуют случайное переключение экспрессии генов у патогенных Neisseria. PLoS Pathog. 5, E1000400. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Судакевиц, Д. , Имберти, А. а также Гильбоа-Гарбер, Н. (2002) Производство, свойства и специфичность нового бактериального лектина, связывающего L-фукозу и D-арабинозу, агрессивного патогена растений Ralstonia solanacearum и его сравнение с родственными растительными и микробными лектинами.J. Biochem. 132, 353–358. [PubMed] [Google Scholar]
  • Судакевиц, Д. , Костланова, Н. , Блатман ‐ Ян, Г. , Митчелл, Э. , Леррер, Б. , Виммерова, М. , Каткофф, Д.Дж. , Имберти, А. а также Гильбоа-Гарбер, Н. (2004) Новый Ralstonia solanacearum высокоаффинный маннозо-связывающий лектин RS-IIL, структурно напоминающий фукозоспецифический лектин PA-IIL Pseudomonas aeruginosa . Мол. Microbiol. 52, 691–700. [PubMed] [Google Scholar]
  • Тилкер, Д., Хакер, С. , Лорис, Р. , Стратманн, М. , Вингендер, Дж. , Вильгельм, С. , Розенау, Ф. а также Jaeger, K.E. (2005) Pseudomonas aeruginosa лектин LecB расположен на внешней мембране и участвует в образовании биопленок. Микробиология, 151, 1313–1323. [PubMed] [Google Scholar]
  • Вальс, М. , Генин, С. а также Буше, К. (2006) Интегрированная регуляция системы секреции типа III и других детерминант вирулентности у Ralstonia solanacearum . PLoS Pathog.2, е82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Ван Гийсегем, Ф. , Гоф, К. , Зищек, К. , Никё, Э. , Арлат, М. , Генин, С. , Барберис, П. , Герман, С. , Кастелло, П. а также Буше, К. (1995) Кластер генов hrp из Pseudomonas solanacearum , который контролирует выработку системы секреции типа III, кодирует восемь белков, связанных с компонентами бактериального комплекса биогенеза жгутиков бактерий. Мол. Microbiol. 15, 1095–1114. [PubMed] [Google Scholar]
  • Вассе, Дж., Фрей, П. а также Тригалет, А. (1995) Микроскопические исследования межклеточной инфекции и инвазии протоксилемы корней томатов с помощью Pseudomonas solanacearum . Мол. Взаимодействие растений и микробов. 8, 241–251. [Google Scholar]
  • Уэбб, Дж. , Гивсков, М. а также Кьеллебег, С. (2003) Бактериальные биопленки: прокариотические приключения в многоклеточности. Curr. Opin. Microbiol. 6, 578–585. [PubMed] [Google Scholar]
  • Винзер, К. , Фальконер, К. , Гарбер, Северная Каролина , Диггл, С.П. , Камара, М. а также Уильямс, П. (2000) Pseudomonas aeruginosa лектинов PA-IL и PA-IIL контролируются кворумом и RpoS. J. Bacteriol. 182, 6401–6411. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • де Вит, П.Дж.Г. а также Спикман, Г. (1982) Доказательства появления в межклеточной жидкости возбудителей некроза, специфичных для рас и сортов, совместимых взаимодействий между Cladosoprium fulvum и томатом. Physiol. Завод Патол. 21, 1–11.[Google Scholar]
  • Ябуучи, Э. , Косако, Ю. , Яно, И. , Хотта, Х. а также Нисиучи, Ю. (1995) Перенос двух видов Burkholderia и Alcaligenes в Ralstonia gen .: предложение Ralstonia pickettii (Ralston, Palleroni and Doudoroff, 1973). nov., Ralstonia solanacearum (Smith 1896) гребн. ноя и Ralstonia eutropha (Davis, 1969) comb. ноя Microbiol. Иммунол. 39, 897–904. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ян, В.С. , Линь, Ю.М. , Ченг, Ю.С. а также Ченг, К. (2013) Ralstonia solanacearum RSc0411 ( lptC ) является детерминантом полной вирулентности и выполняет специфичную для штамма новую функцию в активности T3SS. Микробиология 159, 1136–1148. [PubMed] [Google Scholar]
  • Яо, Дж. а также Аллен, К. (2006) Хемотаксис необходим для вирулентности и конкурентоспособности возбудителя бактериального увядания Ralstonia solanacearum . J. Bacteriol. 188, 3697–3708. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Йошимочи, Т., Хикичи, Ю. , Киба, А. а также Охниши, К. (2009) Глобальный регулятор вирулентности PhcA отрицательно контролирует регуляторный каскад Ralstonia solanacearum hrp , подавляя экспрессию сигнальных белков PrhIR. J. Bacteriol. 191, 3424–3428. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Чжан, Л. , Сюй, Дж. , Сюй, Дж. , Чжан, Х. , Он, Л. а также Фэн, Дж. (2014) TssB важен для вирулентности и необходим для системы секреции типа VI у Ralstonia solanacearum . .Microb. Патог. 74, 1–7. [PubMed] [Google Scholar]
  • Сулуага, А. , Пуигверт, М. а также Вальс, М. (2013) Новые поступления растений, влияющие на Ralstonia solanacearum во время заражения. Передний. Microbiol. 4, 349. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

Frontiers | Быстрая количественная оценка биопленок S. aureus на поверхности сосудистого трансплантата in vitro

Введение

Хотя бактериальные биопленки естественным образом встречаются в зубном налете (Sanz et al., 2017), их присутствие в основном связано с критическими заболеваниями, такими как инфекции верхних дыхательных путей или урогенитального тракта, перитонит и имплантированные медицинские устройства, которые все чаще используются (Lynch and Robertson, 2008; Romling et al., 2014) .

Сосудистые трансплантаты используются при реконструкции аорты, а из-за отсутствия материала аутологичных вен также при операциях периферического шунтирования. Несмотря на самые строгие гигиенические меры предосторожности во время операции, инфекции сосудистого трансплантата (VGI) встречаются в 2–4% случаев и связаны с высокими показателями заболеваемости и смертности (10–75%) (Hepp, 2009; Young et al., 2012). Грамположительные микроорганизмы, такие как Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis , обычно являются причиной инфекций трансплантата аорты (Chaufour et al., 2017).

Бактериальная колонизация поверхности сосудистого трансплантата связана с производством бактериальной биопленки, накоплением внеклеточного полимерного матрикса (EPS), состоящего из полисахаридов, белков, гликолипидов и бактериальной ДНК (Becker et al., 2014). EPS защищает бактерии, предотвращая проникновение макромолекул, таких как антибиотики и воспалительные клетки иммунной защиты, в матрицу биопленки, а также отображая диффузионный барьер для молекул с антимикробными свойствами (Olsen, 2015).Внутри биопленки субпопуляции могут становиться метаболически неактивными и образовывать спящие клетки-персистеры. Поскольку некоторые антибиотики эффективны только в отношении метаболически активных бактерий, покоящиеся бактерии могут быть нечувствительны к антибиотикам (Lewis, 2007).

Наряду со стандартизованными предоперационными и периоперационными мерами профилактики против ИГИ (предварительный скрининг на множественную лекарственную устойчивость, контроль параметров инфекции, антимикробная профилактика), также может быть региональное высвобождение антибиотиков из сосудистых трансплантатов (предварительное замачивание трансплантата антибиотиками). играют эффективную роль (Килинг и др., 2009; Куен и др., 2010; Bisdas et al., 2012).

Растущая устойчивость и толерантность бактериальных биопленок к антибиотикам требует использования альтернативных противомикробных веществ. Альтернативой терапии биопленок S. aureus на сосудистых трансплантатах могут быть, например, эндолизины бактериофагов, такие как HY-133, со специфической эффективностью против S. aureus (Idelevich et al., 2011, 2016; Herten et al. , 2017). Чтобы оценить противомикробную эффективность таких альтернативных противомикробных веществ, необходимо количественное определение бактериальных биопленок.

Для обнаружения бактериальных биопленок доступно несколько методов, основанных на (а) накоплении красителя / пигментов, связывающихся с отрицательными зарядами, присутствующими в EPS, например кристаллический фиолетовый (O’toole et al., 2000; Stepanovic et al. ., 2000) или сафранин (Patterson et al., 2010), или (b) ДНК-связывающие красители (DAPI, Hoechst, SYTO9 или акридиновый оранжевый, Palestrant et al., 2004; Peeters et al., 2008) или КПЦР, или (c) метод культивирования [расчет колониеобразующих единиц (КОЕ) (Alt et al., 2004)], время повторного роста до определенной мутности] или (d) определение метаболической активности [АТФ (Gracia et al., 1999; Kapoor and Yadav, 2010), соль тетразолия МТТ, резазурин (аламарский синий) (Hatzinger et al., 2003; Pettit et al., 2009)] или целостность мембраны (например, окрашивание живого / мертвого SYTO9 / пропидия йодид, Tawakoli et al. ., 2013).

Однако количественная оценка бактериальных биопленок в основном проводилась на поверхности полистирола, для других поверхностей доступно лишь несколько методов (Pitts et al., 2003). Для количественной оценки биопленок на постоянных устройствах подсчет КОЕ, по-видимому, до сих пор был стандартным методом и заменил предыдущее радиоактивное мечение бактерий (Schmitt et al., 1986).

Целью настоящего исследования была проверка модели in vitro для быстрой количественной оценки прилипания бактериальной биопленки к материалу сосудистого трансплантата с помощью анализа АТФ по сравнению с подсчетом КОЕ и анализом кристаллического фиолетового (Cry).

Методы

Ночное культивирование бактерий

Для экспериментов использовали два клинических изолята S. aureus (BEB-029 и BEB-295), продуцирующих биопленку, а также лабораторный штамм Sh2000. Видовая принадлежность подтверждена обнаружением S.aureus -специфический ген nuc и устойчивость к метициллину определяли путем обнаружения гена mecA , как описано в другом месте (Becker et al., 2006). Изоляты инкубировали в течение ночи в триптическом соевом бульоне (TSB) при 36 ° C.

Экспериментальная установка

Материал сосудистого трансплантата (дакрон (полиэстер), трикотажный, (Uni-Graft ® K DV, B. Braun, Melsungen, Германия и PTFE MAXIFLO ™ Ultrathin, Vascutek, Terumo, Франкфурт, Германия) иссекали с помощью биопсийных точек (ø 5 мм, pmf medical AG, Кельн, Германия), чтобы получить стандартизированную площадь поверхности 0.25 см. 2 (фиг. 1). Диски помещали в 96-луночные планшеты из полистирола (PS) для культивирования и погружали с помощью крышек (анализ MBEC, Сент-Эдмонтон, Канада). Поверхностью контроля служил полистирол без дисков привитого материала. Все 96 лунок (с дисками и без них) инокулировали 10 -3 , разведенной ночной культурой в TSB с 0,25% глюкозой. Дополнительно выполняли контроль стерильности. После 4 и 18 ч инкубации при 36 ° C планктонные бактерии дважды смывали фосфатно-солевым буфером (PBS).Концентрацию биопленки измеряли на диске трансплантата и в контрольных лунках. Эксперименты проводились трижды.

Рисунок 1 . Схема эксперимента: (A) Материал сосудистого трансплантата препарировали с помощью биопсийных игл, в результате чего стандартизированная площадь поверхности составляла 0,25 см. 2 и (B) , помещенные в 96-луночные планшеты для культивирования клеток из полистирола (PS).

SEM-документация бактериальных биопленок

Ночные культуры разбавляли 10 -3 и засевали сосудистые трансплантаты (дакрон, ПТФЭ), как описано выше.После 18-часового культивирования диски дважды промывали PBS и бактериальную биопленку фиксировали 2,5% глутардиальдегидом в PBS в течение 24 часов при 8 ° C. Постфиксацию проводили 1% тетроксидом осмия в PBS в течение 20 мин при комнатной температуре. После обезвоживания через восходящую серию этанола, заканчивающуюся 100% этанолом, образцы сушили путем сушки критической точки (Emitech, Ashford, UK / CPD 030, Bal-Tec AG, Balzers, Лихтенштейн) в соответствии с инструкциями производителя. После этого на диски напыляли золотом (E5100, Polaron Instruments, UK / SC0005 Bal-Tec AG, Бальцерс, Лихтенштейн) и анализировали с помощью последовательного электронного микроскопа (S800, Hitachi, Дюссельдорф, Германия).

Количественное определение биопленки

Все тесты были выполнены в четырех повторностях для каждого изолята (3 штамма), времени культивирования (4 и 18 ч), поверхности культивирования (дакрон, ПТФЭ и контроль PS) и типа анализа.

Анализ АТФ

Концентрацию митохондриального аденозинтрифосфата (АТФ) измеряли с помощью анализа жизнеспособности микробных клеток BacTiter-Glo ™ (Promega, Мангейм, Германия), как описано ранее (Ickert et al., 2015; Herten et al., 2017). Количество жизнеспособных бактерий определяется количеством АТФ в них и прямо пропорционально концентрации АТФ.Анализ основан на реакции люциферазы, которая катализирует реакцию люциферина и АТФ на оксилюциферин путем испускания люминесцентного сигнала, который измеряется с помощью считывающего устройства для планшетов с несколькими метками (FLX800, Biotek, Bad Friedrichshall, Германия). Предыдущие эксперименты были выполнены с различными количествами раствора для лизиса, чтобы определить концентрацию, необходимую для лизиса клеток S. aureus . Оптимальное соотношение PBS и лизирующего раствора составляло 1: 3. Вкратце, после промывания в каждую лунку добавляли 50 мкл PBS и 150 мкл раствора BacTiter-Glo ™.После 5-минутного инкубационного периода при комнатной температуре люминесцентный сигнал регистрировали в отсчетах в секунду. Кроме того, были выполнены стандартные измерения с определенным количеством S. aureus и построены стандартные кривые АТФ с определенными концентрациями АТФ (0,1–50 мкМ) для каждого измерения. Практическое время для анализа АТФ составляло 0:30 мин, результаты были доступны через 0:40 мин.

Анализ кристаллического фиолетового

Сто микролитров 1% раствора кристаллического фиолетового добавляли в каждую лунку микротитрационного планшета, содержащего диски для трансплантатов, и инкубировали при комнатной температуре в течение 5 мин.Затем диски для трансплантатов переносили в лунки другого микротитрационного планшета, чтобы дважды промыть избыточное количество кристаллического фиолетового 200 мкл PBS. После аспирации PBS и сушки в течение ночи добавляли 50 мкл абсолютного этанола, затем встряхивали планшет и инкубировали в течение 10 минут. После удаления дисков трансплантата оптическую плотность измеряли при 570 нм с помощью спектрофотометра. Практическое время для анализа Cry составляло 1:10 ч, время инкубации 12 ч, результаты были доступны через 13:10 ч.

КОЕ Количество

Число КОЕ жизнеспособных бактерий измеряли путем нанесения серийных разведений на твердую среду. Для этого сосудистые трансплантаты промывали 100 мкл PBS и обрабатывали ультразвуком в течение 10 минут, чтобы отделить и разрушить биопленку от трансплантата в среду для восстановления. После удаления дисков для трансплантата последовательные разведения содержимого лунок высевали на триптический соевый агар (TSA) в трех экземплярах. После инкубации в течение 18 ± 2 ч при 36 ° C подсчитывали количество колоний.Практическое время для анализа КОЕ составляло 2:30 ч, время инкубации 12 ч, результаты были доступны через ~ 14:30 ч.

Статистический анализ

Статистический анализ был выполнен с помощью программного обеспечения IBM SPSS Statistics для Windows (выпуск 24, Чикаго, Иллинойс; США). Категориальные переменные выражены как частота и процент, тогда как непрерывные переменные представлены как среднее ± SD . Перед статистическим тестированием тест Колмогорова-Смирнова использовался для анализа каждой непрерывной переменной на предмет ее нормального распределения.Поскольку образцы не были распределены нормально, были использованы непараметрические тесты. Тест Манна-Уитни U использовался для сравнения непараметрических переменных двух независимых исследовательских групп. Коэффициент корреляции Пирсона (r) использовался для оценки взаимосвязи между двумя непрерывными переменными: АТФ против КОЕ на поверхности полистирола, на дакроне и на ПТФЭ, и в то время как КОЕ против Cry можно было определить только на поверхности полистирола из-за высокого фона окрашивания Плачь по сосудистому материалу.Модель линейной регрессии использовалась для оценки взаимосвязи между зависимой переменной ATP и независимой переменной CFU или Cry. Коэффициент детерминации ( R 2 ) был рассчитан как статистическая мера того, насколько хорошо линия регрессии приближается к реальным точкам данных. Различия считались достоверными при p <0,05. Точность измерения анализа АТФ рассчитывалась как коэффициент вариабельности (CV) путем оценки дисперсии между и внутри анализов.

Результаты

SEM-документация бактериальных биопленок

Документация

SEM бактериальных биопленок показала отчетливо узнаваемую биопленку на отдельных нитях вязанной поверхности дакрона (рисунки 2A – C). Напротив, гораздо более гладкая поверхность ПТФЭ показала скопившиеся группы бактерий, которые были более разбросаны (Рисунки 2D – F).

Рисунок 2 . СЭМ-анализ материала сосудистого трансплантата: верхний ряд: на волокне дакрона, нижний ряд: на поверхности ПТФЭ: (A) вязаная структура; (B) волокон; (В) С.aureus биопленка штамма Sh2000 на дакроновом волокне. (D , E) Поверхность из ПТФЭ с разным увеличением; (F) S. aureus штамм Sh2000 на ПТФЭ.

Количественное определение биопленки

Все три метода анализа могут определять количество биопленок на контрольной поверхности PS (рис. 3). Воспроизводимость анализа АТФ показала дисперсию между анализами 2,1 и дисперсию внутри анализа 8,1 на полистироле. Характер роста биопленки показал увеличение бактериальной биомассы с 4 до 18 часов инкубации во всех трех методах анализа.

Рисунок 3 . Количественное определение биопленки на контрольной поверхности из полистирола. (A) Концентрация митохондриального АТФ, (B) количество КОЕ, (C) Окрашивание кристаллическим фиолетовым.

Измерение Cry с помощью спектрофотометрии не подходило для поверхностей сосудистых трансплантатов из-за сильного неспецифического фонового окрашивания.

Что касается характера роста бактерий на различных материалах трансплантата, S. aureus штаммы BEB-029 и BEB-295 показали свои самые высокие концентрации АТФ и количество КОЕ, соответственно, на контроле PS, затем на дакроне и наименьшем на PTFE ( Рисунок 4).Это соответствует интенсивности роста, отображаемой на изображениях SEM. Для штамма S. aureus Sh2000 самая высокая концентрация АТФ была продемонстрирована на материале дакрон, за которым следовали PS и PTFE, в то время как в анализе КОЕ штамм Sh2000 показал самые высокие значения на PS (нижний ряд рисунка 4).

Рисунок 4 . Количественное определение штаммов S. aureus на различных поверхностях: полистирол, дакрон и ПТФЭ. Верхний : Концентрация АТФ. Нижний : подсчет КОЕ. Данные для поверхности полистирола дополнительно изображены на Рисунке 3.

Коэффициент корреляции Пирсона показал сильный коэффициент корреляции между АТФ и КОЕ на дакроне через 4 часа для BEB-029 (0,606, p = 0,013) и умеренно высокий для BEB-295 (0,442, p = 0,086) ( Таблица 1, Таблица S1). На PS очень сильная корреляция была обнаружена для BEB-029 (0,858, p <0,001) через 4 часа и умеренно сильная для Sh2000 (0.548, p = 0,065) через 18 ч. Аналогичным образом, сильная корреляция на поверхности PS может быть обнаружена между АТФ и Cry для BEB-295 через 4 часа (0,633, p = 0,027), умеренно сильная для BEB-029 (0,408, p = 0,188) и от сильной до очень сильной корреляции через 18 часов для всех трех штаммов ( r ≥ 0,741, p <0,026).

Таблица 1 . Коэффициент корреляции Пирсона штаммов S. aureus на различных материалах (дакрон или полистирол) для АТФ vs.КОЕ, АТФ против Cry и КОЕ против Cry.

Напротив, были только отрицательные корреляции между анализами АТФ и КОЕ для поверхности ПТФЭ (диапазон r = от -0,224 до -0,811). Время до получения результата составляло 0:40 ч для АТФ, 13:10 ч для Cry и 14:30 ч для анализов CFU.

При сравнении подсчета КОЕ с анализом Cry, сильный коэффициент присутствовал только через 4 часа для BEB-029 (0,628, p = 0,029).

Обсуждение

In Vitro Модель для быстрого количественного анализа

В этом исследовании оценивалась модель in vitro для быстрой количественной оценки прилипания бактериальной биопленки к материалу сосудистого трансплантата с помощью анализа АТФ.В частности, анализ АТФ сравнивали с подсчетом КОЕ, как методом золотого стандарта, и с окрашиванием кристаллическим фиолетовым. Используя BEB-029, анализ АТФ значительно коррелировал с методом КОЕ через 4 часа, где он был полезен в качестве быстрого анализа для количественной оценки биопленки. Однако корреляция с анализом КОЕ обычно зависела от деформации и поверхности (Таблица 1, Таблица S1). Кроме того, корреляция между КОЕ и анализами АТФ в целом была лучше для незрелой биопленки (4 часа), чем для зрелой биопленки (18 часов).

Сравнение анализа АТФ и Cry на контрольной поверхности PS выявило корреляции для обоих типов биопленок: через 4 часа сильная корреляция для BEB-295, умеренно сильная корреляция для BEB-029 и через 18 часов очень сильная корреляция для BEB-029 и сильная корреляция. один для двух других штаммов.

Что касается единственной умеренно сильной корреляции между анализом АТФ и количеством КОЕ на зрелых биопленках на ФС, можно отметить, что обе системы анализа АТФ и Cry показали сопоставимые корреляции даже для зрелых биопленок, и обе не коррелировали с методом КОЕ в зрелых биопленках. биопленка.Оба анализа не требуют отделения и отделения бактериальной биопленки, что может быть причиной отсутствия корреляции с КОЕ в зрелой биопленке. Количественная оценка биопленки показала, что колонизация использованных материалов (ПТФЭ по сравнению с дакроном) различалась во времени для трех штаммов S. aureus , продуцирующих биопленку. На ПТФЭ бактериальная колонизация была ниже, как определено анализом АТФ и подсчетом КОЕ. Эти количественные результаты могут быть подтверждены качественной визуализацией с помощью SEM.

В этом исследовании мы использовали статическую модель биопленки, которая дает полезные сведения о полезности различных анализов для количественной оценки биопленок. Динамические модели биопленки могут предоставить более дифференцированную информацию и должны быть включены в дальнейшие исследования сосудистых трансплантатов, подвергшихся воздействию непрерывного кровотока.

Анализ АТФ на поверхности полистирола (ПС)

Анализ АТФ ранее использовался для обнаружения бактериальных биопленок на поверхности полистирола (PS). Gracia et al.может показать, что для бактериальной экстракции АТФ из in vitro разработал биопленок S. aureus на покрытой поверхности PS с высокой бактериальной плотностью, ДМСО оказался предпочтительным по сравнению с коммерчески доступным реагентом для лизиса бактерий (верхние пределы обнаружения 2,3 × 10 9 и 2 × 10 8 КОЕ / мл соответственно) (Gracia et al., 1999).

Kapoor et al. использовали анализ биолюминесценции АТФ для тестирования биоцидной чувствительности быстрорастущих микобактерий и сравнили его с обычным методом посева на агар.Они продемонстрировали, что анализ АТФ был быстрым (1,5 часа) и показал высокую чувствительность и специфичность. Используя этот метод, анализ АТФ выявил линейную зависимость между внутриклеточным АТФ и количеством клеток (КОЕ / мл) в диапазоне КОЕ 10 3 -10 7 КОЕ / мл. (Капур, Ядав, 2010). В настоящем исследовании предел обнаружения для анализа АТФ для S. aureus находился в диапазоне от 1,5 × 10 2 до более чем 10 8 клеток, как описано в инструкции по применению, что, таким образом, сравнимо с пределы обнаружения, описанные Gracia и Kapoor (Gracia et al., 1999; Капур и Ядав, 2010).

Villain-Guillot et al. обнаружено S. epidermidis биопленок в 96-луночных полистирольных микротитровальных планшетах. Они представили очень хорошие корреляционные кривые ( r = 1,0) между значениями люминесценции при подсчете АТФ и количеством встроенной в биопленку S. epidermidis , определенным серийным разведением и культивированием (анализ КОЕ) (Villain-Guillot et al., 2007). Но в отличие от нашего метода каждую биопленку обрабатывали ультразвуком, бактериальную суспензию серийно разбавляли и часть ее использовали для анализа АТФ и для классического подсчета на чашках.Следовательно, в обоих анализах использовались те же разбавленные образцы бактерий, что и в исходном материале, без какой-либо ошибки, связанной с отслоением. В настоящем исследовании анализ АТФ использовался в качестве быстрого анализа, исключая этапы отделения и разведения. На поверхности PS корреляция между анализом АТФ и количеством КОЕ была очень сильной через 4 часа и умеренно сильной через 18 часов.

Анализ АТФ на постоянных медицинских устройствах / биоматериалах

Помимо полистирола, анализ АТФ также применялся для обнаружения бактериальных биопленок на постоянных медицинских устройствах / биоматериалах.Gracia et al. исследовали потенциал прилипания различных штаммов, продуцирующих биопленку, и штаммов, не продуцирующих биопленку, из штаммов S. aureus на биоматериалах, используемых в ортопедической хирургии (полиметилметакрилат, свежая кость, сталь и титановые сплавы, а также на стекле) (Gracia et al., 1997 ). Материал устройства был обработан ультразвуком для разрушения скоплений бактерий. Они использовали калибровочную кривую бактериального АТФ по сравнению с КОЕ, чтобы преобразовать количество молей АТФ в количество КОЕ. Была обнаружена линейная зависимость между обнаруженным бактериальным АТФ и количеством бактерий (КОЕ / мл) в интервале между 3.5 × 10 5 КОЕ / мл и 3,5 × 10 9 КОЕ / мл с высокой корреляцией ( r = 0,99). В настоящем исследовании сравнивали анализ АТФ и метод подсчета КОЕ, показывая сильную или умеренную корреляцию на дакроне через 4 часа и слабую корреляцию через 18 часов и без положительных корреляций на ПТФЭ. Наши данные нельзя сравнивать напрямую, поскольку Gracia et al. использовали раствор отделившихся бактерий для стандартной кривой.

Прилипание бактерий к сосудистым трансплантатам

Что касается прикрепления бактерий к сосудистым трансплантатам, было опубликовано исследований in vitro.Все они определяли адгезию бактерий как количество КОЕ, удаленных из материала трансплантата при обработке ультразвуком.

Schmitt et al. использовали 1 см 2 квадратов трансплантата ( n = 5/6), погруженных в бактериальную суспензию S. aureus, Escherichia coli и S. epidermidis . Прилипание бактерий зависело от дакрона и меньше всего от трансплантата из ПТФЭ (Schmitt et al., 1986). Это согласуется с нашими выводами из документации SEM (более разрозненные накопленные группы бактерий на PTFE) и было подтверждено анализом АТФ и подсчетом КОЕ.Kuehn et al. использовали ту же модель для оценки предварительной обработки сосудистых протезов антибиотиками с использованием семи трансплантатов на группу. Они смогли показать, что риск инфицирования сосудистого трансплантата был снижен за счет предварительной обработки протезов антибиотиками, в то время как соединение антибиотик / фибрин проявляло эффект замедленного высвобождения антибиотика (Kuehn et al., 2010). В настоящем исследовании мы использовали стандартизированные поверхности сосудистого трансплантата, вырезанные с помощью пробойника для биопсии с определенной площадью, что может быть проще, чем индивидуальное вырезание небольших совпадающих квадратов.

Sasaki исследовал проникновение бактерий Pseudomonas aeruginosa с внешней поверхности материала сосудистых трансплантатов, сравнивая обработку поверхности трансплантата, запечатанной эластомером и покрытой желатином. В экспериментальной установке 12 или 18 трансплантатов были разрезаны на 6-сантиметровые сегменты, размещены в U-образной конфигурации на культуральных чашках и засеяны на внешней поверхности трансплантата. Данные выявили бактериальную инвазию через материал протезного трансплантата через 6 часов после бактериального погружения без существенных различий между двумя разными способами обработки внешней полиэфирной поверхности (Sasaki, 2014).

Примечательно, что размер группы составлял 5, 6 или 7 человек, и эксперименты проводились только один раз. Это может быть связано с тем, что определение бактериальной адгезии с помощью КОЕ является трудоемким и трудоемким процессом.

Для анализа КОЕ требуется инкубация разбавленного образца бактерий. Обязательной предпосылкой для разведения является растворение бактериальной биопленки, что может быть явным отклонением от различных доступных методов.

Несколько исследователей сообщили о противоречивых результатах в отношении развития резистентных к инфекции сосудистых трансплантатов.Кроме того, были исследованы многочисленные антибиотики, иногда с разными носителями, чтобы стимулировать длительный противомикробный эффект (Kuehn et al., 2010).

Заключение

Модель in vitro может быть использована для воспроизводимой количественной оценки адгезии биопленок на стандартизованных поверхностях сосудистых трансплантатов с анализом АТФ в качестве системы обнаружения. По сравнению с анализом КОЕ, анализ АТФ позволяет ускорить количественное определение бактерий, однако корреляция с анализом КОЕ может зависеть от штамма и поверхности.

Авторские взносы

MH и EAI: разработали этот проект; MH, TB, DK, KB, NO, GT и EAI: участвовали в экспериментах, анализе и интерпретации работы; MH: подготовил рукопись; MH, TB, DK, KB, NO, GT и EAI: проверили рукопись на предмет интеллектуального содержания.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Работа поддержана фондом « Innovative Medical Research» Медицинской школы Университета Мюнстера (ID 111317). Мы благодарим Дамаянти Кайзера из Института медицинской микробиологии за отличную техническую поддержку и Ульрике Келлер и Харальда Нюссе из Института медицинской физики и биофизики Мюнстерского университета за анализ SEM. Материал для сосудистого трансплантата был предоставлен B. Braun, Melsungen, Германия (Uni-Graft ® K DV) и Vascutek, Terumo, Франкфурт, Германия (PTFE MAXIFLO ™ Ultrathin).

Дополнительные материалы

Дополнительные материалы к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https://www.frontiersin.org/articles//10.3389/fmicb.2017.02333/full#supplementary-material

Таблица S1 . Коэффициент корреляции Пирсона и коэффициент детерминации количественной оценки для всех анализов, поверхностей и временных точек.

Сокращения

АТФ, концентрация митохондриального АТФ как показатель жизнеспособности бактерий; БЭБ-029, БЭБ-295, Ш2000, биопленка S.изоляты aureus ; КОЕ, колониеобразующие единицы; CV, коэффициент изменчивости; Крик, окрашивание кристально-фиолетовым; EPS, матрица внеклеточного полимерного вещества; МТТ, 3- (4,5-диметилтиазол-2-ил) -2,5-дифенилтетразолий бромид для оценки метаболической активности клеток; ПТФЭ, политетрафторэтилен; R 2 , коэффициент детерминации; r , коэффициент корреляции Пирсона; СЭМ, сканирующая электронная микроскопия; SYTO9, окраска нуклеиновых кислот, проникающих в клетки; ВГИ, инфекции сосудистого трансплантата.

Список литературы

Alt, V., Bechert, T., Steinrucke, P., Wagener, M., Seidel, P., Dingeldein, E., et al. (2004). In vitro Тестирование антимикробной активности костного цемента. Антимикробный. Агенты Chemother. 48, 4084–4088. DOI: 10.1128 / AAC.48.11.4084-4088.2004

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Becker, K., Pagnier, I., Schuhen, B., Wenzelburger, F., Friedrich, A. W., Kipp, F., et al. (2006). Достаточно ли часто происходит соколонизация носа метициллин-резистентными коагулазонегативными стафилококками и метициллин-чувствительными штаммами Staphylococcus aureus , чтобы представлять риск ложноположительных метициллин-резистентных S.aureus молекулярными методами? J. Clin. Microbiol. 44, 229–231. DOI: 10.1128 / JCM.44.1.229-231.2006

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Bisdas, T., Beckmann, E., Marsch, G., Burgwitz, K., Wilhelmi, M., Kuehn, C., et al. (2012). Профилактика инфекций трансплантата сосудов с помощью пропитки трансплантата антибиотиком перед имплантацией: in vitro сравнение даптомицина, рифампицина и небацетина. евро. J. Vasc.Эндоваск. Surg. 43, 448–456. DOI: 10.1016 / j.ejvs.2011.12.029

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Chaufour, X., Gaudric, J., Goueffic, Y., Khodja, R.H., Feugier, P., Malikov, S., et al. (2017). Многоцентровый опыт эксплантации инфицированного эндотрансплантата брюшной аорты. J. Vasc. Surg. 65, 372–380. DOI: 10.1016 / j.jvs.2016.07.126

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Грасиа, Э., Фернандес, А., Кончелло, П., Алабарт, Дж. Л., Перес, М., и Аморена, Б. (1999). Разработка in vitro биопленок Staphylococcus aureus с использованием продуцирующих слизь вариантов и АТФ-биолюминесценции для автоматического определения количества бактерий. Люминесценция 14, 23–31. DOI: 10.1002 / (SICI) 1522-7243 (199901/02) 14: 1 <23 :: AID-BIO513> 3.0.CO; 2-M

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Грасиа, Э., Фернандес, А., Кончелло, П., Лаклерига, А., Паниагуа, Л., Seral, F., et al. (1997). Привязка вариантов слизистых штаммов Staphylococcus aureus к биоматериалам, используемым в ортопедической хирургии. Внутр. Ортоп. 21, 46–51. DOI: 10.1007 / s002640050116

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хатцингер, П. Б., Палмер, П., Смит, Р. Л., Пенарриета, К. Т., и Йошинари, Т. (2003). Применимость солей тетразолия для измерения дыхательной активности и жизнеспособности бактерий подземных вод. Дж.Microbiol. Методы 52, 47–58. DOI: 10.1016 / S0167-7012 (02) 00132-X

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хепп, В. (2009). «Послеоперационная инфекция», в Gefäßchirurgie , ред. W. Hepp and H. Kogel (München; Jena: Urban & Fischer Verlag / Elsevier GmbH), 669–683.

Хертен, М., Иделевич, Э.А., Зилькер, С., Беккер, К., Шерзингер, А.С., Осада, Н. и др. (2017). Пропитка сосудистого трансплантата антибиотиками: влияние высоких концентраций рифампицина, ванкомицина, даптомицина и бактериофага эндолизина HY-133 на жизнеспособность сосудистых клеток. Med. Sci. Монит. Basic Res. 23, 250–257. DOI: 10.12659 / MSMBR.9

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ickert, I., Herten, M., Vogl, M., Ziskoven, C., Zilkens, C., Krauspe, R., et al. (2015). Опиоиды как альтернатива местным анестетикам амидного типа для внутрисуставного применения. Коленная хирургия. Sports Traumatol. Arthrosc. 23, 2674–2681. DOI: 10.1007 / s00167-014-2989-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Иделевич, Э.A., Schaumburg, F., Knaack, D., Scherzinger, A. S., Mutter, W., Peters, G., et al. (2016). Рекомбинантный бактериофаг эндолизин HY-133 проявляет активность in vitro против различных африканских клональных линий комплекса Staphylococcus aureus , включая Staphylococcus schweitzeri . Антимикробный. Агенты Chemother. 60, 2551–2553. DOI: 10.1128 / AAC.02859-15

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Иделевич, Э.A., Von Eiff, C., Friedrich, A. W., Iannelli, D., Xia, G., Peters, G., et al. (2011). In vitro активность против Staphylococcus aureus нового противомикробного агента, PRF-119, рекомбинантного химерного эндолизина бактериофага. Антимикробный. Агенты Chemother. 55, 4416–4419. DOI: 10.1128 / AAC.00217-11

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Капур Р. и Ядав Дж. С. (2010). Разработка экспресс-теста биолюминесценции АТФ для определения биоцидной чувствительности быстрорастущих микобактерий. J. Clin. Microbiol. 48, 3725–3728. DOI: 10.1128 / JCM.01482-10

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Килинг, В. Б., Майерс, А. Р., Стоун, П. А., Хеллер, Л., Виден, Р., Бэк, М. Р. и др. (2009). Региональная доставка антибиотиков для лечения экспериментальных инфекций протезных трансплантатов. J. Surg. Res. 157, 223–226. DOI: 10.1016 / j.jss.2008.06.050

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Куэн, К., Graf, K., Mashaqi, B., Pichlmaier, M., Heuer, W., Hilfiker, A., et al. (2010). Профилактика ранней инфекции сосудистого трансплантата с помощью регионарного высвобождения антибиотиков. J. Surg. Res. 164, e185 – e191. DOI: 10.1016 / j.jss.2010.05.029

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Палестрант Д., Хольцнехт З. Э., Коллинз Б. Х., Паркер В., Миллер С. Э. и Боллинджер Р. Р. (2004). Микробные биопленки в кишечнике: визуализация с помощью электронной микроскопии и окрашивания акридиновым оранжевым. Ultrastruct. Патол. 28, 23–27. DOI: 10.1080 / 0104196

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Паттерсон, Дж. Л., Сталл-Лейн, А., Гирер, П. Х. и Джефферсон, К. К. (2010). Анализ адгезии, образования биопленок и цитотоксичности предполагает более высокий потенциал вирулентности Gardnerella vaginalis по сравнению с другими анаэробами, связанными с бактериальным вагинозом. Микробиология 156, 392–399. DOI: 10.1099 / mic.0.034280-0

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Петерс, Э., Нелис, Х. Дж., И Коэнье, Т. (2008). Сравнение нескольких методов количественной оценки микробных биопленок, выращенных в микротитровальных планшетах. J. Microbiol. Методы 72, 157–165. DOI: 10.1016 / j.mimet.2007.11.010

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Петтит Р.К., Вебер К.А. и Петтит Г.Р. (2009). Применение высокопроизводительного анализа чувствительности биопленок Alamar blue к Staphylococcus aureus биопленкам. Ann. Clin. Microbiol.Противомикробный. 8:28. DOI: 10.1186 / 1476-0711-8-28

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Питтс Б., Гамильтон М. А., Зельвер Н. и Стюарт П. С. (2003). Метод скрининга микротитрационных планшетов для дезинфекции и удаления биопленок. J. Microbiol. Методы 54, 269–276. DOI: 10.1016 / S0167-7012 (03) 00034-4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ромлинг, У., Кьеллеберг, С., Нормарк, С., Найман, Л., Улин, Б.Э., и Акерлунд, Б. (2014). Образование микробной биопленки: необходимость действовать. J. Intern. Med. 276, 98–110. DOI: 10.1111 / joim.12242

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Sanz, M., Beighton, D., Curtis, M.A., Cury, J.A., Dige, I., Dommisch, H., et al. (2017). Роль микробных биопленок в поддержании здоровья полости рта и в развитии кариеса зубов и заболеваний пародонта. Консенсус-отчет группы 1 совместного семинара EFP / ORCA о границах между кариесом и пародонтозом. J. Clin. Пародонтол. 44 (Дополнение 18), S5 – S11. DOI: 10.1111 / jcpe.12682

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сасаки Ю. (2014). in vitro исследование бактериальной инвазии протезных сосудистых трансплантатов: сравнение дакроновых сосудистых трансплантатов с эластомерным уплотнением и желатиновым покрытием. Surg. Сегодня 44, 1542–1547. DOI: 10.1007 / s00595-013-0761-8

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шмитт, Д.Д., Бандык Д. Ф., Пекет А. Дж. И Таун Дж. Б. (1986). Бактериальное прилегание к сосудистым протезам. Детерминант инфекционности трансплантата. J. Vasc. Surg. 3, 732–740. DOI: 10.1016 / 0741-5214 (86) -6

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Степанович, С., Вукович, Д., Дакич, И., Савич, Б., и Свабич-Влахович, М. (2000). Модифицированный тест на микротитрационном планшете для количественной оценки образования стафилококковой биопленки. J. Microbiol. Методы 40, 175–179.DOI: 10.1016 / S0167-7012 (00) 00122-6

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Таваколи, П. Н., Аль-Ахмад, А., Хот-Ханниг, В., Ханниг, М., и Ханниг, К. (2013). Сравнение различных окрашиваний живых / мертвых для обнаружения и количественной оценки прикрепившихся микроорганизмов в исходной биопленке полости рта. Clin. Устное расследование. 17, 841–850. DOI: 10.1007 / s00784-012-0792-3

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Злодей-Гийо, П., Гуалтьери, М., Бастид, Л., и Леонетти, Дж. П. (2007). In vitro активности различных ингибиторов бактериальной транскрипции против биопленки Staphylococcus epidermidis . Антимикробный. Агенты Chemother. 51, 3117–3121. DOI: 10.1128 / AAC.00343-07

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Антибиотики — Типы антибиотиков

Профилактика осложнений от антибиотиков

Антибиотики выводятся почками или выводятся печенью, а затем выводятся почками.Из-за этого некоторые антибиотики следует с осторожностью назначать пациентам с заболеваниями почек, печени или и тем, и другим. Чтобы предотвратить слишком низкую или, что более вероятно, слишком высокую концентрацию антибиотиков, которая может привести к серьезным побочным эффектам, у этих людей необходимо изменить режим дозирования.

Профилактика анафилаксии

Тем, кто в прошлом испытывал аллергическую реакцию на конкретный антибиотик (который интуитивно мог бы включать других членов его семейства антибиотиков), никогда не следует снова подвергаться воздействию этого семейства антибиотиков.Такое повторное воздействие на иммунную систему, «заряженную и готовую», может привести к опасному для жизни анафилактическому шоку. Исключением является терапия пенициллином у беременных, больных сифилисом, при которой альтернативы не проникают через плаценту для лечения одновременной инфекции ребенка; в этих случаях аллерголог может провести процедуру десенсибилизации, до которой можно будет безопасно назначать пенициллин для лечения как ребенка, так и матери.

Профилактические антибиотики

Те, у кого в анамнезе была ревматическая лихорадка и / или порок клапанов сердца, могут страдать от колонизации своих клапанов, если бактерии попадают в кровоток с помощью инвазивных процедур, таких как хирургия, стоматологическая работа или инвазивное тестирование (биопсия и т. Д.)). Этим пациентам перед проведением таких процедур будут назначены антибиотики, чтобы при теоретическом посеве был уровень крови на борту.

Аналогичным образом, профилактические антибиотики используются с постоянными катетерами, которые имеют высокий риск инфицирования с течением времени, такими как катетеры мочевого пузыря Фолея, порты для перитонеального диализа или центральные линии.

Перед установкой гастростомических трубок или при операциях с участием пациентов с низким содержанием лейкоцитов или иммуносупрессивных препаратов показаны профилактические антибиотики.

Операции, которые связаны с воздействием «загрязненной» среды на «чистую» среду, должны иметь антибиотикопрофилактику, которая охватывает обычные бактерии, которые обычно обитают в нестерильных областях. Примером может служить вагинальная гистерэктомия, при которой стерильная брюшная полость разрывается для удаления матки через влагалище. Другой пример — операция на толстой кишке, которая включает проникновение в просвет кишечника, через который кишечные бактерии попадают в брюшную полость. Некоторые считают, что любая операция, которая включает разрез кожи для входа в брюшную полость, грудную клетку или череп, является таким «чистым зараженным» случаем.

Эмпирическая антибиотикопрофилактика подходит в индивидуальных ситуациях, специфичных для пациента. Например, если мужчина лечится от инфекции, передаваемой половым путем (ИППП), его половой партнер должен лечиться одновременно с этим из-за вероятности заражения, даже если нет никаких симптомов. Профилактика рецидива ИППП основана на культуре и чувствительности после полного курса антибиотиков, что называется «тестом на излечение» (TOC).

Материал для сосудистого трансплантата из полиэстера и риск внутриполостной инфекции грудного сосудистого трансплантата — Том 26, номер 10 — октябрь 2020 г. — Журнал Emerging Infectious Diseases

Сведения об авторах: Университетская клиника Цюриха, Цюрих, Швейцария (Т.А. Швейцер, С. Маирпади Шамбат, В. Денглер Хаунрейтер, К.А. Местрес, Ф. Майзано, А.С. Цинкернагель, Б. Хассе); HerzZentrum Hirslanden Zurich, Цюрих (А. Вебер)

Инфекции протезного сосудистого трансплантата (PVGI) грудной аорты встречаются у 1–3% пациентов, но летальность составляет> 20% ( 1 , 2 ). Из-за старения населения с множественными заболеваниями имплантируется больше сосудистых трансплантатов, что приводит к увеличению числа ПВГИ. Инфекция часто возникает в периоперационном периоде ( 3 ) в результате заражения бактериями, происходящими в основном из собственной кожной флоры пациента.PVGI — это инфекции, связанные с биопленками, при которых матрикс вокруг бактерий снижает шансы на успех лечения ( 4 ). Следовательно, основная цель — предотвратить периоперационные инфекции путем выявления факторов риска, таких как тип протеза.

Немногочисленные сравнительные исследования, о которых сообщалось, были в основном сосредоточены на использовании трансплантатов с антибиотиками для снижения риска развития PVGI in vitro и in vivo ( 5 7 ). Однако следует учитывать отсутствие одобрения регулирующих органов, ограниченную коммерческую доступность и отсутствие данных долгосрочного наблюдения по выживаемости без инфекции ( 8 10 ).Кроме того, давление отбора из-за использования местных антибиотиков может привести к резистентности. Staphylococcus aureus , как было показано, колонизирует связанные с рифампицином трансплантаты через 7 дней после имплантации ( 10 ). Следовательно, имплантированные трансплантаты обычно покрываются только белковыми растворами, что обеспечивает быструю интеграцию в ткань хозяина. Мы сравнили восприимчивость 2 трансплантатов к образованию биопленок in vitro и частоту инфекций in vivo.

Для нашего исследования in vitro мы сравнили восприимчивость двух тканых трансплантатов из полиэфирных волокон грудных сосудов с различным покрытием — коллагеном (коллагеновый трансплантат, InterGard Hemabridge, https: // www.getinge.com) и желатин (желатиновый трансплантат, Terumo Aortic, Gelweave, https://terumoaortic.com) — для образования биопленок. Коллагеновый трансплантат покрыт высокоочищенной формой сшитого бычьего коллагена 1 типа. Трансплантат желатина покрыт модифицированным желатином млекопитающего. Желатин получают в основном из коллагена типа 1 путем тепловой денатурации, процесса, во время которого коллаген теряет свою природную тройную спиральную структуру. Время резорбции коллагена составляет 4–8 недель, желатина — 14 дней. Для нашего исследования in vivo мы исследовали частоту инфекций, связанных с двумя трансплантатами, среди потенциальных пациентов, перенесших операцию на открытом грудной клетке в Университетской клинике Цюриха (Цюрих, Швейцария).

Рисунок

Рисунок. Повышенная восприимчивость коллагенового трансплантата к образованию биопленки по сравнению с желатиновым трансплантатом. Пластыри трансплантата инокулировали указанными штаммами бактерий в течение 72 часов и анализировали количественно и качественно. А) Формирование биопленки …

Для экспериментов in vitro мы разрезали трансплантаты на квадратные кусочки 5 × 5 мм и инокулировали их бактериальными штаммами, представляющими патогены, участвующие в грудном PVGI в нашей когорте пациентов. Они были получены либо у пациентов с когортным исследованием сосудистого трансплантата (VASGRA), либо у лабораторных штаммов (таблица 1 приложения, рисунок 1) и сохранены на чашках с кровяным агаром Columbia (bioMérieux SA, https: // www.biomerieux.com) и в триптическом соевом бульоне (Becton Dickinson, https://www.bd.com) при 37 ° C. Пластыри трансплантата инкубировали с бактериями в растворе трипсина соевого бульона и глюкозы (концентрация глюкозы 8 ммоль / л) при 37 ° C в течение 72 часов, среду меняли каждые 24 часа. Пластыри промывали фосфатно-солевым буфером (PBS), обрабатывали ультразвуком при 44 кГц, и полученную оптическую плотность при длине волны 600 измеряли на считывающем устройстве для микропланшетов. Все бактерии, за исключением штамма 2 Pseudomonas aeruginosa , показали повышенное образование биопленок на коллагеновом трансплантате по сравнению с участками желатинового трансплантата (рисунок, панель A).

Биопленки выбранных штаммов окрашивали SYTO 9 из набора LIVE / DEAD Bac Light Bacterial Viability Kit (ThermoFisher Scientific, https://www.thermofisher.com) в соответствии с инструкциями производителя. Пластыри трансплантата помещали на 8-луночные микроскопы (там же, https://ibidi.com) и визуализировали с помощью конфокальной лазерной сканирующей микроскопии с помощью инвертированного микроскопа Leica TCS SP8 (https://www.leica-microsystems.com) под микроскопом. Маслоиммерсионный объектив 63 × / 1,4. Мы выбрали 2 репрезентативных пятна на каждый участок трансплантата, обеспечивая стопку изображений, полученных по горизонтали (512 × 512 пикселей, представляющих площадь 244.8 мкм × 244,8 мкм) с размером шага по оси Z 0,12 мкм. Мы обработали полученные стеки с помощью программного обеспечения Imaris 9.2.0 (Bitplane; Oxford Instruments, https://imaris.oxinst.com/support/imaris-release-notes/9-2-0). Высота и объем биопленки определялись, как описано ранее ( 11 ). Этот подход проиллюстрировал повышенное образование биопленки на участках трансплантата коллагена (рис. 2 в приложении). Количественный анализ полученных изображений конфокальной лазерной сканирующей микроскопии подтвердил первоначальные результаты, поскольку биопленка, выращенная на участках трансплантата коллагена, показывала увеличенный общий объем биопленки, а также максимальную высоту биопленки (рисунок, панель B).

Одним из возможных объяснений повышенной восприимчивости к образованию биопленок может быть отчетливое покрытие трансплантатов. Следовательно, мы покрывали лунки планшетов на ночь при 4 ° C либо коллагеном 1 из хвоста крысы (10 мкг / мл; ThermoFisher Scientific), либо раствором желатина типа B (10 мкг / мл; Sigma-Aldrich, https://www.sigmaaldrich.com ). Планшеты инкубировали с бактериями при 37 ° C в течение 30 мин. Бактерии промывали, окрашивали 0,1% кристаллическим фиолетовым (Fluka; Sigma Aldrich, https: //www.sigmaaldrich.com), солюбилизированный в 95% этаноле, и измеряли полученную оптическую плотность при 570 нм. Тестируемые штаммы значительно лучше прилипали к коллагену (рисунок, панель C). Наши результаты подтверждаются исследованиями, демонстрирующими способность грамположительных бактерий прикрепляться к коллагену, тогда как для желатина наблюдалась лишь незначительная аффинность ( 12 , 13 ).

Чтобы оценить влияние этих результатов in vivo, мы проанализировали 412 потенциальных участников с ткаными трансплантатами из полиэстера: 28 участников VASGRA, у которых развился внутриполостный грудной PVGI, и 384 пациента, перенесших одновременную операцию на открытом сердце, у которых PVGI не развился (контрольная группа) (таблица ).Данные и штаммы, выделенные от пациентов, были использованы в соответствии с утверждением Кантонального этического комитета KEK-ZH-Nr. 2012-0583. Для статистического анализа с помощью GraphPad Prism 8 (GraphPad Software, https://www.graphpad.com) мы использовали непараметрические тесты (точное определение Фишера или сумма рангов Вилкоксона, в зависимости от ситуации). При нормализации к общему количеству контрольных пациентов (n = 384, которые перенесли кардиохирургию, но не имели PVGI), расчетный процент внутриполостного грудного PVGI (n = 28 пациентов VASGRA, перенесших кардиохирургию и перенесших PVGI) был выше. для пациентов с коллагеновым трансплантатом (10.8%) по сравнению с группой, получавшей желатиновый трансплантат (3,52%; p <0,005).

Мы обнаружили большее образование биопленки на сосудистых трансплантатах из полиэфира, покрытых коллагеном, чем на трансплантатах, покрытых желатином, возможно, потому, что тестируемые штаммы значительно лучше прилипали к коллагену, чем к желатину. Когда мы проанализировали потенциальных пациентов с PVGI и современную контрольную группу, процент PVGI, связанный с трансплантатами, покрытыми коллагеном, также был выше.

Сильные стороны нашего исследования включают использование штаммов бактерий, полученных от пациентов, и перспективный сбор пациентов с инцидентными PVGI и контрольной группой.Наше исследование имеет некоторые ограничения. Во-первых, это было одноцентровое исследование, что привело к небольшому количеству пациентов, а роль материала трансплантата как фактора риска PVGI трудно доказать из-за редкости инфекции. Кроме того, данные для пациентов с PVGI следует интерпретировать с осторожностью, потому что у некоторых пациентов есть дополнительный инородный материал в сердце. Во-вторых, отсутствует общедоступная информация о точном типе покрытия, а также об используемых процедурах нанесения. Кроме того, эксперименты проводились на статической экспериментальной установке вместо проточной камеры.Однако, поскольку мы были заинтересованы в прямом прикреплении бактерий к материалу трансплантата, моделируя сценарий, при котором инфекция могла бы возникнуть в результате непреднамеренной инокуляции во время периоперационного периода, мы считаем, что использованная установка является адекватной. Мы не воспроизводили эксперимент по образованию грамположительной и грамотрицательной смешанной биопленки, потому что мономикробная установка позволила нам определить, какой материал и покрытие были более восприимчивыми к прилипанию бактерий, более контролируемым образом.

В заключение, образование биопленок было увеличено на покрытых коллагеном сосудистых трансплантатах по сравнению с трансплантатами, покрытыми желатином in vitro. В отличие от другого анализа факторов риска из исследования VASGRA ( 3 ), в нашем исследовании материал трансплантата был связан с частотой PVGI. Такие параметры, как потенциал васкуляризации, безопасный рост псевдоинтимы и сниженная тромбогенность, воспринимаются как влияющие на успешную интеграцию и функциональность протезных сосудистых трансплантатов ( 14 ).При проектировании и разработке сосудистых протезов следует учитывать дополнительные параметры, чтобы уменьшить возникающую тенденцию к PVGI.

Г-н Швейцер — аспирант отделения инфекционных болезней и госпитальной эпидемиологии университетской больницы Цюриха. Его основные исследовательские интересы включают бактериальные и грибковые хронические инфекции, а также возникающие в результате взаимодействия хозяин-патоген.

верхний

Мы благодарны нашим пациентам за участие в исследовании.Мы благодарим медицинских сестер-исследователей Кэролайн Мюллер и Симону Бюргин, а также Кристин Лаич и Кристин Фогтли за административную помощь.

Конфокальная визуализация была выполнена при поддержке Центра микроскопии и анализа изображений Цюрихского университета. Данные, включенные в эту публикацию, являются частью магистерской диссертации на факультете естественных наук Цюрихского университета (T.A.S.).

Исследование финансировалось в рамках VASGRA при поддержке гранта Швейцарского национального научного фонда 320030_184918 / 1 (Б.H.) и 31003A_176252 (к A.S.Z.). Эта работа также была поддержана Программой приоритетных клинических исследований Цюрихского университета для Программы приоритетных клинических исследований «Точная медицина при бактериальных инфекциях». Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

B.H. и A.S.Z. разработал исследование. T.A.S. и С.М.С. провел эксперименты, проанализировал данные и написал первый черновик. Все авторы участвовали в сборе и интерпретации данных, рецензировали черновики рукописи, написали окончательную версию рукописи и одобрили окончательную рукопись.

Выводы, выводы и мнения, выраженные авторами, работающими в этом журнале, не обязательно отражают официальную позицию Министерства здравоохранения и социальных служб США, Службы общественного здравоохранения, Центров по контролю и профилактике заболеваний или аффилированных с авторами учреждения. Торговые наименования используются только для идентификации и не подразумевают одобрения какой-либо из вышеперечисленных групп.

Некротический фасциит (плотоядные бактерии): причины, симптомы и лечение

Что такое плотоядные бактерии (некротический фасциит)?

Плотоядные бактерии (некротический фасциит) — редкая инфекция кожи и тканей под ней.Это может быть смертельно опасным, если не лечить быстро.

Некротический фасциит быстро и агрессивно распространяется у инфицированного человека. Это вызывает гибель тканей в очаге инфекции и за ее пределами.

Ежегодно в США диагностируется от 600 до 700 случаев заболевания. Примерно от 25% до 30% этих случаев заканчиваются смертью. Это редко случается у детей.

Причины и факторы риска плотоядных бактерий

Некротический фасциит обычно вызывается бактериями стрептококка группы А (ГАЗ).Это тот же тип бактерий, который вызывает фарингит. Но несколько типов бактерий, таких как стафилококк и другие, также связаны с заболеванием.

Некротический фасциит возникает, когда эти типы бактерий поражают поверхностную фасцию, слой соединительной ткани под кожей.

Передача плотоядных бактерий

Бактерии, вызывающие некротический фасциит, могут проникать в организм через:

В некоторых случаях неизвестно, как началась инфекция.Как только это происходит, инфекция быстро разрушает мышцы, кожу и жировую ткань.

Ослабленная иммунная система и некоторые заболевания могут повысить вероятность заражения плотоядными бактериями (некротический фасциит). Состояние здоровья, которое может повысить ваш риск, включает:

Плотноедные бактерии Симптомы

Ранние симптомы заражения плотоядными бактериями обычно появляются в течение первых 24 часов после заражения. Симптомы аналогичны другим состояниям, таким как грипп или менее серьезная кожная инфекция.Ранние симптомы также похожи на распространенные послеоперационные жалобы, такие как:

Симптомы часто включают комбинацию следующего:

  • Усиливающаяся боль в общей области небольшого пореза, ссадины или другого кожного отверстия.
  • Боль сильнее, чем можно было бы ожидать от пореза или ссадины.
  • Покраснение и тепло вокруг раны, хотя симптомы могут начаться на других участках тела.
  • Гриппоподобные симптомы, такие как диарея, тошнота, лихорадка, головокружение, слабость и общее недомогание.
  • Сильная жажда из-за обезвоживания.

Более сложные симптомы появляются вокруг болезненного места инфекции в течение 3-4 дней после заражения. К ним относятся:

  • Отек, возможно, вместе с лиловой сыпью
  • Большие пятна фиолетового цвета, которые превращаются в волдыри, наполненные темной дурно пахнущей жидкостью
  • Обесцвечивание, шелушение и шелушение по мере отмирания тканей (гангрены)

Критические симптомы, которые часто возникают в течение 4–5 дней после заражения, включают:

Диагностика плотоядных бактерий

Плотноедные бактерии (некротический фасциит) быстро поражают организм, поэтому ранняя диагностика важна для выживания.

Врач осмотрит вас и изучит ваши симптомы. Наличие плотоядных бактерий требует неотложной медицинской помощи, и если врач подозревает, что они у вас есть, вас, скорее всего, доставят в больницу и там сдадут анализы.

Тесты для диагностики плотоядных бактерий (некротический фасциит) включают:

Анализы крови. Люди с плотоядными бактериями имеют высокий уровень лейкоцитов.

Биопсия ткани. Вам может потребоваться диагностическая операция для удаления части ткани из инфицированной области.Ткань отправляется в лабораторию для определения конкретных бактерий, вызывающих инфекцию. Но вам дадут лекарство от инфекции до того, как вернутся результаты анализов.

Компьютерная томография. Компьютерная томография может показать вашему врачу, где в организме скапливаются жидкость и гной. Он также показывает наличие пузырьков газа под кожей, что помогает подтвердить диагноз.

Члены семьи и другие лица, имевшие тесный контакт с больным некротическим фасциитом, должны быть проверены на это заболевание, если у них есть симптомы инфекции.

Лечение плотоядных бактерий

Пациенты, инфицированные плотоядными бактериями, будут проходить несколько видов лечения. Объем лечения зависит от стадии заболевания, когда оно начато. В курс лечения входят:

  • Внутривенная антибактериальная терапия.
  • Операция по удалению поврежденных или мертвых тканей, чтобы остановить распространение инфекции.
  • Лекарства для повышения артериального давления.
  • В некоторых случаях ампутации пораженных конечностей.
  • Гипербарическая оксигенотерапия может быть рекомендована для сохранения здоровых тканей.
  • Сердечные и дыхательные аппараты.
  • Переливания крови.
  • Иммуноглобулин для внутривенного введения. Это поддерживает способность организма бороться с инфекцией.

Осложнения, связанные с питательными бактериями

Серьезные осложнения являются обычными и могут включать:

  • Сепсис
  • Шок
  • Органная недостаточность
  • Потеря руки или ноги в результате ампутации 98
  • Тяжелое рубцевание 9401298
  • Профилактика плотоядных бактерий

    Мытье рук с мылом или использование дезинфицирующего средства для рук на спиртовой основе — один из лучших шагов, которые вы можете предпринять для предотвращения плотоядных бактерий и других кожных инфекций.

    • Вы также можете предотвратить кожные инфекции, выполнив следующие действия:
    • Всегда промывайте порезы и открытые раны водой с мылом.
    • После очистки закройте мокнущую, дренирующую или открытую рану чистой сухой повязкой.
    • Обратитесь к врачу, если у вас серьезная или глубокая рана, например, прокол или огнестрельное оружие.
    • Не ходите плавать и не пользуйтесь гидромассажной ванной, если у вас открытая рана или кожная инфекция.

    Не существует вакцины для предотвращения заражения плотоядными бактериями.

    Перспективы поедающим плоть бактериям

    Ранняя диагностика и быстрое агрессивное лечение имеют решающее значение, когда дело доходит до борьбы с этой редкой кожной инфекцией. Многим людям требуется более одной процедуры для удаления поврежденной инфицированной ткани. Если у вас красная опухшая кожа, которая не проходит, запишитесь на прием к врачу.

    Чувствительность сосудистых трансплантатов ePTFE и биоинженерных бесклеточных сосудов человека к инфекции

    https://doi.org/10.1016/j.jss.2017.08.035Получить права и содержание

    Реферат

    Предпосылки

    Синтетические расширенные трансплантаты политетрафторэтилена (ePTFE) являются обычно используется для восстановления и реконструкции сосудов, но подвержен устойчивым бактериальным инфекциям.Исследованные биоинженерные бесклеточные сосуды человека (ВГА) показали клинический успех и могут снизить восприимчивость к инфекции. Здесь мы напрямую сравнили восприимчивость трансплантатов ePTFE и HAV к бактериальному заражению на доклинической модели инфекции.

    Материалы и методы

    Срезы (1 см 2 ) ePTFE ( n = 42) или HAV ( n = 42) вводили в двусторонние подкожные карманы на спине крыс и инокулировали Staphylococcus aureus (10 7 КОЕ / 0.25 мл) или Escherichia coli (10 8 КОЕ / 0,25 мл) до закрытия раны. Две недели спустя места имплантатов были оценены на предмет образования абсцесса, а эксплантированный материал был уменьшен вдвое для количественной оценки микробного восстановления и гистологического анализа.

    Результаты

    Имплантаты из ePTFE имели значительно более высокие показатели образования абсцесса для прививок S. aureus и E. coli по сравнению с прививками HAV. Кроме того, из эксплантированного ePTFE было извлечено значительно больше бактерий по сравнению с HAV.Окрашивание по Граму эксплантированных срезов ткани выявило интерстициальную бактериальную контаминацию внутри ePTFE, тогда как в срезах ткани HAV бактерии не были идентифицированы. Многочисленные лейкоциты CD45 + , преимущественно нейтрофилы, были обнаружены вокруг имплантатов ePTFE, но минимальное количество интактных нейтрофилов было обнаружено в матрице ePTFE. Клетки-хозяева, окружающие эксплантаты HAV и инфильтрирующие их, были в основном нелейкоцитами (CD45 ).

    Выводы

    В установленной модели инфекции на животных ВГА был значительно менее подвержен бактериальной колонизации и образованию абсцесса, чем ePTFE.Доклинические данные, представленные в этой рукописи, в сочетании с ранее опубликованными клиническими наблюдениями предполагают, что биоинженерный HAV может демонстрировать низкие показатели инфицирования.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *